Agitador Magnético: Conoce todo Sobre Este Genial Aparato

El mundo de los laboratorios es realmente maravilloso y extenso, es una especie de fantasía que se vive en la realidad. Los científicos trabajan cada día en diferentes ámbitos de la ciencia para mejorar nuestra vida. Para hacer su trabajo mucho más rápido son millones los aparatos y materiales que se han creado. Traemos para ti el top 30 de los mejores materiales de laboratorio en la historia. A continuación el numero treinta, el agitador magnético y sus usos en el laboratorio.

¿Qué es un agitador magnético?

Como su nombre lo indica es un aparato eléctrico que favorece el proceso de mezcla entre las sustancias de forma automatizada por medio de la agitación. No existe distinción de los estados de los componentes que formaran la mezcla. Tanto solido – líquido o líquido – líquido se pueden mezclar con este aparato con facilidad y rapidez.

Su uso ha disminuido el riesgo de contaminación en los productos de las soluciones que era un error recurrente en mezclas manuales. Además de optimizar el uso del tiempo para el científico a cargo, ya que el tiempo que perdía mezclando de forma manual lo puede emplear en otras fases de los procesos.

Uso del agitador

Los agitadores magnéticos vienen en una extensa variedad de tamaños y modelos, ya que se han ido modificando de acuerdo con las necesidades de la industria. Su uso específico dependerá de las características propias de lo que se desee agitar. Mientras que su uso y funcionalidad básica es mezclado por agitación.

Sin embargo se puede proporcionar un esquema de su método de utilización general.

  1. Se coloca el envase o implemento que contenga los elementos a mezclar encima de la placa de agitación en el equipo.
  2. Se coloca el agitador magnético dentro del envase.
  3. Encendemos el equipo pulsando el respectivo botón de encendido.
  4. Seleccionar la velocidad de agitación deseada, empleando el mando regulador del equipo.
  5. Permitir que se mezcle la solución por un tiempo determinado.
  6. Disminuir la velocidad del equipo.
  7. Apagar el agitador con su respectivo botón.
  8. Retirar el agitador magnético del envase y listo.

Partes

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Este equipo de laboratorio posee una estructura bastante sencilla, que incluye las siguientes partes:

  • Barra de agitación: Es una barra magnética pequeña con una cubierta de plástico.
  • Placa de agitación: Cubierta plana del equipo.
  • Imanes rotatorios: Se encuentran debajo de la placa de agitación y usualmente son un conjunto de electro imanes que forman un círculo.
  • Resistencias eléctricas: Dispuestas en la placa de agitación para generar calor a las soluciones.

Funcionamiento de un agitador magnético

Una vez se enciende el equipo y se regula la velocidad, comienza la magia de la electrónica. La barra agitadora es impulsada hacia su movimiento circular por los imanes rotatorios. Quienes debajo de la placa de agitación forman una especie de campo electromagnético para dirigir el imán agitador. De esta manera se obtiene una mezcla suficientemente homogénea y solutos bien diluidos.

El vidrio no interfiere con los campos electromagnéticos por lo que la mayoría de los envases empleados para mezclar con este equipo son de este material. Mayormente vasos de precipitado, matraces o balones aforados.

Ventajas del uso de un agitador magnético

  • Estos equipos son altamente silenciosos y eficientes en comparación con sus rivales cercanos que emplean engranajes.
  • Son de larga durabilidad ya que no poseen piezas que tiendan al desgaste o la ruptura.
  • La barra de agitación es fácil de esterilizar y de limpiar por su práctico tamaño.
  • Eliminaron la contaminación tanto manual como la causada por los lubricantes de su rival mecánico.

Desventajas del uso de un agitador magnético

  • Es limitado su uso de acuerdo a las dimensiones que posee cada equipo.
  • La barra agitadora al ser de poco tamaño resulta casi inútil en grandes volúmenes de solución. Por lo que su uso se encuentra limitado a porciones experimentales en laboratorios.
  • Las sustancias con alta viscosidad prácticamente no pueden mezclarse en dispositivos de poca potencia.

Por todas esas razones ubicamos al agitador magnético en el puesto número treinta de nuestro top 30 de los mejores materiales de laboratorio. Es una herramienta muy útil, que ayuda a ahorrar trabajo a los científicos. Además de que modifico la forma de mezclar soluciones en los laboratorios. No te pierdas la posición veintinueve en la próxima publicación.

no te vayas sin ver: todos lo materiales de laboratorio de biología

Balanza Analítica Funciones, Características y usos

Balanza Analítica

Balanza Analítica, la balanza analíticas ofrece una gama de capacidades de pesaje (decenas a cientos de gramos), con una legibilidad de hasta 0.1 o 0.01 mg. Puede elegir entre calibración interna accionada por motor o calibración externa para su balanza analítica, con algunos modelos que ofrecen ambas. Busque una balanza analítica con un sensor de pesaje que sea rápido, repetible, tenga una alta estabilidad térmica y sea fácilmente reparable.

La balanza analítica con calibración totalmente automática basadas en tiempos preestablecidos o cambios en la temperatura ambiente también está disponibles. Otras balanzas analíticas pueden incluir funciones integradas como un reloj, conteo de piezas, conversión de unidades de masa, selección de capacidad y mantenimiento de registros de datos cuando se usa con una impresora

Algunas veces referido como una escala analítica, esto es incorrecto. Las balanzas analíticas utilizan una celda de medición de precisión, mientras que las básculas utilizan un mecanismo básico de pesaje de celda de carga. Los modelos de nivel básico incluyen los modelos OHAUS PR y Pioneer PX. Proporcionan resultados de pesaje precisos a un precio económico. Muy adecuado para escuelas secundarias y universidades.

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Los modelos OHAUS Adventurer AX y Explorer EX tienen características avanzadas que incluyen pantallas táctiles en color y la capacidad de imprimir directamente en una memoria USB. Todos los modelos están equipados con un protector contra corrientes de aire y requieren un banco de pesaje resistente, en una ubicación libre de corrientes de aire, vibraciones y luz solar directa para obtener resultados de pesaje repetibles.

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Los usos incluyen pesaje de precisión, calibración de pipetas, preparación de estándares, formulación, determinación de densidad y más. Póngase en contacto con nosotros para obtener asesoramiento si no está seguro de qué modelo se adaptará a su aplicación.

Balanza Analítica función

Las balanzas analíticas se centran principalmente en el campo de la industria, el control de calidad o el desarrollo de productos. Además, también se encuentran en investigación y desarrollo, hospitales, colegios técnicos, universidades, pero especialmente en laboratorios. Las balanzas analíticas son instrumentos que impresionan con su alta calidad y precisión

Las balanzas analíticas son utilizadas para medir con precisión la masa. Su legibilidad tiene una categoría entre 0.1mg – 0.01mg. Están diseñadas para detectar incrementos muy delicados, por lo que las más mínimas vibraciones o brisa logran afectar los resultados. Por tal sentido, las balanzas analíticas se tienen que mover en una sala con la menor cantidad de movimientos posibles. Las balanzas analíticas se tienen que mantener controladas y calibrarse con periodicidad.

Características de la Balanza Analítica

Una de las características más importantes de la balanza analítica es, que se emplea en Análisis químicos normalmente permite pesar masas inferiores a los 200 gramos con una sensibilidad de 0.1 mg y en algunos casos 0.01 mg, es decir es capaz de pesar químicos reportando valores hasta la cuarta o quinta cifra decimal. Otra característica importante de la balanza analítica es su fidelidad (Precisión), consistente en la capacidad de dar el mismo valor cada vez que un mismo objeto es pesado varias veces consecutivas.

Calibración de la Balanza Analítica

La calibración es un proceso para garantizar y mantener la precisión de un instrumento de pesaje alineado con un rango de resultados estándar o aceptado. Por lo tanto, la calibración de la balanza se considera el proceso de corrección, determinación y verificación de que la báscula cumple con su precisión conocida o asignada.

Un procedimiento de calibración asegura al analista que la balanza funciona correctamente, pero la calibración es tan buena como la técnica de calibración del analista. Asegúrese de no tener que seguir un procedimiento particular para calibrar la balanza.

En algunos laboratorios, como los laboratorios farmacéuticos, una balanza tendrá su propio procedimiento de calibración específico y deberá seguirlo para cumplir con los controles de calidad reglamentarios necesarios. Verifique la fecha de vencimiento en la etiqueta de calibración en la balanza analítica si hay una.

Si la calibración de la balanza está desactualizada y requiere una calibración más exhaustiva de la que puede realizar usted mismo, entonces la balanza no es apta para su uso y cualquier procedimiento para el que esté midiendo sustancias puede no ser exacto.

Algunas balanzas analíticas tienen calibración automática interna y solo requieren que las calibre de forma intermitente. Centre la burbuja en el nivel de burbuja del equilibrio. La balanza tendrá pies ajustables que puede girar individualmente para subir o bajar un lado. El dispositivo tiene que ser incluso para ser preciso.

Pregunte a otros analistas que han desactivado el saldo en la hora anterior y verifique que nadie haya movido el saldo. Ambos problemas pueden afectar la precisión del equipo. Espere al menos una hora después de volver a encender la balanza antes de intentar calibrarla. Si alguien movió la balanza, es posible que deba realizar una calibración más exhaustiva o llamar a un experto para que la recalibre.

Limpie el polvo o las partículas en la balanza que pueden interferir con el proceso de medición. Use un paño seco o un cepillo suave para esto. Cierre la puerta y tara la balanza presionando el botón “Tare”. Permita que la lectura se asiente por unos segundos para garantizar que la balanza lea cero. Elija uno o más pesos para calibrar la balanza.

Estos pesos deben estandarizarse para un peso exacto. Los institutos como el Instituto Nacional de Estándares y Tecnología tienen estándares de precisión que los fabricantes de pesas pueden seguir. Un peso puede ser suficiente para satisfacer los requisitos de su laboratorio, y puede usar un peso que sea aproximadamente el mismo que el peso deseado de la sustancia.

Alternativamente, si planea pesar una variedad de artículos en un amplio rango, aceites y la humedad en sus manos pueden alterar el peso; coloque el peso en el centro de la balanza suavemente, cierre la puerta y permita que la balanza se asiente unos segundos. Registre el resultado y elimine el peso.

¿Con qué frecuencia debe calibrar las escalas analíticas?

La frecuencia de la calibración de la escala analítica depende de varios factores:

a) Recomendaciones del fabricante Si el fabricante ha recomendado una frecuencia de calibración, adhiérase a ella. Algunos recomiendan la calibración varias veces al mes, otros recomiendan frecuentemente.

 b) Entorno en el que se puede obtener las escalas Si las básculas se tienen en un ambiente que contiene fluidos, polvo o cualquier sustancia que pueda acumularse en la báscula, debe calibrar con más frecuencia. Todos estos elementos afectados las lecturas. Del mismo modo, si las escalas se encuentran en un lugar que tiene vibraciones, descargas mecánicas o electricidad estática, la lectura se vería afectadas. Considere calibrar las básculas específicas para evitar que estos factores afecten las lecturas.

c) Frecuencia de uso de escala Si usa escalas todos los días, el desgaste puede ocurrir más rápido en comparación con las escalas que se usan una vez por semana. La calibración debe tener con mayor frecuencia si usa la báscula con más frecuencia.

 d) Importancia de un peso exacto para su negocio La frecuencia de calibración también depende de la importancia de los pesos precisos para su negocio. Si no puede permitirse ni la más mínima imprecisión en la lectura, debemos calibrar diariamente o necesitará. Por ejemplo, en el caso de equipos médicos o productos farmacéuticos, incluso la más mínima inexactitud puede ser peligrosa. Por el contrario, si está bien que los resultados difieran en un 1% de las lecturas reales, la frecuencia de calibración puede ser menor.

Cuidados de la Balanza Analítica

Limpieza: diaria o según sea necesario:

Retire con cuidado la bandeja de equilibrio, límpiela y reemplácela.

Limpie cualquier líquido derramado y cepille cualquier producto químico derramado de la cámara de pesaje. Limpie las puertas de vidrio (por dentro y por fuera), con un paño suave y etanol al 80% v / v.

Elimine el polvo del exterior del gabinete y limpie cualquier producto químico derramado del área del banco de equilibrio.

Es importante que monitoree y calibre la balanza analítica con frecuencia. Puede utilizar la calibración interna automática o calibrar la balanza con pesas externas. Independientemente del método, asegúrese de que la calibración se realice en el momento adecuado.

INCUBADORA DE LABORATORIO

La incubadora de laboratorio es utilizada ra cultivar y mantener cultivos microbiológicos o cultivos celulares. La finalidad de esta herramienta es mantener la humedad y temperatura, además de otras condiciones, en perfecto estado al igual que el contenido de CO (CO2) y oxigeno de la atmósfera interior.

📌 ¿Qué es una Incubadora laboratorio?

La incubadora es un equipo necesario para cualquier laboratorio que realice cultivos celulares y cultivos de tejidos. Las incubadoras protegen las células de los cambios de temperatura, humedad, CO2 y O2. La temperatura puede ser regulada por medio de camisas de agua o de aire.

La humedad constante es mantenida por un canal de agua húmeda y los ventiladores permiten la circulación de O2. Las incubadoras de CO2 modulares y estándar se controlan con sensores de conductividad térmica o IR.

☘ Historia de Incubadora laboratorio

En el siglo XIX, los investigadores comenzaron a buscar el entorno in vitro ideal para mantener las reservas de cultivos celulares.

La primera incubadora de CO2 desarrollada consistió en una simple campana que contenía una vela encendida. Los cultivos se colocaban bajo la tapa del frasco junto a la vela encendida, antes de que el frasco se trasladara a un horno seco y caliente. Este sistema puede considerarse la primera incubadora de CO2 con camisa de aire.

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A finales de la década de 1960, se desarrollaron las primeras incubadoras comerciales de CO2. Fue durante este tiempo que New Brunswick Scientific (NBS) introdujo una gama de productos de incubadora incluyendo el Psychrotherm, el primer agitador refrigerado de incubadora, el Modelo G25 de gran capacidad estilo consola, y el agitador de baño de agua G76.

Estos modelos todavía se pueden encontrar operando en laboratorios de todo el mundo hasta el día de hoy.

Años 80s y 90s

En 1984, SHEL LAB introdujo la innovadora incubadora de uso general, que resultó ser muy popular en el mercado. Esta incubadora ofrecía un diseño único de camisa de aire caliente, puerta exterior calefactada y cinco elementos calefactores estratégicamente colocados para ofrecer una uniformidad de temperatura sin concesiones, sin puntos calientes.

A finales de los años 90, Torrey Pines Scientific desarrolló las primeras incubadoras de sobremesa basadas en Peltier capaces de enfriar y calentar. Estas incubadoras se comercializaron bajo el nombre comercial de EchoTherm.

Un nuevo siglo

En 2001, se concedió una patente para un sistema de control de estabilización de temperatura ambiente para incubadoras de laboratorio.

Este dispositivo fue capaz de mantener eficazmente la temperatura de la incubadora dentro de un rango deseado y de controlar con precisión la tasa de pérdida de calor de la incubadora a medida que aumentaba la temperatura ambiente.

En 2003, NBS comenzó la distribución mundial de una nueva línea de incubadoras de CO2 con un diseño de calentamiento directo y sin ventilador.

Estas incubadoras eran más ligeras que los diseños tradicionales con camisa de agua, e incluían los controladores de CO2 más avanzados jamás desarrollados, con diagnósticos a bordo, menú de ayuda y restablecimiento automático de la línea de base.

También en 2003, se concedió una patente para una incubadora de microplacas de alta eficiencia. Esta incubadora ofrecía una uniformidad y estabilidad superior de la temperatura a través de una construcción simple en la que se apilaban múltiples cámaras de incubación para conservar el espacio del laboratorio.

Las múltiples cámaras de incubación pueden ser controladas electrónicamente por un solo conjunto de control de temperatura en una incubadora maestra. En el interior de la cámara se instaló un depósito de agua que podía llenarse externamente.

En 2006, NBS introdujo dos nuevas incubadoras de CO2, Innova CO-170 y Excella CO-170, que ofrecían mayor espacio interno sin aumentar el tamaño externo.

En el mismo año, NBS también introdujo 14 nuevos agitadores, incluyendo cuatro nuevos agitadores de banco y de piso, dos nuevos agitadores de incubadora apilables I-26 e I26R que ahorran espacio y la nueva línea Excella®.

Se incrementa la innovación

En 2008, CARON presentó la nueva incubadora IR-CO2 de gran capacidad, la primera y única incubadora IR-CO2 de gran capacidad de alcance con un ciclo automático de descontaminación por calor húmedo que limpió la unidad durante la noche.

Esta incubadora también ofrecía un interior configurable por el usuario que podía soportar agitadores y rodillos de celda y un sistema opcional de recirculación de agua respetuoso con el medio ambiente.

En 2009, SANYO lanzó el primer y más rápido método de esterilización de H2O2 de la industria, la Incubadora de Cultivos Celulares GxP, MCO-19AIC (UVH), descrita como la solución de cultivo celular más completa para aplicaciones altamente reguladas o incubación convencional. Se consideró que éste era el nuevo estándar de la tecnología de incubación.

Esta incubadora utilizó el primer sistema de esterilización rápida de H2O2 de la industria, un proceso de descontaminación de menos de tres horas que sigue siendo el método más rápido disponible.

En 2010, BINDER lanzó el kit de suministro de gas BINDER, que aumenta la comodidad del usuario al cambiar automáticamente la fuente de suministro a una segunda botella de gas tan pronto como se vacía la primera botella de gas.

Esto evitó que los investigadores tuvieran que venir al laboratorio por la noche o durante el fin de semana para cambiar la botella de gas. El equipo también tenía una función de alarma acústica y óptica, así como una salida de alarma libre de potencial para sistemas de información externos.

😊 ¿Cómo se usa la incubadora de laboratorio?

Las incubadoras de laboratorio proporcionan un entorno controlado y libre de contaminantes para un trabajo seguro y fiable con cultivos de células y tejidos, regulando condiciones como la temperatura, la humedad y el CO2. Las incubadoras microbiológicas se utilizan para el crecimiento y almacenamiento de cultivos bacterianos.

Abundan los tipos y tamaños, incluyendo incubadoras de baño seco con uno o dos bloques, unidades de demanda biológica de oxígeno (DBO) ideales para estudios de insectos o plantas, incubadoras de agitación, hornos de hibridación, biorreactores y una amplia variedad de cámaras de prueba de laboratorio.

Encontrar el tamaño correcto para su aplicación particular es una tarea fácil, con tamaños que van desde pequeñas unidades de sobremesa hasta el tamaño de una habitación.

Las incubadoras de laboratorio son esenciales para el cultivo de células y tejidos, los estudios bioquímicos y hematológicos, el trabajo farmacéutico y el análisis de alimentos.

🔹 ¿Qué es la incubación en microbiología?

Las incubadoras microbiológicas, también llamadas incubadoras “sólo de calor” o “estándar”, tienen elementos de calentamiento y pueden proporcionar temperaturas de incubación que están por encima de la temperatura ambiente únicamente.

Si el laboratorio tiene una temperatura ambiente de unos 22°C, sólo pueden tratar temperaturas de incubación superiores a unos 27°C o incluso 30°C.

🔴 ¿Cuáles son las condiciones que debe tener una incubadora?

Control de temperatura

Aunque las células durarán semanas a temperaturas más bajas, no sobrevivirán más de unas pocas horas si se exponen a temperaturas más altas que las óptimas.

Para asegurar una temperatura constante para sus células, es crucial usar una incubadora que no se sobrecaliente una vez que haya alcanzado la temperatura establecida.

Los ventiladores ayudarán a normalizar la temperatura en toda la incubadora y pueden acelerar el tiempo de recuperación después de abrir la puerta.

También puede utilizar una segunda sonda de temperatura como red de seguridad, sólo en caso de que el termómetro primario no funcione correctamente.

Además de la temperatura, asegúrese de vigilar los niveles de humedad. Si éstos son demasiado bajos, el agua puede evaporarse rápidamente haciendo que las concentraciones de sal, minerales y solutos se eleven a niveles potencialmente tóxicos.

Para mantener una humedad óptima, evite el uso de un ventilador muy fuerte, pero mantenga un flujo de aire constante. Las fuentes externas de agua son buenas para aumentar los niveles de humedad, pero una sartén tradicional seguirá haciendo un trabajo eficaz, aunque más lento.

Gases reguladores

El dióxido de carbono está presente en una concentración del 5% en nuestros pulmones y ésta es a menudo la concentración utilizada en las incubadoras.

Existen diferentes sensores para CO2 y los modernos sensores infrarrojos utilizan una fuente de luz de silicona que mantiene la resistencia después de un uso intenso.

Estos sensores recuperan la concentración de CO2 más rápidamente después de que la puerta ha sido abierta, reduciendo el tiempo que sus células están en condiciones subóptimas.

Otro gas que usted necesita controlar en su incubadora es el oxígeno. La mayoría de las células están en ambientes hipóxicos in vivo, por lo que es importante mantener los niveles subatmosféricos de O2 en su incubadora.

Si desea mantener niveles de O2 muy bajos (<1%), puede utilizar un recipiente sellado con gas premezclado.

Mantén la puerta cerrada

Las mezclas de gases, la humedad y la temperatura cambian rápidamente una vez abierta la puerta y tardan mucho tiempo en recuperarse una vez cerrada.

Su organización puede hacer mucho para asegurar que usted mantenga un ambiente constante en el cual sus células puedan prosperar.

👉 Limpieza de la Incubadora laboratorio

Reducción de la contaminación

La limpieza es crítica para prevenir la contaminación en los cultivos celulares. El polvo y la suciedad pueden ser transportados por corrientes de aire creadas por el movimiento en el laboratorio.

El aire interior normal contiene de 100 a 1000 microorganismos por metro cúbico, todos los cuales circulan en cualquier momento, y la mayoría de ellos provienen de los billones de flora normal que viven en y sobre la piel.

Esto significa que los contaminantes pueden entrar cada vez que se abre la puerta de la incubadora. El laboratorio debe limpiarse por lo menos una vez al mes, incluyendo la limpieza y desinfección del gabinete de seguridad biológica, baño de agua, centrífuga, microscopio y todos los rincones del laboratorio y alrededor del equipo.

El almacenamiento de cartón en o alrededor de refrigeradores y congeladores debe ser eliminado ya que el cartón puede mojarse y producir hongos.

Los artículos no deben almacenarse en la parte superior de la incubadora porque el polvo y la suciedad pueden ser arrastrados dentro de la cámara a través de las corrientes de aire creadas durante la apertura de la puerta.

Desinfectantes para incubadoras

Aunque hay muchos desinfectantes disponibles, no todos son seguros para las células. Algunos desinfectantes fuertes emiten vapores que entran en la incubadora y afectan el crecimiento celular.

Estos humos contienen sustancias químicas orgánicas volátiles (COV) que pueden inducir la expresión de choque térmico y otras proteínas de estrés.

Los productos químicos comunes de laboratorio como el fenol, el alcohol isoamílico y el beta-mercaptoetanol son los COV, pero los productos de limpieza y desinfectantes de laboratorio, e incluso los limpiadores y ceras para suelos, producen vapores nocivos.

El equipo de tecnología de Thermo Fisher Scientific probó una serie de desinfectantes que cumplían con los siguientes criterios: ampliamente efectivos contra una amplia gama de microorganismos e inofensivos (no corrosivos) para los componentes de la incubadora. Un desinfectante de amonio cuaternario era el que mejor cumplía los requisitos.

La versión básica está ampliamente disponible en varios fabricantes. Algunos ejemplos incluyen Lysol No Rinse (Reckitt Benckiser, Slough, Reino Unido), Conflikt (Decon Labs, King of Prussia, Penn.) y Fermacidal-D (Labotect, Goettingen, Alemania).

Una solución del 2% del mismo desinfectante de amonio cuaternario que se usa para desinfectar el interior de la incubadora se agrega a la bandeja de agua.2 Se deben evitar los limpiadores que contengan cloro, porque el blanqueador de cloro y sus derivados con actividad oxidante pueden corroer el acero inoxidable y el cobre y son tóxicos para las células cultivadas.

Limpieza de la incubadora

 Una incubadora de CO2 debe ser fácil de limpiar con un manejo mínimo.

La limpieza regular es necesaria para proteger las células de la contaminación y para mantener la incubadora funcionando adecuadamente. Las directrices incluyen:

Cambie el agua de la incubadora (no sólo rellénela, sino que vacíe y añada agua fresca, estéril y destilada) al menos cada dos semanas.

Limpie la incubadora una o dos veces al mes (dependiendo del número de usuarios). No es necesario autoclavarlo todo; rocíe o limpie la incubadora con etanol al 70%, especialmente la bandeja de agua (no rocíe etanol en los sensores). Deje secar al aire.

Revise la incubadora una vez por semana y deseche los cultivos no utilizados.

Si alguna de las rejillas de ventilación de la habitación está soplando hacia la incubadora, redirija el aire si es posible, ya que los conductos de aire acondicionado pueden contener moho.

Retire todo lo que esté almacenado en la parte superior de la incubadora y limpie la parte superior de la unidad cada dos semanas para eliminar el polvo. Limpie las puertas y manijas con etanol al 70%. Limpie todos los derrames inmediatamente.

🍁 Aplicaciones de la incubadora en el laboratorio

Ejemplos de aplicaciones en la incubadora

Cultivos de células en crecimiento

  • Reproducción de colonias de gérmenes con posterior recuento de gérmenes en la industria alimentaria
  • Reproducción de colonias de gérmenes y posterior determinación de la demanda bioquímica de oxígeno (control de aguas residuales)
  • Reproducción de microorganismos como bacterias, hongos, levaduras o virus
  • Cría de insectos y eclosión de huevos en zoología
  • Almacenamiento controlado de muestras
  • Cultivo de cristales/cristales de proteínas

🌟 Cuidados de una Incubadora laboratorio

Mantenimiento general de la incubadora

Las incubadoras requieren un mantenimiento mínimo. Reemplace los filtros HEPA cada seis meses a un año, dependiendo del número de usuarios, la limpieza de la unidad y el diseño del laboratorio y de la incubadora.

Maneje los filtros HEPA sólo por la carcasa externa, sin tocar el medio filtrante. Antes de reemplazar un filtro HEPA en una incubadora de CO2, inspeccione el medio para asegurarse de que no haya roturas o desgarros.

El filtro HEPA debe estar ubicado en la cámara de incubación para su mejor funcionamiento y ser fácil de reemplazar sin necesidad de usar herramientas. Reemplace los filtros de entrada de gas (donde el gas CO2 entra en la incubadora) cada seis meses a un año.

La calibración de CO2 debe ser monitoreada regularmente usando un analizador de CO2 o un sensor portátil, desde una vez al mes hasta trimestralmente, dependiendo del tráfico de entrada y salida de la incubadora.

La frecuencia con la que se realiza el ciclo de esterilización por calor depende de la limpieza del laboratorio, del número de personas que utilizan la incubadora, de la frecuencia con la que se abre la puerta y de la conveniencia de cerrar la incubadora durante la noche. La mayoría de los usuarios utilizan esta función de una vez al mes a una vez cada seis meses.

Quizás lo más importante para el mantenimiento de la incubadora es mantener un alto nivel de agua en la bandeja de agua. Una disminución de la humedad provoca la evaporación del agua del medio de cultivo.

Cuando el agua se evapora, las sales, minerales, aminoácidos, etc., cuidadosamente balanceados en el medio de crecimiento se vuelven demasiado concentrados, lo que puede resultar en toxicidad y muerte celular. La baja humedad también puede dañar el sensor de CO2.

📌 Incubadora laboratorio precios

Los precios varían de acuerdo con la aplicación.  Algunas aplicaciones incluyen estudios bioquímicos, bacteriología y estudios hematológicos. Hay aplicaciones de incubadora de propósito general, cultivo bacteriano e investigación de determinaciones microbiológicas, ensayos de estabilidad farmacéutica, procesamiento de alimentos y aplicaciones de aparatos de rodillo de Gran Escala QC.

En ese sentido, es posible encontrar incubadoras cuyo costo apenas supera los 30 dólares, hasta sobrepasar los 6000 dólares. Cuando se trata de incubadoras para bebés prematuros, el precio, por lo general, ronda los 50,000 dólares.

A continuación te presentamos dos vídeos con los esperamos puedas incrementar los conocimientos adquiridos acerca del correcto uso de las incubadoras.

Materiales De Laboratorio Para Calentar: Cuales Son, A Fuego Directo

Los materiales de laboratorio para calentar son instrumentos que se utilizan en los laboratorios para someter a altas temperaturas diversas sustancias tanto sólidas como líquidas.

La temperatura es una de las variables físicas más importantes que se utiliza para controlar los experimentos físicos, biológicos y químicos.

Un requisito común en un experimento de laboratorio es la necesidad de calentar una muestra. Varios equipos pueden hacer esto, incluyendo el quemador Bunsen, el horno de laboratorio, la placa caliente y la incubadora.

¿Qué son los materiales de laboratorio para calentar?

Los instrumentos de laboratorio para calentar son resistentes a altas temperaturas, con los que se pueden calentar sustancias sólidas y líquidas. La cápsula de porcelana es un ejemplo de estos materiales, también están los tubos de ensayo, los matraces, etc.

¿Cuáles son los materiales de laboratorio para calentar?

Quemador Bunsen

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El quemador Bunsen es una de las piezas más conocidas del equipo de laboratorio que se encuentra en los laboratorios de ciencias de las escuelas. Consiste en un tubo mezclador que se utiliza para generar una mezcla de gas y aire.

Una vez encendida, la intensidad de la llama se puede variar abriendo o cerrando un orificio de aire ajustable. Los quemadores Bunsen se utilizan normalmente para calentar vasos de precipitados de líquido con el fin de inducir reacciones químicas.

Los quemadores Bunsen también presentan desventajas: No pueden controlar la temperatura con la misma precisión que los calentadores electrónicos y el uso de una llama abierta puede ser peligroso.

Horno de laboratorio

Se utiliza un horno de laboratorio para calentar las muestras (generalmente sólidos) a una temperatura determinada, durante un tiempo determinado, dentro de un entorno cerrado. Los dispositivos se utilizan en todas las disciplinas científicas para el recocido, el secado y la esterilización.

A diferencia de los hornos de cocción estándar, los hornos de laboratorio ofrecen precisión y uniformidad en las temperaturas establecidas. Los hornos de laboratorio están diseñados para asegurar que cada punto dentro del dispositivo esté a la temperatura objetivo.

Placa caliente

Las placas calientes son aparatos eléctricos sencillos que se utilizan para calentar muestras dentro del aire. Consisten en una superficie calefactora y una serie de controles para cambiar la temperatura. Las placas calientes se utilizan generalmente cuando la temperatura deseada está por encima de los 100 grados centígrados (212 grados Fahrenheit) y se consideran mucho más seguras que los calentadores de llama abierta como los quemadores Bunsen.

Incubadora de laboratorio

Se utiliza una incubadora de laboratorio para calentar una muestra biológica a una temperatura determinada, que normalmente se ha configurado para optimizar el crecimiento de la muestra biológica. Dos tipos principales de incubadoras incluyen las incubadoras de gas y las incubadoras microbiológicas.

La incubadora de gas es un dispositivo sellado similar a un horno que bombea una concentración fija de dióxido de carbono al espacio de incubación. Esto permite el control de la humedad y el pH, así como de la temperatura.

Una incubadora microbiológica no inyecta gas en el espacio de incubación y es esencialmente un horno de laboratorio que funciona entre 5 y 70 grados Celsius (41 y 158 grados Fahrenheit). Esto los hace útiles para el crecimiento y almacenamiento de cultivos bacterianos que no requieren condiciones específicas de humedad y pH.

Cápsula de porcelana

Es un instrumento que resiste elevadas temperaturas y permite carbonizar sustancias y compuestos químicos.

Matraz

Es un envase de vidrio que se usa para mezclar soluciones químicas. Predominan en forma de esfera con cuello estrecho y recto. En este recipiente se contienen líquidos.

lee mas sobre el matraz aqui

Materiales de laboratorio para calentar a fuego directo

Un quemador Bunsen, llamado así por Robert Bunsen, es una pieza común de equipo de laboratorio que produce una sola llama de gas abierta, que se utiliza para la calefacción, la esterilización y la combustión.

El gas puede ser gas natural (que es principalmente metano) o un gas licuado de petróleo, como el propano, butano, o una mezcla de ambos.

Un quemador Bunsen también se utiliza en los laboratorios de microbiología para esterilizar los equipos y para producir una corriente ascendente que aleja los contaminantes transportados por el aire del área de trabajo.

Existen otros quemadores basados en el mismo principio. Las alternativas más importantes al quemador Bunsen son:

Quemador Teclu

La parte inferior de su tubo es cónica, con una tuerca redonda debajo de su base. El espacio, fijado por la distancia entre la tuerca y el extremo del tubo, regula la entrada de aire de forma similar a las ranuras abiertas del quemador Bunsen.

El quemador Teclu proporciona una mejor mezcla de aire y combustible y puede alcanzar temperaturas de llama más altas que el quemador Bunsen.

Quemador Meker

La parte inferior de su tubo tiene más aberturas con una sección total mayor, admitiendo más aire y facilitando una mejor mezcla de aire y gas. El tubo es más ancho y su parte superior está cubierta con una rejilla de alambre.

La rejilla separa la llama en un conjunto de llamas más pequeñas con una envoltura externa común, y también evita el retorno de la llama al fondo del tubo, lo cual es un riesgo en altas relaciones aire/combustible y limita la tasa máxima de entrada de aire en un quemador Bunsen convencional.

Temperaturas de llama de hasta 1.100-1.200 °C (2.000-2.200 °F) son alcanzables si se utilizan correctamente. La llama también arde sin ruido, a diferencia de los quemadores Bunsen o Teclu.

Quemador Tirrill

La base del quemador tiene una válvula de aguja que permite la regulación de la entrada de gas directamente desde el quemador, en lugar de desde la fuente de gas. La temperatura máxima de la llama puede alcanzar los 1560 °C.

Materiales de laboratorio de vidrio para calentar

Vaso precipitado

Es un envase con forma cilíndrica, elaborado en vidrio Pírex. Por lo general se usa en los laboratorios para calentar sustancias o para traspasar líquidos. Además de su forma cilíndrica, su fondo es plano. Sus capacidades son diversas desde 1ml hasta varios litros. Conoce más del vaso precipitado aquí

Matraz de Erlenmeyer

Es uno de los recipientes que se usan con gran frecuencia en los laboratorios. Con ellos se pueden armar aparatos de destilación o para procurar la reacción de sustancias que debes ser sometida a periodos largos de calentamiento.

También se utilizan para contener líquidos que ameritan conservación por un tiempo prolongado.

Balón de destilación

Es un recipiente que se caracteriza por su cuello largo y la forma esférica de su cuerpo. Su diseño garantiza el calentamiento de manera uniforme de distintas sustancias. Gracias a su base redondeada fácilmente es posible agitar su contenido, impidiendo el derrame de las sustancias fuera del envase.

En ocasiones lleva un tubo de desprendimiento lateral, unido al cuello del envase, que permite la expulsión de vapores cuando se lleva a cabo el proceso de destilación con dirección al condensador.

Aquí mas características del Balón de destilación

Tubo de ensayo

Se trata de un tubo pequeño, con forma cilíndrica, elaborado en vidrio, con una abertura en uno de sus extremos (puede tener una tapa), mientras que el extremo opuesto es cerrado y redondeado. Este material se utiliza para contener muestras de líquidos o sólidos, en pequeñas cantidades.

También pueden ser usados para llevar a cabo reacciones químicas en pequeña escala. Esto incluye la exposición del contenedor a ciertas temperaturas.  

Luna de reloj

Es una lámina elaborada en vidrio. Su forma es circular. En los laboratorios se usa con frecuencia para la evaporación de líquidos, para establecer el peso de los sólidos o como cubierta de vasos precipitados. También  se usa para la contención de sustancias, en parte, corrosivas.

Mechero de alcohol

Se trata de una fuente de calor, aunque su intensidad es baja. Este funciona con alcohol etílico. Para mantener la seguridad de los laboratoristas, la entrada de oxígeno se cubre con una pieza para sofocar el fuego. Son usados con frecuencia en los laboratorios para hacer combustión.

Crisol

Se trata de un envase elaborado en porcelana y que tiene la capacidad de soportar elementos a temperaturas muy altas.

Cápsula

Elaboradas en porcelana, las cápsulas son pequeños contenedores, de forma semiesférico, que tienen un pequeño pico en un costado. Normalmente se utiliza en la evaporación del exceso de solvente en una muestra.

Estos recipientes de porcelana poseen diferentes tamaños y formas, además sus capacidades van desde los 10 ml hasta los 100 ml. 

Autoclave Laboratorio: Uso, Función, Tipos, Cuidados

Los términos Autoclave y Esterilizador a vapor son esencialmente sinónimos y a menudo se usan indistintamente. El término “autoclave” se utiliza con mayor frecuencia en entornos de laboratorio, mientras que el término “esterilizador” se utiliza con mayor frecuencia en hospitales o entornos farmacéuticos. Mira aquí todo lo relacionado con el autoclave de laboratorio.

Tipos de autoclave de laboratorio

La esterilización por gravedad o por pre vacío (prevac) Por lo general, conforman los métodos por los cuales los autoclave llevan a cabo su proceso de esterilización. En algunos casos es posible la combinación de ambos métodos.

Aunque ambos tipos de autoclaves esterilizan por medio de vapor de alta temperatura y utilizan la presión como un medio para permitir que el vapor desplace el aire ambiental en la cámara para penetrar en los medios de esterilización, los medios por los cuales ocurren estos mecanismos difieren y, por lo tanto, son más propicios para ciertos tipos de medios que para otros.

Autoclave de laboratorio por gravedad

Este tipo de autoclave también recibe el nombre de autoclave por desplazamiento. Por sus características se considera que es el más adecuado y básico para llevar a cabo la esterilización de los instrumentos de laboratorio más comunes, entre los que se encuentran los elaborados con acero y cristalería, también se incluyen los residuos biopeligrosos.

La autoclave inducida por gravedad consiste en bombear vapor a la cámara del autoclave, lo que desplaza el aire ambiente y lo fuerza a salir de las válvulas de escape, de modo que el vapor restante pueda esterilizar el contenido. 

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Su diseño redunda en la ventaja que ofrece en su manejo. Este tipo de autoclave se presenta más confiable y asequible debido a la falta de dependencia de mecanismos periféricos para desplazar el aire ambiente con vapor.

El vapor penetra en su interior sin mayor dificultad, debido a que tanto los materiales, casi en su totalidad, como los artículos que van a ser esterilizados, poseen un diseño simple. Esto permite el desplazamiento del vapor de manera amplia para una mejor esterilización.

Esta es una de las principales razones por las que los autoclaves que con mayor frecuencia se encuentran en el mercado son los de gravedad. Son ampliamente recomendados en la mayoría de sus usos.

Autoclave de laboratorio al vacío

Por su parte, el autoclave de pre-vacío o esterilización, como también se le conoce, es el indicado cuando el aire no puede ser removido de los materiales de esterilización, con facilidad.

Entre estos materiales se incluye artículos de considerables dimensiones o porosos, como sucede con las jaulas para animales, las camas que deben ser esterilizadas y los kits que se utilizan en cirugía y vienen envueltos.

Gracias a la función de vacío de estos autoclaves es posible llevara a cabo una esterilización profunda del contenido, toda vez que elimina totalmente el aire del ambiente.

Esto permite que el vapor que se encuentra a muy altas temperaturas, penetre esterilizando zonas que, por lo general, se encontrarían ocupadas por el aire ambiente. Su eficiencia se puede incrementar al esterilizar determinados artículos con áreas de difícil acceso.

Autoclave de laboratorio definición

Una cámara para esterilizar con vapor a presión. El autoclave original era esencialmente una olla a presión en la que el vapor apretaba la tapa.

Tiempos de esterilización en autoclave de laboratorio

Para ser eficaz, el autoclave debe alcanzar y mantener una temperatura de 121° C durante al menos 30 minutos utilizando vapor saturado a una presión de al menos 15 psi. Puede ser necesario aumentar el tiempo de ciclo dependiendo de la composición y el volumen de la carga.

La velocidad de escape está íntimamente relacionada con la naturaleza de la carga. El ciclo de escape rápido es el más adecuado para tratar el material seco.

Entre tanto, los desechos bilógicos y los líquidos necesitan de un escape más lento, de esta manera, se evita volver a hervir los líquidos sobrecalentados.

Material                                

Ciclo de líquidos

(Escape lento)                                                

Recomendado para:

  • Uso con recipientes de vidrio con cierres ventilados; sólo /3 de su capacidad. 
  • Medios líquidos                
  • Líquidos no inflamables
  • Soluciones acuosas
  • Residuos biológicos líquidos

Material

Sólidos o Ciclo seco

(Escape rápido)              

Recomendado para:

  • Cristalería: vacía e invertidasin cierres herméticos o impermeables
  • Artículos duros secos, ya sea desenvueltos o envueltos en un envoltorio poroso
  • Artículos de metal con partes porosas
  • Otros materiales porosos

Material

Productos envasados o ciclo de pre-vacío

(Limpio: Escape rápido

Sucio: Escape lento)

Recomendado para:

  • Artículos de vidrio que deben ser esterilizados en posición vertical y/o que pueden atrapar aire.
  • Artículos secos envueltos que pueden atrapar el aire
  • Cajas de puntas de pipeta
  • Descontaminación de objetos punzantes
  • (en contenedores de recolección)
  • Descontaminación de residuos de riesgo biológico, en bolsas de autoclave; puede ser húmeda o seca.

 

Autoclave industrial

Se trata de un recipiente a presión que se caliente con una puerta de presión rápida, esta usa presiones altas para poder procesar y curar materiales.

Con el calor y la alta presión, el autoclave industrial tiene la capacidad de curar productos y desinfectar dispositivos, instrumentos y máquinas.

En ocasiones, en el proceso, también pueden incorporar el vacío. Con la industria, la función de este aparato cambia. En laboratorios y hospitales estos equipos son usados para desinfectar y esterilizar los equipos.  

Entre tanto, en la industria aeroespacial, por ejemplo, estos aparatos se usan para curar las diversas partes de los aviones. A través de la puerta rápida es posible un acceso al recipiente, esto facilita tanto la entrada como la salida del producto.

A pesar de que el uso final de autoclave puede variar, el concepto de su funcionamiento es el mismo. Se fabrican varios tipos de autoclaves, como los autoclaves de adhesión/vulcanización de caucho, los autoclaves para compuestos y muchos otros tipos de autoclaves industriales.

Manejo del autoclave

El autoclave debe utilizar altas temperaturas de vapor (alrededor de 121 °C) además de presiones elevadas (unas 15 psi), por media hora (30 minutos) aproximadamente, para poder alcanzar la descontaminación deseada. De esta manera, elimina los microorganismos deshidratando la célula en condiciones severas.

La naturaleza de la carga incide en la velocidad de escape. Es posible alcanzar ciclos de escape rápido cuando se refiere a materiales sólidos secos.

Las cintas indicadoras se utilizan a menudo para validar la eficacia del autoclave.

PROCEDIMIENTO

1. Use equipo de protección personal adecuado (PPE)

Las condiciones de operación de alta presión y temperatura que se encuentran durante el autoclave presentan riesgos potenciales de quemaduras por calor o explosión.

Para contar con el EPP adecuado se debe poseer gafas de seguridad, bata de laboratorio, guantes que resistan las altas temperaturas y calzado cerrado.

Se debe contar con todo el  material mencionado al momento de cargar y descargar materiales del autoclave. Cuando se trate de muestras líquidas, use un delantal y un protector facial como EPP adicional.

Preparación de los materiales a cargar

Se procede a separar los materiales que son compatibles y los que no con el autoclave.

En ese sentido, no todos los materiales son compatibles con el autoclave, a pesar de que se trata de un método ampliamente usado, por lo económico, para la descontaminación.

Por lo regular, los materiales que se pueden evaporar o se pueden fundir con el vapor a alta presión no son compatibles con el autoclave.

Los disolventes orgánicos, el polietileno, los metales y los plásticos que generan poca resistencia al calor y hasta el acero inoxidable están incluidos dentro de esto materiales no compatibles.  Nunca autoclave productos químicos inflamables, corrosivos, tóxicos, reactivos o radioactivos.

Por otra parte, los materiales que si son compatible son: el vidrio borosicalato Pyrex, guantes, puntas de pipetas, acero inoxidable, papel (cuando se coloca dentro de las bolsas del autoclave) y soluciones de medios.  

Material de empaque

Después de identificar los materiales compatibles con el autoclave, también es importante el embalaje adecuado, ya que garantiza la seguridad y la eficacia del autoclave.

Estos son los principios básicos de los materiales de embalaje:

Utilice siempre un recipiente secundario de polipropileno o acero inoxidable.

Se debe llenar la ampolla, cerca de ½, se aflojan las tapas o use ventilación para muestras líquidas.

Nunca llene los recipientes de más de 2/3 de su capacidad con la tapa completamente apretada.

Debe examinar el recipiente de vidrio para evitar que no se posea grietas. Si se identifican grietas, deseche los objetos de vidrio en un recipiente adecuado. Nunca autoclave un recipiente de vidrio roto conocido.

Utilice siempre bolsas compatibles con autoclaves para envasar los residuos.

En las bolsas debe haber indicadores. La posibilidad de abrirse en los extremos antes de cargar, es de mucha ayuda, de esta manera posibilita que el vapor ingrese.

Nunca sobrecargue las bolsas o el contenedor para permitir un flujo de vapor suficiente para una esterilización completa. Deje espacio entre los artículos.

No mezcle materiales incompatibles.

Evite, a toda costa, colocar objetos afilados en la bolsa de basura.

Cargar material

Revise el interior del autoclave para asegurarse de que no quede ningún peligro potencial del usuario anterior.

Antes de cargar los materiales, debe limpiar los desagües de esta manera es posible la correcta circulación.

Debe procurar que las bolsas no entren en contacto con las paredes internas del autoclave, de esta manera se evita que se derritan.

Para los líquidos y los materiales secos, es necesario diferentes ciclos y se deben esterilizar en autoclave por separado.

Debe cerrar fijamente la puerta.

Funcionamiento del autoclave de laboratorio

La operación del autoclave debe estar en manos de personal calificado para ello. Las veces que sea necesario, consulte al manual del equipo pues, los protocolos de operación, con regularidad difieren según el tipo de autoclave.

Luego de cerrar correctamente la puerta del autoclave, establezca la temperatura a 121 °C y conserve una presión de al menos 15 psi.

Se beben tomar en cuenta los siguientes factores para poder ajustar el tiempo en el ciclo del autoclave:

Las consideraciones de equipo de manual de fabricante.

El material cargado en el interior del autoclave: líquido o seco.

La cantidad de estos materiales.

Forma y tamaño del contenedor utilizado.

Conductividad térmica del envase y de los materiales.

Finalidad de la descontaminación.

Descarga de material(es) esterilizado(s) en autoclave

Use el equipo de protección personal adecuado, tal como se describe anteriormente.

En primer lugar, debe asegurarse que tanto la presión como la temperatura se encuentren en un rango seguro.

Para liberar los restos de vapor dentro del autoclave, debe pararse detrás de la puerta y abrirla con cuidado.

Debe dejar reposar el material que se encuentra dentro del autoclave por al menos 10 minutos, así se libera el vapor o aire caliente que puede estar atrapado dentro del material.

No agite ningún material líquido mientras lo saca del autoclave. Las veces que sea necesario, debe colocar una etiqueta sobre el material que la identifique como caliente y así evitar quemaduras por calor en una persona que desconozca que el material ha sido autoclavado recientemente.

Antes de transportar el material dentro o fuera del laboratorio, es aconsejable esperar a que el material se enfrié a temperatura ambiente.

Para llevar a cabo una adecuada transportación, debe asegurarse de usar una contención adecuada.

Los materiales y las condiciones del autoclave deben quedar registrados en detalle en el registro de usuario.

¿Cuánto tiempo se esteriliza en autoclave de laboratorio?

Muchos autoclaves se utilizan para esterilizar equipos y suministros sometiéndolos a vapor saturado presurizado a 121 °C (249 °F) durante unos 15-20 minutos, dependiendo del tamaño de la carga y del contenido

Ciclos estándar de autoclave para materiales de uso común

Lavandería: 121°C durante 30 minutos con 15 minutos de pre-vacío de 27 pulgadas de mercurio (pulg. Hg.).

Cristalería y basura: 121°C durante 1 hora con 15 minutos de pre-vacío de 27 pulgadas Hg.

Líquidos: 121°C durante 1 hora por cada galón.

¿Qué es la esterilización por Tindalización?

La Tindalización consiste esencialmente en calentar la sustancia hasta el punto de ebullición (o sólo un poco por debajo del punto de ebullición) y mantenerla allí durante 15 minutos, tres días seguidos.

Después de cada calentamiento, el período de descanso permitirá que las esporas que han sobrevivido germinen en células bacterianas; estas células serán destruidas por el calentamiento del día siguiente.

Durante los períodos de descanso, la sustancia que se está esterilizando se mantiene en un ambiente húmedo a una temperatura ambiente cálida, lo que favorece la germinación de las esporas.

Cuando el ambiente es favorable para las bacterias, favorece la germinación de las células de las esporas, y las esporas no se forman a partir de las células de este ambiente.

El proceso de Tindalización es usualmente efectivo en la práctica. Pero no se considera totalmente confiable – algunas esporas pueden sobrevivir y luego germinar y multiplicarse.

No se utiliza a menudo hoy en día, pero se utiliza para esterilizar algunas cosas que no pueden soportar el calentamiento a presión, como las semillas de plantas.

Agitador magnético

El agitador magnético tiene varias aplicaciones y se utiliza activamente en muchas industrias diferentes. La tarea principal que realiza es agitar o mezclar muestras de fluidos. Esto es muy útil en la industria alimentaria y química, además de que también se utiliza en otras industrias como la biotecnología.

¿Qué función tiene el agitador?

Un agitador magnético es un dispositivo ampliamente utilizado en laboratorios y consiste en un imán giratorio o un electroimán estacionario que crea un campo magnético giratorio. Este dispositivo se utiliza para hacer una barra de agitación, sumergir en un líquido, girar rápidamente, o agitar o mezclar una solución, por ejemplo. Un sistema de agitación magnética generalmente incluye un sistema de calentamiento acoplado para calentar el líquido.

¿Qué es un agitador magnético de laboratorio?

Un agitador magnético es un equipo utilizado para crear un campo magnético giratorio. El agitador magnético está diseñado de tal manera que hay una barra magnética pequeña y un soporte o placa que contiene el imán giratorio.

En general, la barra magnética está recubierta de plástico y la placa contiene un imán giratorio. Es posible crear un campo magnético giratorio con la ayuda de un imán giratorio.

Agitador magnético casero

Para construir un agitador magnético casero se necesitan los siguientes materiales:

  • Ventilador del ordenador
  • Imanes pequeños: http://www.dealextreme.com/p/super-strong-rare-earth-re-magnets-8mm-20-pack-4248 (envío gratuito)
  • Plástico moldeable (polimorfo, instamorfo, shapelock)
  • Lexan
  • Baterías
  • Superpegamento (cianoacrilato)

1 Unir los imanes con el ventilador

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Antes de comenzar debe limpiar cuidadosamente el ventilador. Tenga en consideración el cable rojo y azul que normalmente traen los ventiladores. En caso de haber un tercer cable, si es de color blanco no le debe prestar atención.

Utilice la pega para fijar los imanes en los lados opuestos del cabezal del ventilador. Estos deben estar bien fijos. Las polaridades de los imanes deben estar opuestas con la cara hacia arriba.

2 Los espaciadores

En este paso usted requerirá de separadores previo a la colocación de una superficie plana en la parte superior.

Es posible utilizar casi cualquier material para que haga las veces de espaciadores, en ese sentido, puede emplear monedas, por ejemplo.

También pude utilizar algo de plexiglás que tenga a disposición para colocarlo en los bordes del ventilador. Lo importante es que los espaciadores superen el perfil del ventilador con los imanes.

3 Colocación de la plataforma

Para la colocación de la plataforma será necesario cortar un pequeño trozo de plexiglás que irá encima del ventilador.

A continuación, utilice algún material fino (delgado), que sea impermeable, por su puesto, para adherirlo a los espaciadores.

4 Elaboración de la barra de agitación

Para la elaboración de la barra de agitación se lleva a cabo mediante el encaje de imanes en el plástico moldeable. El procedimiento es simple,  tan solo debe colocar el plástico en un envase que contenga agua a altas temperaturas hasta que se aclare.

Tome dos imanes, con las polaridades opuestas, colóquelos encima del plástico y envuelva con mayor cantidad de cinta adhesiva hasta cubrir en su totalidad los imanes.

Una vez realizado esto, debe procurar que la barra tenga forma cilíndrica, con los imanes de disco  esto se logra redondeando los bordes con los imanes de disco empotrados dentro.

5 Encendido del agitador magnético

Con cualquier fuente de tensión se puede proceder al encendido del agitador magnético.

Pero hay que estar pendientes de que los imanes pueden acoplarse, sin problemas, desde el ventilador a la barra de agitación.

La barra de agitación no trabajará como se espera en caso de que la velocidad sea muy alta. Para comenzar, es recomendable utilizar baterías de 9V. Con un voltaje bajo es posible tener los resultados esperados.

6 Use el agitador magnético

Para llevar a cabo tareas con el agitador magnético casero, utilice un envase cuyas dimensiones permitan que la barra de agitación magnética comience a girar.

Debido a lo pequeño del dispositivo, es posible utilizar un escritorio para colocarlo, de esta manera, podrá remover bebidas frías.

No es recomendable utilizar líquidos calientes pues, esto produce que la barra de agitacion se suavice y pierde la forma en consecuencia.

Para mejorar su desempeño, puede utilizar cerámica para incrustar imanes en ella y esmaltar la barra de agitación.

Agitador magnético con calentamiento

Dependiendo de la aplicación, puede configurar su agitador magnético con placas calientes para calentar sus muestras a medida que se agitan. Con el uso de placas calentadoras, puede mezclar una amplia variedad de muestras para diferentes aplicaciones.

Algunos agitadores magnéticos tienen una función de calentamiento que puede calentar el matraz desde abajo, mientras que otros tienen una función de velocidad variable. En líquidos muy viscosos, la barra de agitación sólo puede ser eficaz girando a las velocidades más lentas, mientras que cuando se hace una solución a partir de cristales pesados (CuSO4, por ejemplo), una velocidad rápida suele ayudar a disolver el sólido más rápidamente.

Funciones y usos de un agitador magnético:

  • Los agitadores magnéticos también se conocen como placas de agitación magnética y se utilizan muy a menudo para experimentos en química y biología.
  • Son muy útiles cuando se necesita mezclar componentes, ya sean sólidos o líquidos y obtener una mezcla líquida homogénea. Algunas de las muestras comunes incluyen medios de crecimiento bacteriano, así como soluciones tampón.
  • La función principal de un agitador es agitar el líquido para acelerar las reacciones o mejorar las mezclas. Un agitador magnético se utiliza a menudo con placas calientes.

Tipos de agitadores magnéticos:

Hay varios tipos de agitadores magnéticos disponibles y todo depende de su selección de tamaño, aplicación y configuración. A continuación se enumeran los diferentes tipos:

Mini-agitador magnético:

Como su nombre indica, el mini-agitador magnético es un agitador de tamaño compacto que ocupa muy poco espacio y permite a los usuarios regular la velocidad con gran precisión con la ayuda de los controles proporcionados. Ha sido sabiamente diseñado para resistir a las sustancias químicas dañinas presentes en el entorno de un laboratorio. Además de que también consiste en un regulador de velocidad que asegura que el dispositivo nunca exceda la velocidad máxima.

Agitador magnético con temporizador:

Otra vez el nombre lo dice todo. Este es el tipo de agitador que tiene la capacidad de apagar automáticamente el motor después de la cantidad de tiempo establecida. La forma en que esto funciona es que utiliza un temporizador incorporado para apagar el agitador cuando el período de tiempo pre-seleccionado ha terminado. Además, la velocidad también se reduce automáticamente y la carga se elimina automáticamente.

Agitador magnético de alta resistencia:

Los agitadores magnéticos de alto rendimiento son fieles a su nombre. Tienen una mayor resistencia química y son muy duraderos, además de tener una gran capacidad de mezcla. Además disponen de un dispositivo de control electrónico interno que regula automáticamente la velocidad respecto a la carga. Por lo tanto, el agitador magnético de alta resistencia es un instrumento perfecto para su uso en un laboratorio o en un entorno de producción.

Agitador magnético alimentado por batería:

El agitador magnético alimentado por batería es muy útil cuando no hay toma de corriente. Su principal aplicación es en incubadoras. Consisten en patas de goma y su velocidad puede ser controlada con la ayuda de las perillas de control de velocidad suministradas. En general, las pilas alcalinas se pueden utilizar con estos dispositivos, aunque las pilas recargables deberían funcionar correctamente.

Agitador magnético de turbina de aire:

Si usted tiene la necesidad de agitar el líquido hasta un litro que el separador de turbina operado por aire es el equipo ideal. La mayor ventaja es que elimina los peligros asociados con las chispas de las fuentes eléctricas.

Importancia del agitador magnético en la preparación de mezclas

Una de las principales ventajas de un agitador magnético es que minimiza el riesgo de contaminación ya que sólo hay una barra magnética inerte que se coloca dentro de la muestra (fluido).

Además, también se puede limpiar fácilmente. Un agitador manual no es tan consistente como el magnético y el magnético es también crítico para la mezcla reproducible o la mezcla en una escala de tiempo larga. Por ejemplo, la diálisis de proteínas requiere una mezcla de muestras de varias horas o durante la noche y es sensible a la contaminación bacteriana.

Precio del agitador magnético

Es posible adquirir estos aparatos en línea. Los precios varían de acuerdo con el modelo, la marca y el tipo de agitador magnético que se necesite. Es posible encontrar agitadores magnéticos sumamente económicos a partir de 70 dólares. Algunos llegan a sobrepasar los 1000 dólares.

Para que posesa mayor información sobre el funcionamiento del agitador magnético, a continuación colocamos un vídeo para que enriquezcas tus conocimientos:

TRÍPODE DE LABORATORIO: Para Qué Sirve, Uso, Características

Un trípode de laboratorio es una pieza de equipo de tres patas que se utiliza comúnmente para realizar experimentos en laboratorios.

Se utiliza como plataforma para sostener y soportar objetos de vidrio, como vasos de precipitados y frascos, durante los experimentos y cuando los objetos de vidrio no están en uso.

La altura de un trípode es fácilmente ajustable para adaptarse a las diferentes necesidades individuales.

🌡 ¿Qué es trípode de laboratorio?

El trípode de laboratorio es una suerte de armazón que consta de tres patas y que sirve para colocar diferentes frascos y matraces.

Los trípodes suelen ser de acero inoxidable o aluminio y están ligeramente construidos para que sean portátiles dentro del laboratorio.

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A menudo se coloca una tela metálica en la parte superior del trípode para proporcionar una base plana para la cristalería. Los trípodes son generalmente lo suficientemente altos para colocar un quemador Bunsen debajo.

🔬 ¿Quién invento el trípode de laboratorio?

La invención del trípode portátil se le atribuye al científico e inventor inglés Sir Francis Ronalds, quien fuera, posiblemente, el primer ingeniero eléctrico.

Empero, se dice que el trípode de laboratorio fue inventado en 1850 por Golbart Matthews, aunque hay muy poca documentación precisa al respecto. Un trípode es un término general para un soporte o poste con tres patas.

Se utiliza a menudo para apoyar un arma o para hacer espacio en el laboratorio científico sobre el quemador Bunsen para calentar / cocinar algo.

🔹 Trípode de laboratorio uso

Los trípodes son útiles en áreas de experimentación y observación. Son ampliamente utilizados con los quemadores Bunsen, ya que mantienen las cosas que se calientan por encima del quemador. Un ejemplo de los trípodes utilizados en los laboratorios es el trípode del mechero, que se utiliza junto con la tela metálica o el baño de arena.

Los soportes para trípodes se utilizan en diversos campos, como los farmacéuticos y los laboratorios clínicos, industriales, patológicos y educativos.

El trípode de laboratorio es más utilizado en las escuelas secundarias y preparatorias para experimentos básicos de calefacción[2] Sin embargo, los trípodes y los quemadores bunsen se han vuelto obsoletos por las placas calentadoras, que se consideran más seguras ya que no hay contacto directo con la llama.

🍀 Trípode de laboratorio función

El trípode de laboratorio es un equipo de plataforma portátil de tres patas, que normalmente está hecho de metal ligero como el acero inoxidable y el aluminio, de modo que se puede mover cómodamente dentro del laboratorio. El uso principal es apoyar o sostener los frascos y vasos de precipitados durante los experimentos.

⭐ Trípode de laboratorio precio

Es posible conseguir los trípodes para laboratorio a través de tiendas especializadas en línea o fiscas. Los precios varían de acuerdo con los modelos y tipos específicos según señalamos con anterioridad. Por lo general, los precios rondan entre 5 y 50 dólares, además de los gastos de envío.

📌 ¿Cómo se usa el trípode de laboratorio?

El trípode de laboratorio se utiliza esencialmente para apoyar recipientes de vidrio, vasos entre otros, mientras el investigador lleva a cabo diversos experimentos.

Cuando se requiere para calentar sustancias con el mechero Bunsen, lo ideal es utilizar una rejilla que pueda soportar las altas temperaturas.

El modo de empleo es sencillo, luego de colocar la rejilla sobre ella debe poner los recipientes, o matraces y debajo se coloca el mechero. Se ajusta la altura, de acuerdo con los requerimientos de la experimentación, y simplemente resta esperar a que ocurra la reacción o que la sustancia alcance la temperatura deseada.

Se recomienda el uso de los trípodes de laboratorios sobre superficies planas para evitar inconvenientes, sin embargo, algunos de estos aparatos tiene la capacidad de ajustarse para minimizar las posibles desviaciones que puedan existir sobre la superficie. Una gran opción que brinda de seguridad al laboratorista.

🌡 Características de trípode

Los trípodes tienen tres patas para sostener diferentes tipos de equipo de manera efectiva. Los soportes están hechos de metales ligeros que los hacen ligeros y fáciles de transportar.

Son portátiles y plegables, lo que los hace adecuados para laboratorios con espacio limitado. Algunos soportes de trípode están construidos con una tapa de hierro fundido y patas de acero dulce para una mejor estabilidad.

Los materiales típicos utilizados en la construcción de trípodes son el acero inoxidable, el aluminio y el cromo.

🔬 Variaciones

Hay varios diseños diferentes. La parte superior es comúnmente triangular o circular, y a veces las tres patas pueden ser removidas y ajustadas dependiendo de las preferencias del usuario.

Los trípodes pequeños tienen 6 pulgadas de altura y están emparejados con gasas de 4 pulgadas o más pequeñas. Los trípodes grandes tienen aproximadamente 9 pulgadas de altura.

No te vayas sin visitar: materiales de laboratorio de biologia

PINZAS PARA TUBOS DE ENSAYO : Para Que Sirve, Características, Precio

Las pinzas para tubos de ensayo forman parte de la instrumentación esencial entre los materiales de laboratorio. Con ellas es posible tomar, transportar y sostener sustancias contenidas, a altas temperaturas, en los tubos.

Entre las ventajas que tienen los laboratoristas con estas pinzas se encuentra la seguridad. Las personas que se ven en la necesidad de manipular tubos de ensayo, pueden hacerlo con la tranquilidad que las pinzas proporcionan especialmente cuando se debe tomar o desplazar material muy caliente. De esta manera se evita el contacto directo con las manos.

De allí nace la necesidad imperiosa de contar en todo momento con este tipo de herramientas en los laboratorios, ya sea de madera, metal o plástico para llevar a cabo con tranquilidad el trabajo profesional del laboratorista.

🌡 ¿Para qué sirven las pinzas para tubos de ensayo?

Las pinzas para tubos de ensayo se utilizan primordialmente para sujetar tubos de laboratorio. Los tubos de ensayo son piezas en forma de tubo de vidrio de laboratorio que se utilizan comúnmente para contener, mezclar o calentar pequeñas cantidades de productos químicos sólidos o líquidos.

🔬 Tipos de pinzas para tubos de ensayo

Existe gran variedad de pinzas para tubos de ensayos disponibles en el mercado. Todo depende del trabajo que se vaya a llevar a cabo para decidirse por determinado tipo de pinza.

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Entre las variedades que se pueden encontrar están las siguientes:

Pinzas de madera.

Son las menos costosas y, por otra parte, son muy prácticas al momento de realizar algún tipo de demostración educativa.

Stoddard.

Por lo general este tipo de pinza está elaborada de bronce o de níquel. En cuanto a sus medidas, tiene 12,7 cm (5 pulgadas) de longitud.

Semi micro.

Este tipo de pinza es manufacturada con alambre de acero niquelado y posee mordazas redondeadas.

Las pinzas que acabamos de mencionar son las más comunes, sin embargo, hay que aclarar que existen muchos modelos lo que implica una exhaustiva investigación para escoger el tipo de pinza o pinzas que realmente necesita en su laboratorio.

🍀 Pinzas para tubos de ensayo de madera

Las pinzas de madera para tubos de ensayo son muy útiles en los laboratorios. Los especialistas las usan para sostener los tubos de ensayo mientras estos se calientan o para verter algún líquido.

Esto, precisamente, permite sostener el tubo de ensayo sin correr el riesgo de posibles quemaduras. De esta manera, es posible trasladar el tubo de ensayo desde una gradilla hasta llevarlo al fuego sin la necesidad de que entre en contacto directo con el laboratorista.

Toda vez que la madera es propensa a la combustión, hay que tener mucho cuidado cuando se procede a calentar el tubo de ensayo. El fuego debe orientarse de manera de que solamente se caliente el tubo y no la madera.

También se ha determinado que la resistencia de este material ante los productos químicos corrosivos es muy poca o nula (en especial cuando se trata de ácidos fuertes).

Existen pinzas elaboradas en plástico, pero por su poca resistencia al fuego se utilizan muy poco, no son tan populares en los laboratorios. Otra de las ventajas de las pinzas de madera sobre las de metal es que esta última puede producir quemaduras en la mano del laboratorista, gracias a la conductividad del calor a través del metal.

No te vayas sin visitar: materiales de laboratorio de biología

⭐ Agarraderas para tubos de ensayo características

Las pinzas metálicas para tubos de ensayo se caracterizan por los brazos metálicos que ejercen la presión, sobre el recipiente, a través un tornillo ajustable.

Para proteger el envase, los brazos están recubiertos por corcho, fieltro o plástico, de esta manera se previene el contacto directo del metal con el tubo de ensayo y así evitar un posible rompimiento del frasco.

Existen pinzas para tubos de ensayo que tienen anillos en los dedos para un agarre cómodo y un anillo colector de metal para un cierre consistente. Las mordazas, por lo general, están diseñadas para sostener un solo tubo de ensayo sobre una llama abierta. Su longitud es de 6.5 pulgadas (17 cm).

En relación con las pinzas de madera, estas suelen ser duras con  acabado liso y un resorte de autocierre. Algunas de estas pinzas aceptan tubos de hasta 3/4″ (19mm) de diámetro. Su longitud es de 7″ (178mm).

📌 Pinzas para tubos de ensayo precio

Es posible conseguir las pinzas para tubos de ensayo a través de tiendas especializadas en línea o fiscas. Los precios varían de acuerdo con los modelos y tipos específicos según señalamos con anterioridad. Por lo general, los precios rondan entre 2 y 120 dólares por unidad, además de los gastos de envío. 

ESTERILIZACIÓN De Materiales De Laboratorio: Métodos, Preparación, Equipos, Desinfectantes

 Necesitas saber sobre la esterilización de materiales de laboratorio para trabajar en uno, hay muchos diferentes tipos de bacterias que no pueden distribuirse juntas y sin observación o sin la intención de ser observadas, por lo cual hay que llevar una correcta esterilización de todos los utensilios de trabajo.

🌡 Equipos de esterilización de materiales de laboratorio

  Un ambiente estéril es una necesidad en la mayoría de los laboratorios, en particular en microbiología y laboratorios médicos.

  Los autoclaves, los sistemas de limpieza in situ (CIP) y de esterilización in situ (SIP), los esterilizadores y hornos de calor seco, los esterilizadores de vapor, los esterilizadores de medios y las cámaras UV trabajan para esterilizar el equipo y los suministros.

Equipos adecuados para la esterilización de materiales de laboratorio

  Los autoclaves esterilizan el equipo al someterlo a vapor presurizado durante un tiempo establecido, tal vez 20 minutos a 121 ° C, 15 psig. Las características que se deben buscar incluyen operación automática, puerta de fácil cierre y ciclos de pre-vacío para eliminar el aire de la cámara. Los esterilizadores y hornos de calor seco, que utilizan aire caliente para la esterilización, son particularmente útiles para desinfectar ciertos polvos y aceites.

🌡 Métodos de esterilización de materiales de laboratorio

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  La esterilización de los materiales usados en el laboratorio es un asunto crucial para todos los involucrados, clínicas y hospitales. A menos que el equipo utilizado se esterilice de vez en cuando, los establecimientos de salud no podrán permanecer en funcionamiento. Contrariamente a la creencia popular, hay muchos métodos diferentes para esterilizar equipos médicos. A continuación, se muestra una descripción básica de las diferentes técnicas utilizadas para esterilizar el equipo médico en muchos laboratorios, como los laboratorios de Gibraltar.

Esterilización mediante autoclave

  Un autoclave es una máquina de tamaño variable. Utiliza alto calor y presión y vapor para esterilizar equipos médicos. El tiempo necesario para la esterilización depende de la temperatura alcanzada por el autoclave y de la configuración de los materiales a esterilizar. El factor crítico es que el material debe tener un camino sin obstrucciones al vapor.

Esterilización de materiales de laboratorio a través del vapor

  Este tipo de esterilización es bastante común en las instalaciones de salud y es utilizado por los fabricantes de instrumentos ortopédicos y bandejas para validar sus instrucciones de uso. El equipo se coloca en la cámara principal y el vapor se dirige hacia el equipo médico. El alto calor y el vapor destruyen muchos organismos y garantizan que el instrumento se deje limpio y esterilizado.

Esterilización vía flash

  Esta técnica es similar al uso de vapor para la esterilización, pero tiene una diferencia de principio. La esterilización instantánea de un objeto es significativamente más rápida que la esterilización mediante vapor o muchos otros métodos.

Esterilización por calor seco

  La esterilización de equipos médicos a través de calor seco es un método eficaz para esterilizar equipos médicos. El calor seco se dirige hacia el equipo médico y cualquier microorganismo se destruye. Esto se debe a que el alto calor coagula las proteínas de la sangre y asegura que los microorganismos se destruyan.

Esterilización por calor húmedo

  Esta fue una de las primeras técnicas de esterilización. El aire caliente (con vapor de agua) se dirige hacia instrumentos médicos, desnaturalizando muchos microorganismos en el proceso. Esto asegura que cualquier bacteria o microbio que crece en el instrumento se destruya.

Esterilización por Radiación

  La radiación, especialmente la radiación gamma, se usa para esterilizar el equipo médico. La radiación gamma garantiza la destrucción de muchos tipos diferentes de microbios. Curiosamente, la radiación siempre se usa para esterilizar escalpelos y muchos otros instrumentos médicos metálicos.

  Como es evidente, hay muchos métodos de esterilización de equipos médicos. Aunque no todas las técnicas son empleadas por ningún hospital, muchas de las técnicas anteriores todavía se utilizan para esterilizar equipos médicos. En conclusión, los pacientes pueden estar seguros de que el equipo utilizado para mantener su salud está limpio, de acuerdo con el estándar y perfecto para usar en su cuerpo.

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🔹 Esterilización de materiales de laboratorios (Resultados)

  La esterilización también se puede usar para eliminar agentes biológicos casi vivos, como virus y priones, que muchos científicos no están convencidos de que estén “vivos”. La falta de eliminación de virus y priones de los instrumentos y superficies puede presentar graves ramificaciones para la seguridad del paciente y del personal. por eso es importante seleccionar la técnica de esterilización más apropiada.

🍀 Esterilización versus desinfección

  La esterilización se distingue de la desinfección porque mata, desactiva o elimina todas las formas de vida o agentes biológicos. La desinfección se refiere específicamente a la eliminación de agentes biológicos nocivos. En términos prácticos, la esterilización puede ser necesaria en situaciones críticas para la salud, como hospitales, mientras que la desinfección es un proceso que se utiliza en su cocina o baño.

Formas de esterilización física

  Se pueden usar muchas técnicas para esterilizar superficies. Primero, el calor y la presión pueden eliminar sustancias lábiles de los instrumentos y equipos. Los compuestos biológicos, como algunas proteínas y virus, presentan desafíos durante la esterilización. Los priones, por ejemplo, han demostrado resistir la desnaturalización por calor y presión, así como muchos químicos y enzimas. Se recomienda la modificación covalente de estos compuestos para su eliminación.

  Luego, la radiación ionizante (como los rayos X) también es un esterilizador eficiente, que actúa para liberar electrones de las moléculas. Dado que muchos agentes transmisibles requieren ADN y ARN para su propagación, cortar la estructura del ácido nucleico puede ser un medio útil para reducir su transmisión. Si bien esta técnica ha demostrado ser efectiva para una desinfección segura, se debe prestar mucha atención a la eliminación posterior de estos compuestos, ya que las esporas de bacterias y hongos resisten la mayoría de las técnicas de irradiación.

📌 Esterilizadores por químicos comunes

  El óxido de etileno (EtO) se usa comúnmente para esterilizar objetos que son sensibles a temperaturas superiores a 140 ° F / 60 ° C y / o radiación. Estos incluyen componentes de plástico o suministros, óptica y electrónica. Las altas temperaturas pueden dañar fácilmente los plásticos y la óptica y hacer que el dispositivo no sea adecuado para su aplicación original. Por lo tanto, el EtO se usa comúnmente para esterilizar equipos médicos duraderos y catéteres y endoscopios de un solo uso pre envasados. El químico tiene un efecto disruptivo sobre el ADN, lo que hace que los microorganismos no puedan reproducirse. Si bien este procedimiento de esterilización produce buenos resultados, debe tenerse en cuenta que el (EtO) es un carcinógeno conocido y presenta un grave riesgo para el personal si no se controla cuidadosamente.

  Si bien muchos de estos métodos individuales son capaces de esterilizar efectivamente las superficies, comúnmente se usan en combinación para desarrollar un protocolo de esterilización robusto. Si bien la esterilización en sí misma no requiere una validación posterior para su uso en un entorno de fabricación, se recomienda encarecidamente que estos procesos se supervisen y cuantifiquen de cerca siempre que sea posible para garantizar resultados seguros y confiables que aumenten la seguridad del paciente y del personal.

🔍 Métodos para esterilizar cristalería

  1. En la mayoría de los grandes laboratorios, la cristalería se lava en tres pasos, como:
  2. Lavadora automática.
  3. Seguido de un ciclo de enjuague especial.
  4. Luego manténgala en el secador automático (por debajo de 100 ° C).
  5. Enjuague la cristalería con un disolvente orgánico miscible con agua y luego expóngala a una corriente de aire o nitrógeno.
  6. El uso más común es el de los productos químicos.

🌡 Proctólogo para esterilizar cristalería

  1. Descontamine la cristalería preparando previamente en lejía al 5% o hirviéndola.
  2. Se puede utilizar cualquier tipo de detergente o polvo de limpieza.
  3. Autoclave puede ser el método alternativo.
  4. Si la cristalería se empapa en agua después del uso que es ideal.
  5. Si lo sobra, manténgala en la solución detergente durante la noche.
  6. Ahora enjuague con agua del grifo, seguido de un enjuague con agua des ionizada.

🔬 Los desinfectantes usados para esterilizar más comunes son:

  1. Productos químicos liberadores de cloro donde el cloro es activo contra las bacterias gram positivas y negativas, incluidos los virus VIH y HB.
  2. Algunos ejemplos son el hipoclorito (solución de lejía), que se usa en el hogar y en la lavandería.
  3. Los aldehídos son formaldehído y glutarildehído.
  4. Alcohol usado en etanol o propanol 70 a 80% V / V.
  5. Los fenoles como el hycolin, Clearsol, Stericol y Printol.
  6. Prueba para comprobar la limpieza de la cristalería.
  7. Verifique el agua de enjuague final que debe moverse con una acción de laminado, dejando una película delgada sobre la superficie.
  8. Si la película se rompe en gotitas, o la superficie está húmeda de manera desigual, entonces indica que la cristalería no está limpia.

LABORATORIO DE MICROBIOLOGÍA: Qué Es, Norma, Importancia, Diseño

  Un laboratorio de microbiología es como el santuario de un especialista de salud, hay muchas cosas que necesitas saber sobre un laboratorio de este tipo que puede parecerte impresionante.

🔬 ¿Qué es un laboratorio de microbiología?

  El objetivo principal de este laboratorio es ayudar en el diagnóstico de enfermedades infecciosas. Esto comienza cuando el paciente ingresa al sistema de atención médica y presenta ciertos signos y síntomas compatibles con una enfermedad infecciosa. El médico del paciente luego ordena pruebas específicas para aclarar la presencia de una enfermedad infecciosa. Estas enfermedades pueden incluir aquellas causadas por bacterias (por ejemplo, estreptococos del grupo A que pueden causar estreptococos en la garganta); las causadas por virus (p. ej., influenza A que causa la gripe); las causadas por hongos (p. ej., Candida, que puede causar infecciones vaginales por levaduras); o las causadas por parásitos (p. ej., Giardia, que puede causar diarrea).

🌡 Reglas a tomar en cuenta en un laboratorio de microbiología

  La seguridad en un laboratorio de microbiología es importante en la prevención de infecciones, ya que el laboratorio de microbiología cultiva, manipula y utiliza microorganismos virulentos y / o potencialmente patógenos. Además de los microorganismos, hay algunos productos químicos utilizados en este laboratorio que son potencialmente dañinos. Muchos procedimientos involucran cristalería, llamas abiertas y objetos afilados que pueden causar traumas / daños si se usan incorrectamente.

  Los procedimientos de laboratorio deben leerse antes de asistir a esa sesión de laboratorio.

  1. Fumar, comer y beber en el laboratorio están absolutamente prohibidos en el laboratorio en cualquier momento.
  2. Solo se deben usar zapatos cerrados en el laboratorio. No se permiten las sandalias o los zapatos de punta abierta o de lona   debido al peligro constante de cortes e infecciones por vidrios rotos que se encuentran en los pisos del laboratorio y la posibilidad de derrames químicos.
  3. Mantenga las manos y otros objetos lejos de su cara, nariz, ojos, oídos y boca. La aplicación de cosméticos en el laboratorio está prohibida en el laboratorio.
  4. Las áreas / superficies de trabajo deben desinfectarse antes y después del uso.
  5. Las batas de laboratorio se deben usar y abotonar en el laboratorio. Las batas de laboratorio no deben usarse fuera del laboratorio.
  6. Se deben usar gafas protectoras al realizar cualquier ejercicio o procedimiento en el laboratorio.
  7. El cabello largo debe asegurarse detrás de su cabeza para minimizar el riesgo de incendio o la contaminación de los experimentos.
  8. Las manos deben lavarse antes de salir del laboratorio.
  9. Al ingresar al laboratorio, deben colocarse abrigos, libros y otros accesorios, por ejemplo, carteras, maletines, etc. en lugares específicos y nunca en mesas de trabajo (excepto el manual de laboratorio).
  10. Nunca pipetee nada con la boca (incluso el agua). Utilice siempre dispositivos de pipeteo.

No debes olvidar lo más importante en un laboratorio de microbiología

  1. Etiquete todos los materiales con su nombre, fecha y cualquier otra información aplicable (por ejemplo, medios de comunicación, organismo, etc.).
  2. Deseche los desechos en sus recipientes apropiados (consulte la sección Eliminación de desechos con riesgo biológico a continuación).
  3. Al manipular productos químicos, anote el código de peligro en la botella y tome las precauciones apropiadas indicadas.
  4. No vierta productos químicos en el fregadero.
  5. Devuelva todos los productos químicos, reactivos, cultivos y cristalería a sus lugares apropiados.
  6. No vierta fluidos biológicos peligrosos en el fregadero.
  7. La cristalería debe lavarse con agua y jabón, luego enjuagarse con agua destilada.
  8. Bucles de transferencia de llama, cables o agujas antes e inmediatamente después del uso para transferir material biológico.
  9. No camine por el laboratorio con bucles de transferencia, cables, agujas o pipetas que contengan material infeccioso.
  10. Tenga cuidado con los quemadores Bunsen. Las llamas no siempre se pueden ver.
  11. Apague los incineradores antes de salir del laboratorio.
  12. Reporte cualquier equipo roto, inmediatamente, reporte cualquier vidrio roto, especialmente aquellos que contengan materiales infecciosos.
  13. Si se lesiona en el laboratorio, comuníquese de inmediato con el instructor de su curso o TA.
  14. Los derrames, cortes y otros accidentes deben informarse al instructor o a la AT en caso de que sea necesario un tratamiento adicional.
  15. Familiarícese con el equipo de seguridad en el laboratorio y las rutas de escape de emergencia.
  16. Siempre limpie y limpie las lentes de su microscopio antes de guardarlo. Utilice el papel de seda adecuado y la solución de limpieza para este propósito.
  17. Use las precauciones universales apropiadas con todos los fluidos biológicos.

🔹 Bioseguridad de un laboratorio de microbiología

Equipo de seguridad (barreras primarias del laboratorio de microbiología)

  El equipo de seguridad incluye gabinetes de seguridad biológica y una variedad de contenedores cerrados. El gabinete de seguridad biológica es el dispositivo principal utilizado para proporcionar la contención de los aerosoles infecciosos generados por muchos procedimientos microbiológico.

Diseño de instalaciones (barreras secundarias)

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  La administración del laboratorio es responsable de proporcionar instalaciones acordes con la función del laboratorio. A continuación, se describen tres diseños de instalaciones, en orden ascendente por nivel de contención.

1. El laboratorio básico: este laboratorio proporciona un espacio general en el que se trabaja con agentes viables que no están asociados con enfermedades en adultos sanos.

2. El laboratorio de contención: este laboratorio tiene características de ingeniería especiales que hacen posible que los trabajadores del laboratorio manipulen materiales peligrosos sin poner en peligro a ellos mismos, a la comunidad o al medio ambiente.

3. El laboratorio de máxima contención: este laboratorio tiene características especiales de ingeniería y contención que permiten realizar actividades que involucran agentes infecciosos que son extremadamente peligrosos para el trabajador del laboratorio o que pueden causar que una enfermedad epidémica grave se realice de manera segura.

Niveles

  • Nivel aplicable a las instalaciones clínicas, de diagnóstico, de enseñanza y otras en las que se trabaja con el amplio espectro de agentes indígenas de riesgo moderado presentes en la comunidad y asociados con enfermedades humanas de severidad variable Con buenas técnicas microbiológicas, estos agentes pueden usarse de manera segura en actividades realizadas en el banco abierto, siempre que el potencial para producir aerosoles sea bajo.
  • Nivel aplicable a las instalaciones clínicas, de diagnóstico, de enseñanza, de investigación o de producción en las que se trabaja con agentes exóticos o indígenas donde el potencial de infección por aerosoles es real y la enfermedad Puede tener consecuencias graves o letales.

🍀 Prácticas de un laboratorio de microbiología

  Para que la microbiología pueda ayudar a diagnosticar la enfermedad infecciosa correcta, se producen varios pasos. El primer paso es la recolección de las muestras apropiadas para diagnosticar la enfermedad del paciente. Por ejemplo, si existe la posibilidad de una infección de la vejiga, el médico puede ordenar un análisis de orina que analice los tipos de células presentes en la orina, como los glóbulos rojos y blancos, así como una muestra de orina para un cultivo que crezca. Organismo que está causando la infección.

  Las muestras se pueden recolectar de varias fuentes diferentes, incluidas muestras de sangre, orina y frotis de la garganta. A veces se requiere una técnica más invasiva que use una aguja u otro instrumento especial para recolectar la muestra. ¡Este primer paso en el diagnóstico microbiológico de enfermedades infecciosas es muy importante! Un espécimen de buena calidad significa la mejor oportunidad de diagnosticar la enfermedad infecciosa.

⭐ Importancia de los laboratorios de microbiología

  La vacunación y la terapia con antibióticos han beneficiado a millones de personas. Sin embargo, los recursos limitados ahora amenazan nuestra capacidad para manejar adecuadamente las amenazas de enfermedades infecciosas al ubicar los servicios de microbiología clínica y la experiencia alejados del paciente y su médico de enfermedades infecciosas. Seguir en esa dirección amenaza la calidad de los resultados de laboratorio, la puntualidad del diagnóstico, la idoneidad del tratamiento, la comunicación efectiva, la reducción de las infecciones asociadas a la atención de salud, los avances en la práctica de las enfermedades infecciosas y la capacitación de futuros profesionales.

  Los laboratorios de microbiología son las primeras líneas de defensa para la detección de nuevas resistencias a los antibióticos, los brotes de infecciones transmitidas por los alimentos y un posible evento de bioterrorismo.

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📌 Equipos usados en un laboratorio de microbiología

  El equipo de microbiología es una categoría grande que abarca todo tipo de artículos utilizados en los laboratorios de microbiología. La microbiología es el estudio de formas de vida microscópicas y es utilizada por científicos que estudian virus, plantas, hongos, protozoos, células y parásitos. Muchas industrias utilizan la microbiología para fines de control de calidad, para demostrar que no hay contaminantes vivos o para determinar qué tipo de contaminantes hay para que sepan cómo solucionar el problema.

  Los equipos de microbiología incluyen microscopios; diapositivas Tubos de ensayo; platos de Petri; medios de crecimiento, tanto sólidos como líquidos; bucles de inoculación; pipetas y puntas; incubadoras Autoclaves, y campanas de flujo laminar. Algunos equipos, como los microscopios y las cubiertas, son elementos permanentes, mientras que otros, como las puntas de las pipetas, son desechables. Tener una autoclave es una forma de poder reutilizar equipos, como diapositivas y placas de Petri, que de lo contrario se podrían haber tirado.

🌡 Estructura de un laboratorio de microbiología

El microbiólogo médico es responsable de la política general del laboratorio y responde al jefe del departamento de medicina de laboratorio. En laboratorios sin microbiólogos médicos, un patólogo general o un doctorado. El microbiólogo (con suerte con capacitación especial en microbiología clínica) puede supervisar el laboratorio.

  Los tecnólogos, estratificados según la experiencia y la capacitación, realizan el procesamiento diario de los especímenes y un gerente de laboratorio los supervisa. Los tecnólogos en microbiología, en general, son un excelente recurso para los médicos y manejan muchas consultas de rutina. Cualquier problema que sientan que no pueden manejar se refiere al microbiólogo médico.

Etiquetado de especímenes

  ¡Un espécimen que llega al laboratorio sin etiquetar no se procesa! Es imperativo que se preste atención a esta parte crucial de la adquisición de la muestra. Las muestras deben ser etiquetadas una vez obtenidas. El etiquetado previo de los recipientes de muestras puede tener consecuencias desastrosas. La persona que obtiene el espécimen debe etiquetar el espécimen o al menos asegurarse de que se haya realizado correctamente. El procedimiento no está completo hasta que la muestra se encuentre en un recipiente debidamente etiquetado. La etiqueta debe incluir:

  1. Nombre completo
  2. Número de cuidado de salud
  3. Fecha de nacimiento
  4. Se tomó la muestra de fecha y hora. (Muy a menudo el tiempo no está indicado)

🔬 Esterilización en los laboratorios de microbiología

  Las técnicas de esterilización efectivas son esenciales para trabajar con líneas celulares aisladas por razones obvias por las que no desea que crezcan los insectos del medio ambiente en su medio de cultivo, e igualmente, los cultivos deben esterilizarse antes de desecharlos.

Calor húmedo (Autoclave)

  El método de elección para la esterilización en la mayoría de los laboratorios, es la autoclave. Utilizando vapor a presión para calentar el material a esterilizar. Este es un método muy efectivo que mata todos los microbios, esporas y virus, aunque para algunos errores específicos, se requieren especialmente altas temperaturas o tiempos de incubación.

  La autoclave mata a los microbios por hidrólisis y coagulación de proteínas celulares, lo que se logra de manera eficiente mediante el calor intenso en presencia de agua.

  El calor intenso proviene del vapor. El vapor a presión tiene un alto calor latente; a 100degC retiene 7 veces más calor que el agua a la misma temperatura. Este calor se libera al entrar en contacto con la superficie más fría del material a esterilizar, lo que permite un suministro rápido de calor y una buena penetración de los materiales densos.

esterilización

Calor seco (flameado, horneando)

  El calentamiento en seco tiene una diferencia crucial con la autoclave. Lo has adivinado: no hay agua, por lo que la hidrólisis de proteínas no puede realizarse.

  En cambio, el calor seco tiende a matar los microbios por oxidación de los componentes celulares. Esto requiere más energía que la hidrólisis de proteínas, por lo que se requieren temperaturas más altas para una esterilización eficiente con calor seco.

  Por ejemplo, la esterilización se puede lograr normalmente en 15 minutos en autoclave a 121 ° C, mientras que el calentamiento en seco generalmente necesita una temperatura de 160 ° C para esterilizarse en un período de tiempo similar.

Filtración

  La filtración es una excelente manera de esterilizar rápidamente las soluciones sin calentamiento. Los filtros, por supuesto, funcionan al pasar la solución a través de un filtro con un diámetro de poro que es demasiado pequeño para que los microbios lo atraviesen.

  Los filtros pueden ser embudos de vidrio desmenuzado hechos de partículas de vidrio fundidas por calor o, más comúnmente en la actualidad, filtros de membrana hechos de ésteres de celulosa. Para la eliminación de bacterias, normalmente se utilizan filtros con un diámetro de poro promedio de 0.2um.

  Pero recuerde, los virus y los fagos pueden pasar a través de estos filtros, por lo que la filtración no es una buena opción si estos son un problema.

Disolventes

  El etanol se usa comúnmente como desinfectante, aunque como el isopropanol es un mejor disolvente para la grasa, probablemente sea una mejor opción.

  Ambos trabajan desnaturalizando proteínas a través de un proceso que requiere agua, por lo que deben diluirse al 60-90% en agua para que sean eficaces.

  Una vez más, es importante recordar que aunque el etanol y la API son buenos para matar las células microbianas, no tienen efecto sobre las esporas.

Radiación

  Los rayos UV, rayos X y rayos gamma son todos los tipos de radiación electromagnética que tienen efectos muy dañinos sobre el ADN, por lo que son excelentes herramientas para la esterilización.

  La principal diferencia entre ellos, en términos de su efectividad, es su penetración.

  Los rayos UV tienen una penetración limitada en el aire, por lo que la esterilización solo ocurre en un área bastante pequeña alrededor de la lámpara. Sin embargo, es relativamente seguro y es bastante útil para esterilizar áreas pequeñas, como las campanas de flujo laminar.

  Los rayos X y los rayos gamma son mucho más penetrantes, lo que los hace más peligrosos pero muy efectivos para la esterilización en frío a gran escala de artículos de plástico (por ejemplo, jeringas) durante la fabricación.

  Estos son algunos de los principales métodos de esterilización que se me ocurren. Si me he perdido alguno, no dude en hacérmelo saber en la sección de comentarios.

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