Todo buen profesional químico necesita un matraz de fondo plano, puedes adquirirlo junto con todo el instrumental necesario, debes tener en cuenta que hay varios tipos de matraz que igualmente son indispensables para tu trabajo.
🌡 ¿Qué es un matraz de fondo plano?
Los frascos se utilizan en
entornos de laboratorio (incluidos los laboratorios de química) para una
variedad de propósitos. Se puede usar un matraz para medir el volumen de
muestras y soluciones líquidas o calentar, enfriar, disolver, mezclar o hervir
líquidos. Los frascos son generalmente de vidrio o plástico y pueden venir en
una variedad de formas y tamaños. Típicamente, un matraz es más ancho en la
base que en el cuello, con una abertura en la parte superior. Los matraces
pueden tener fondos redondeados o planos.
Un matraz de fondo plano se usa en configuraciones donde el matraz se colocará en una superficie nivelada, en lugar de una abrazadera o un tazón. Por otro lado, un matraz con un fondo redondo se sentará en un recipiente o se suspenderá sobre una superficie con una abrazadera.
Un matraz de fondo plano se usa en un laboratorio de química para experimentos que involucran la recolección y medición de líquidos, soluciones de mezcla y medios de cultivo. El diseño y la construcción del matraz de fondo plano le permite estar solo en el banco de laboratorio. Mira aquí para que sirve el matraz de fondo plano
🔹 Características del matraz de fondo plano
El matraz
de fondo plano tiene forma redonda en su parte inferior y además tiene un
cuello recto y alargado.
Se utiliza
para calentar sustancias y medir las reacciones.
Por lo
general se utiliza un material de gasa para poner una barrera entre el calor y
el matraz para evaluar las reacciones de forma segura y también es utilizado en
el cultivo bacteriológico.
Hay una
diferencia entre un matraz de fondo plano y uno de fondo redondo y es que este último
no dispone de la base para mantenerse erguido sobre la superficie, se le debe
colocar una.
Aunque es
muy bueno para calentar sustancia, esta no adquiere el calor uniforme que
necesita, esta es otra diferencia con los matraces redondos.
Los
matraces de fondo plano no son tan fuertes ni duraderos como los matraces de
fondo redondo. A pesar de esta desventaja, tienen una característica a su
favor: no tienen las esquinas afiladas y vulnerables de un matraz Erlenmeyer,
por ejemplo.
🍀 Variaciones del matraz de fondo plano de otros matraces
Matraz Erlenmeyer
<
El matraz Erlenmeyer también se
conoce como matraz cónico. Es un matraz de forma interesante, un cuerpo de cono
y un cuello cilíndrico, fue creado en 1860 por el químico alemán Emil
Erlenmeyer.
Generalmente son de cristal,
pero también pueden ser fabricados de plástico y también pueden ser fabricados
dependiendo del volumen que se requiera.
La boca de un matraz Erlenmeyer puede tener un tipo de labio que puede
detenerse con un trozo de algodón, corcho o goma.
Gracias a que los lados del
matraz son estrechos, se puede mezclar el líquido dentro de el sin ningún
problema o preocupación por perder nada.
Matraz medido
Estos matraces son instrumentos
de laboratorio, calibrados para contener una cantidad precisa de volumen a una
temperatura particular. Los matraces volumétricos se utilizan para diluciones y
preparaciones precisas de soluciones estándar.
Los cuellos de los matraces
volumétricos son alargados y delgados, con un anillo para marcar su graduación.
Esta marca indica el volumen de líquido que contiene cuando se llena hasta ese
punto.
🍀 Vasos de precipitación
Estos vasos están disponibles en
muchos tamaños y presentaciones, se utilizan para calentar y mesclar cualquier
clase de líquidos para ser sometidos a estudios.
Matraz de fondo plano DURAN® con
borde moldeado
La distribución uniforme del espesor de la pared hace que estos matraces sean ideales para aplicaciones de calefacción. La base plana significa que los matraces se pueden colocar sin un anillo de soporte. Los matraces con un diámetro de cuello de 65 mm o más tienen un borde reforzado.
⭐ Cuidados del matraz de fondo plano
Recomendamos
que toda la cristalería se lave antes de usarla por primera vez.
Antes de
usar cualquier pieza de vidrio, siempre tómese el tiempo para examinar
cuidadosamente y asegurarse de que esté en buenas condiciones. No utilice
ningún material de vidrio que esté rayado, astillado, agrietado o grabado.
Defectos como estos pueden debilitar seriamente la resistencia mecánica del
vidrio y hacer que se rompa con el uso.
Nunca use
una fuerza excesiva para colocar los tapones de goma en el cuello de una pieza
de vidrio. Siempre asegúrese de seleccionar el tamaño correcto de tapón.
Llevar o
levantar frascos de vidrio, vasos o botellas grandes, etc. por el cuello o la
llanta puede ser muy peligroso. Siempre proporcione soporte desde la base y los
lados.
Al agitar
las soluciones en recipientes de vidrio, evite usar barras de agitación con
extremos afilados que puedan rayar la cristalería y debilitarla.
Siempre
caliente la cristalería suavemente y gradualmente para evitar cambios bruscos
de temperatura que pueden hacer que el vidrio se rompa debido a un choque
térmico. Del mismo modo, permita que la cristalería caliente se enfríe
gradualmente y en un lugar alejado de corrientes frías.
Si está
utilizando una placa calefactora, asegúrese de que la placa superior sea más
grande que la base del recipiente a calentar. Si la base del recipiente
sobresale de la parte superior de la placa de cocción, se pueden producir
puntos de conexión que causan que la base del recipiente se rompa. Además,
nunca ponga cristalería fría en una placa de cocción precalentada. Siempre
caliente la cristalería a temperatura ambiente.
Si está
utilizando un quemador Bunsen, emplee una llama suave y use una gasa de alambre
con un centro de cerámica para difundir la llama. Nunca aplique calor
localizado directo a una pieza de vidrio.
📌 Consejos para reducir el peligro al usar matraces de cristal
1. Inspeccione la
cristalería en busca de defectos como grietas, rasguños, marcas profundas y
marcas de grabado antes de usar el aparato de vacío
2. Asegúrese de que los
recipientes estén diseñados específicamente para trabajos de vacío. Considere
usar matraces más pequeños (menos de 1 L), ya que es menos probable que
exploten. Los matraces de pared delgada o de fondo redondo de más de 1 L nunca
deben ser evacuados.
3. Montar el aparato de vacío
para evitar tensiones. Los aparatos pesados deben apoyarse desde abajo y
también por el cuello.
4. Pegue el aparato de vacío de vidrio para
minimizar los proyectiles debido a la implosión. Use un patrón entrecruzado de
cinta de filamento y / o construya un recinto alrededor del matraz.
5. Use una protección
adecuada cuando realice operaciones de presión y vacío, como una barrera de
plexiglas.
6. Conocer la química del
contenido del matraz.
7. No sacuda, golpee ni deje
caer un matraz que esté bajo presión de vacío. Además, trate de evitar exponer
el matraz a vibraciones innecesarias del equipo en el mismo banco, música
fuerte, etc. El matraz debe anclarse en su lugar con un soporte de anillo y una
abrazadera.
8. Utilice vacío de baja
intensidad.
9. Antes de realizar
cualquier acción con el matraz (quitar el embudo / tapón, ajustar las mangueras),
asegúrese de liberar el vacío al desconectar la manguera en el extremo de la
bomba de vacío (a diferencia del extremo del matraz).
10. Use protección para los
ojos y la cara cuando maneje aparatos de vacío o presión.
🔍 Matraz aforado
Posee un cuello alargado y estrecho, con un aforo que marca dónde se debe efectuar el enrase, el cual nos indica un volumen con gran exactitud y precisión.
Todo gran químico necesita un matraz volumétrico de laboratorio, un instrumento de medición y análisis muy importante
🌡 ¿Qué es un matraz volumétrico de laboratorio ?
Un matraz volumétrico es un tipo de material de vidrio de laboratorio utilizado para preparar soluciones. Un matraz volumétrico es una bombilla de fondo plano con un cuello alargado calibrado para mantener un volumen establecido en una marca en el cuello. El matraz también se puede llamar matraz graduado o matraz de medición porque su marca especifica una medición precisa del volumen.
La marca en el cuello del matraz indica el volumen contenido. Cuando se vacía, parte del líquido puede permanecer en el contenedor, por lo que la marca (a diferencia de una pipeta) no indica la cantidad que se debe dispensar. Cabe señalar que los matraces volumétricos están calibrados para una temperatura particular (generalmente 20 ° C), que se indica en la etiqueta.
🌡 Descripción del Matraz volumétrico de laboratorio
La
mayoría de los matraces volumétricos son de vidrio transparente o plástico,
aunque algunos matraces son de color ámbar para la preparación de soluciones
sensibles a la luz. La boca del matraz puede tener una junta para acomodar un
tapón o un tapón de rosca. una temperatura particular (generalmente 20 ° C),
que se indica en la etiqueta.
La mayoría de los matraces volumétricos son de vidrio transparente o plástico, aunque algunos matraces son de color ámbar para la preparación de soluciones sensibles a la luz. La boca del matraz puede tener una junta para acomodar un tapón o un tapón de rosca.
🔹 Estándares volumétricos del matraz
<
¡Todos
los matraces volumétricos no son creados iguales! Hay matraces de mayor y menor
precisión. Un matraz volumétrico hecho para cumplir con un alto estándar es un
matraz de Clase A o Clase 1. Su tolerancia, temperatura, precisión y volumen se
indicarán en la cristalería. Un matraz de Clase B no cumple con un estándar tan
alto y puede no incluir toda esta información. Los matraces de clase A se
utilizan para el trabajo de química analítica, mientras que los matraces de
clase B son adecuados para la mayoría del trabajo educativo y cualitativo.
🍀 Capacidades de los Matraces volumétricos de laboratorio
Frascos
Volumétricos DURAN®
Los
matraces volumétricos DURAN® se utilizan para la medición precisa de cantidades
específicas de líquidos. Son ayudas de análisis volumétrico en el trabajo de
laboratorio cuantitativo.
Los
matraces volumétricos están disponibles en dos clases diferentes de precisión:
clase «A» y clase «B». Las dos clases difieren en la
precisión de la medición, siendo la clase A la máxima precisión y la clase B es
aproximadamente la mitad de la clase «A».
Los
matraces volumétricos con clase de precisión «A» tienen una impresión
azul para productos de vidrio transparente y una impresión en blanco para las
versiones ámbar. Los matraces volumétricos de clase «A» se calibran
individualmente, pero están disponibles con dos tipos diferentes de
certificados, un tipo se entrega con un certificado del lote de producción
(también disponible en línea) y el otro tipo con certificados individuales.
Los productos de la clase de precisión «B» tienen una impresión en blanco. Para estos productos solo está disponible una especificación de vidrio general.
Los cuellos de tubos pesados y con cuentas son útiles para tapones de polietileno
El tapón está hecho con un fondo cerrado y es de polietileno lineal de alta densidad para ajustarse a las dimensiones del tapón cónico estándar.
⭐ Calibración de matraces volumétricos:
Antes de la calibración, limpie y
seque el matraz a calibrar.
Pese el frasco vacío y registre el
peso exacto del frasco.
Tome el agua destilada a
temperatura ambiente y asegúrese de que el agua alcance la temperatura de
equilibrio con la temperatura ambiente manteniéndola a temperatura ambiente
durante media hora.
Llene el matraz con agua destilada
hasta la marca de calibración, teniendo cuidado de que no queden gotas de agua
en el cuello del matraz o por encima de la marca de calibración.
Tenga en cuenta la temperatura del
agua destilada utilizada y la temperatura ambiente.
Pese el matraz lleno y registre el
peso, reste el peso vacío del matraz volumétrico y registre el peso.
Convierta el peso del agua a
temperatura ambiente en volumen de agua a 27 ° C como se indica a continuación:
Vt = W x Ft
Donde, Vt = Volumen de agua a la temperatura observada t ° C
W = Wt de agua a la temperatura observada t ° C
Ft = Factor (El valor del cual se puede encontrar en la siguiente tabla)
t ° C (Agua)
Pie
t ° C (Agua)
Pie
20
1.0028
28
1.0048
21
1.0030
29
1.0051
22
1.0033
30
1.0054
23
1.0035
31
1.0057
24
1.0038
32
1.0060
25
1.0040
33
1.0064
26
1.0043
34
1.0067
27
1.0045
35
1.0070
Calcule por ejemplo el volumen de agua a 27 ° C a partir de la siguiente ecuación:
V27 = Vt (1 + 0.0001
(27 – t ° C de aire)) Donde, 0.0001 = coeficiente de expansión térmica del
vidrio de borosilicato.
En caso de una pequeña diferencia de temperatura, V27 = Vt
TOLERANCIAS EN LA CAPACIDAD DE LAS FASES VOLUMÉTRICAS
Capacidad del matraz
(ml)
5
10
25
50
100
200
250
500
1000
Tolerancia de clase
A +/- (ml)
0.02
0.02
0.03
0.04
0.06
0.1
0.1
0.15
0.2
📌 Usos del matraz volumétrico
El matraz volumétrico se utiliza para medir
volúmenes precisos de materiales líquidos para experimentos de laboratorio. Se
prefieren cuando están disponibles porque son más precisos que los cilindros
graduados y los vasos de precipitados, que son otros equipos que se utilizan
para medir líquidos.
🔍 Cómo reconocer un matraz volumétrico
Un
matraz volumétrico se caracteriza por un bulbo y un cuello largo. La mayoría de
los matraces volumétricos tienen fondos aplanados para que puedan colocarse en
una mesa de laboratorio u otra superficie, aunque algunos matraces volumétricos
tienen fondos redondeados y deben manejarse con equipo de protección especial.
🌡 Cómo usar un matraz volumétrico
Para preparar una solución en un matraz volumétrico, siga estos pasos:
Medir y agregar el soluto para la solución.
Agregue suficiente solvente para disolver el soluto.
Continúe agregando solvente hasta que se acerque a la línea marcada en el matraz volumétrico.
Use una pipeta o gotero para llenar el matraz volumétrico, usando el menisco de la solución y la línea en el matraz para determinar su punto final.
Selle el matraz volumétrico e inviértalo para mezclar bien la solución.
🔹 Matraz aforado
También es conocido como fiola, es un envase de cristal que es empleado
en los laboratorios para generar reacciones, preparar disoluciones y medir el
volumen de líquidos.
La
parte inferior del instrumento tiene forma redondeada, muy parecido a una pera
con una base plana, sin embargo, algunos no tienen esta base. Desde allí erige
un cuello largo y estrecho.
Existen de dos tipos. El primer tipo se emplea para preparar soluciones
valoradas, es decir, aquellas en las que existen medidas precisas de soluto y
de solvente necesarias para producir la mezcla correcta. Las mediciones
arrojadas por este tipo de instrumento son muy precisas.
El
segundo tipo se emplea para preparar otras soluciones que no sean valoradas. En
este caso, las mediciones obtenidas son estimadas y no precisas.
🍀 Diferencia entre un matraz aforado y un matraz volumétrico de laboratorio
La diferencia radica en que un material volumétrico graduado tiene un cierto error en las medidas, no son volúmenes completamente exactos. por ejemplo, en una probeta graduada o en una bureta graduada marcan el volumen junto a un + o – indicándonos que hay una pequeña variación.
Por lo contrario, el material aforado tiene el volumen indicado en el recipiente y es ese exactamente, siempre y cuando lo tengas bien igualado. En todos los casos el material volumétrico debe ser calibrado, para comparar el volumen indicado por el aforo o la graduación con un volumen conocido. Cuando el material volumétrico se compra calibrado debe recibirse con su certificado correspondiente.
Necesitas saber sobre la esterilización de materiales de laboratorio para trabajar en uno, hay muchos diferentes tipos de bacterias que no pueden distribuirse juntas y sin observación o sin la intención de ser observadas, por lo cual hay que llevar una correcta esterilización de todos los utensilios de trabajo.
🌡 Equipos de esterilización de materiales de laboratorio
Un ambiente estéril es una necesidad en la mayoría
de los laboratorios, en particular en microbiología y laboratorios médicos.
Los autoclaves, los sistemas de limpieza in
situ (CIP) y de esterilización in situ (SIP), los esterilizadores y hornos de
calor seco, los esterilizadores de vapor, los esterilizadores de medios y las
cámaras UV trabajan para esterilizar el equipo y los suministros.
Equipos adecuados para la esterilización de materiales de laboratorio
Los autoclaves esterilizan el equipo al someterlo a vapor presurizado durante un tiempo establecido, tal vez 20 minutos a 121 ° C, 15 psig. Las características que se deben buscar incluyen operación automática, puerta de fácil cierre y ciclos de pre-vacío para eliminar el aire de la cámara. Los esterilizadores y hornos de calor seco, que utilizan aire caliente para la esterilización, son particularmente útiles para desinfectar ciertos polvos y aceites.
🌡 Métodos de esterilización de materiales de laboratorio
<
La esterilización de los materiales usados en el laboratorio es un asunto crucial para todos los involucrados, clínicas y hospitales. A menos que el equipo utilizado se esterilice de vez en cuando, los establecimientos de salud no podrán permanecer en funcionamiento. Contrariamente a la creencia popular, hay muchos métodos diferentes para esterilizar equipos médicos. A continuación, se muestra una descripción básica de las diferentes técnicas utilizadas para esterilizar el equipo médico en muchos laboratorios, como los laboratorios de Gibraltar.
Esterilización mediante autoclave
Un autoclave es una máquina de tamaño
variable. Utiliza alto calor y presión y vapor para esterilizar equipos
médicos. El tiempo necesario para la esterilización depende de la temperatura
alcanzada por el autoclave y de la configuración de los materiales a
esterilizar. El factor crítico es que el material debe tener un camino sin
obstrucciones al vapor.
Esterilización de materiales de laboratorio a través del vapor
Este tipo de esterilización es bastante común
en las instalaciones de salud y es utilizado por los fabricantes de
instrumentos ortopédicos y bandejas para validar sus instrucciones de uso. El
equipo se coloca en la cámara principal y el vapor se dirige hacia el equipo
médico. El alto calor y el vapor destruyen muchos organismos y garantizan que
el instrumento se deje limpio y esterilizado.
Esterilización vía
flash
Esta técnica es similar al uso de vapor para
la esterilización, pero tiene una diferencia de principio. La esterilización
instantánea de un objeto es significativamente más rápida que la esterilización
mediante vapor o muchos otros métodos.
Esterilización por
calor seco
La esterilización de equipos médicos a través de calor seco es un método eficaz para esterilizar equipos médicos. El calor seco se dirige hacia el equipo médico y cualquier microorganismo se destruye. Esto se debe a que el alto calor coagula las proteínas de la sangre y asegura que los microorganismos se destruyan.
Esterilización por
calor húmedo
Esta fue una de las primeras técnicas de
esterilización. El aire caliente (con vapor de agua) se dirige hacia
instrumentos médicos, desnaturalizando muchos microorganismos en el proceso.
Esto asegura que cualquier bacteria o microbio que crece en el instrumento se
destruya.
Esterilización por
Radiación
La radiación, especialmente la radiación
gamma, se usa para esterilizar el equipo médico. La radiación gamma garantiza
la destrucción de muchos tipos diferentes de microbios. Curiosamente, la
radiación siempre se usa para esterilizar escalpelos y muchos otros instrumentos
médicos metálicos.
Como es evidente, hay muchos métodos de esterilización de equipos médicos. Aunque no todas las técnicas son empleadas por ningún hospital, muchas de las técnicas anteriores todavía se utilizan para esterilizar equipos médicos. En conclusión, los pacientes pueden estar seguros de que el equipo utilizado para mantener su salud está limpio, de acuerdo con el estándar y perfecto para usar en su cuerpo.
🔹 Esterilización de materiales de laboratorios (Resultados)
La esterilización también se puede usar para
eliminar agentes biológicos casi vivos, como virus y priones, que muchos
científicos no están convencidos de que estén «vivos». La falta de
eliminación de virus y priones de los instrumentos y superficies puede presentar
graves ramificaciones para la seguridad del paciente y del personal. por eso es
importante seleccionar la técnica de esterilización más apropiada.
🍀 Esterilización versus desinfección
La esterilización se distingue de la
desinfección porque mata, desactiva o elimina todas las formas de vida o
agentes biológicos. La desinfección se refiere específicamente a la eliminación
de agentes biológicos nocivos. En términos prácticos, la esterilización puede
ser necesaria en situaciones críticas para la salud, como hospitales, mientras
que la desinfección es un proceso que se utiliza en su cocina o baño.
⭐ Formas de esterilización física
Se pueden usar muchas técnicas para
esterilizar superficies. Primero, el calor y la presión pueden eliminar
sustancias lábiles de los instrumentos y equipos. Los compuestos biológicos,
como algunas proteínas y virus, presentan desafíos durante la esterilización.
Los priones, por ejemplo, han demostrado resistir la desnaturalización por
calor y presión, así como muchos químicos y enzimas. Se recomienda la
modificación covalente de estos compuestos para su eliminación.
Luego, la radiación ionizante (como los rayos
X) también es un esterilizador eficiente, que actúa para liberar electrones de
las moléculas. Dado que muchos agentes transmisibles requieren ADN y ARN para
su propagación, cortar la estructura del ácido nucleico puede ser un medio útil
para reducir su transmisión. Si bien esta técnica ha demostrado ser efectiva
para una desinfección segura, se debe prestar mucha atención a la eliminación
posterior de estos compuestos, ya que las esporas de bacterias y hongos
resisten la mayoría de las técnicas de irradiación.
📌 Esterilizadores por químicos comunes
El óxido de etileno (EtO) se usa comúnmente
para esterilizar objetos que son sensibles a temperaturas superiores a 140 ° F
/ 60 ° C y / o radiación. Estos incluyen componentes de plástico o suministros,
óptica y electrónica. Las altas temperaturas pueden dañar fácilmente los
plásticos y la óptica y hacer que el dispositivo no sea adecuado para su
aplicación original. Por lo tanto, el EtO se usa comúnmente para esterilizar
equipos médicos duraderos y catéteres y endoscopios de un solo uso pre
envasados. El químico tiene un efecto disruptivo sobre el ADN, lo que hace que
los microorganismos no puedan reproducirse. Si bien este procedimiento de
esterilización produce buenos resultados, debe tenerse en cuenta que el (EtO)
es un carcinógeno conocido y presenta un grave riesgo para el personal si no se
controla cuidadosamente.
Si bien muchos de estos métodos individuales
son capaces de esterilizar efectivamente las superficies, comúnmente se usan en
combinación para desarrollar un protocolo de esterilización robusto. Si bien la
esterilización en sí misma no requiere una validación posterior para su uso en
un entorno de fabricación, se recomienda encarecidamente que estos procesos se
supervisen y cuantifiquen de cerca siempre que sea posible para garantizar
resultados seguros y confiables que aumenten la seguridad del paciente y del
personal.
🔍 Métodos para esterilizar cristalería
En la
mayoría de los grandes laboratorios, la cristalería se lava en tres pasos,
como:
Lavadora
automática.
Seguido de
un ciclo de enjuague especial.
Luego
manténgala en el secador automático (por debajo de 100 ° C).
Enjuague
la cristalería con un disolvente orgánico miscible con agua y luego expóngala a
una corriente de aire o nitrógeno.
El uso más
común es el de los productos químicos.
🌡 Proctólogo para esterilizar cristalería
Descontamine
la cristalería preparando previamente en lejía al 5% o hirviéndola.
Se puede
utilizar cualquier tipo de detergente o polvo de limpieza.
Autoclave
puede ser el método alternativo.
Si la
cristalería se empapa en agua después del uso que es ideal.
Si lo
sobra, manténgala en la solución detergente durante la noche.
Ahora
enjuague con agua del grifo, seguido de un enjuague con agua des ionizada.
🔬 Los desinfectantes usados para esterilizar más comunes son:
Productos químicos liberadores de cloro donde el cloro es activo contra las bacterias gram positivas y negativas, incluidos los virus VIH y HB.
Algunos ejemplos son el hipoclorito (solución de lejía), que se usa en el hogar y en la lavandería.
Los aldehídos son formaldehído y glutarildehído.
Alcohol usado en etanol o propanol 70 a 80% V / V.
Los fenoles como el hycolin, Clearsol, Stericol y Printol.
Prueba para comprobar la limpieza de la cristalería.
Verifique el agua de enjuague final que debe moverse con una acción de laminado, dejando una película delgada sobre la superficie.
Si la película se rompe en gotitas, o la superficie está húmeda de manera desigual, entonces indica que la cristalería no está limpia.
Las placas de petri de laboratorio son complementos indispensables para llevar a cabo el trabajo de un bioanalista, o cualquier profesional en carreras a fines.
🔍 ¿Qué son placas de Petri?
Es un
plato cilíndrico poco profundo con tapa de vidrio que se usa típicamente para
cultivar microorganismos (placas de agar). Hay placas de Petri de vidrio y de
plástico, y ambas pueden ser esterilizadas (usando un autoclave) y
reutilizadas. Antes de su uso para fines de cultivo, es importante asegurarse
de que la placa de Petri no sólo esté limpia, sino también estéril. Esto ayuda
a prevenir la contaminación del nuevo cultivo.
🌡 ¿Para qué sirven las placas de Petri de laboratorio?
La placa de petri fue hecha para la separación. Fue desarrollado para cultivar microorganismos mientras se los separa de los contaminantes del aire. Como parte de su capacidad para hacer separaciones entre el mundo exterior contaminado y el mundo interior no contaminado, el plato también ayudó a separar a los individuos de la enfermedad. En estos días, es cada vez más difícil para las placas de Petri mantener estas separaciones.
🔬 Historia detrás de la fabricación de las placas de Petri
Julius Richard Petri (1852-1921) trabajó como asistente de Robert Koch en Berlín en la oficina de Imperial Health. Koch, quien identificó los microorganismos responsables del cólera, el ántrax y la tuberculosis, fue, junto con Pasteur y Lister, uno de los «padres de la microbiología» de finales del siglo XIX, alias «padres de la teoría de los gérmenes». Cuando Petri llegó al laboratorio de Koch 1877, los asistentes de laboratorio utilizaban placas de vidrio plano para hacer crecer colonias de bacterias. Vertían las bacterias junto con un medio de cultivo de gelatina sobre el vidrio, ponían en capas los platos, los cubrían con una gran jarra de vidrio y luego calentaban todo para cultivar la colonia.
Este fue un proceso engorroso y dificulta el conteo de bacterias bajo el microscopio, una herramienta esencial para hacer visibles los microorganismos. Petri mejoró la técnica: desarrolló un plato doble más pequeño, redondo y de fondo plano con lados. Un plato era un poco más grande, sirviendo como tapa y escudo. Como explicó Petri, en su breve artículo de 1887 , «En una pequeña modificación de la técnica de recubrimiento de Koch», «en estas condiciones, la contaminación por gérmenes en el aire rara vez ocurre . » La clave de esta modificación fue cómo Petri hizo que su plato se ajustara al microscopio.
Microorganismos
<
La
placa de Petri ayudó a los científicos de laboratorio a ver y contar algo que
era nuevo: los microorganismos. Solo unas pocas décadas antes, los científicos
habían comenzado a identificar las enfermedades como entidades independientes,
separadas de los entornos idiosincrásicos y los cuerpos humanos. La placa de
Petri ayudó a desarrollar la microbiología y la relativamente nueva
«teoría de los gérmenes» de la enfermedad.
Las placas de petri también se llaman platos de cultivo celular. Este uso de la «cultura» se remonta al cultivo de la agricultura y la ganadería de la 16a.Siglo, que se extendió al proceso de desarrollo humano y eventualmente lo vincularon filósofos, como Johann Gottfried Herder, a personas que se marinan en condiciones particulares de lugar, idioma, espíritu y tradición. Esta cultura no se oponía a la naturaleza, como sucedió más tarde, sino que formaba parte de los procesos materiales del desarrollo de un organismo.
La capacidad de la placa de Petri para cultivar bacterias y evitar la contaminación era, por lo tanto, antigua y nueva: viejo porque el cultivo de bacterias desarrolló organismos conformados por las condiciones enmarañadas del medio de cultivo que las rodeaba; nuevo porque la promesa de los límites demarcados de un experimento controlado con una placa de Petri propuso un mundo donde la separación entre los organismos y el medio ambiente era posible.
🔹 Descripción de las placas de Petri de laboratorio
Las
placas de Petri se pueden rellenar con medios semi sólidos dentro de la
superficie de las cuales se pueden cultivar bacterias (u otros
microorganismos). Esto permite al microbiólogo observar el tamaño, la forma, el
color y otros caracteres de las colonias que se forman. Estas observaciones
ayudan a identificar las especies y proporcionan otra información sobre las
bacterias. Una colonia es un agregado de crecimiento bacteriano y puede
contener hasta 10 ^ 10 células y puede haber comenzado con una célula.
Son
cilindros de vidrio o de plástico semi transparente que aíslan las bacterias del
aire que puede contaminarlas.
Con un tamaño de muestra específico, se espera el recuento regulado dentro de una limitación específica en relación con el área de superficie en función del volumen especificado. Una placa de Petri específica para tipos de bacterias específicas.
Se utiliza con un filtro de 47 mm de diámetro, con o sin almohadilla.
Menos de 1% de pérdida de humedad a 35 ° C (95 ° F) durante un período de 24 horas
El diseño único de la pata deja espacio entre los platos para una distribución uniforme de la temperatura durante la incubación
Poli estireno ópticamente transparente, radiación gamma esterilizada
EasYDish
disco de Petri
Los
platos Thermo Scientific ™ Nunc ™
EasYDish ™ son la próxima generación de platos de cultivo celular que
mejoran la manipulación, el apilamiento y el transporte de cultivos celulares
en su laboratorio. El anillo de agarre biselado es fácil de sostener y se
mantiene seguro en su mano enguantada. Los platos reciben el tratamiento
estándar de superficie Nunclon Delta para maximizar la adhesión para la mayoría
de los tipos de células. Disponible en cuatro tamaños: 35 mm, 60 mm, 100 mm y
150 mm.
Anillo de agarre biselado
Asegura que la tapa permanezca en
posición cuando se manipula el plato
Hace que sea más fácil de agarrar
y manejar con una mano enguantada
Diseño de muesca propietario
Maximiza la ventilación
manteniendo la esterilidad.
Restringe el movimiento de la tapa
asegurando un ajuste seguro de la tapa al plato
Aumenta la fuerza física del
plato.
Borde exterior elevado en la tapa
del plato
Permite el apilamiento estable
durante el transporte de cultivos celulares.
Marcas de orientación en el fondo
del plato
Simplifica la localización de
células al microscopio.
Área de escritura
Mejora la trazabilidad de los
cultivos celulares.
Embalaje resellable
Promueve la limpieza de los
paquetes abiertos.
📌 Placas de Petri para laboratorio hechas de plástico
Transparente y a prueba de golpes.
Reusables
100 mm de diámetro x 15 mm de alto
Apilable, para mayor comodidad.
Los platos de polimetil-penteno
ofrecen una resistencia química superior y resisten la adhesión de las células
🌡 ¿Dónde comprarlos?
Mercado
libre ofrece:
Placa De Petri Simple. Plástico.
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Un laboratorio de microbiología es como el santuario de un especialista de salud, hay muchas cosas que necesitas saber sobre un laboratorio de este tipo que puede parecerte impresionante.
🔬 ¿Qué es un laboratorio de microbiología?
El objetivo principal de este laboratorio es
ayudar en el diagnóstico de enfermedades infecciosas. Esto comienza cuando el
paciente ingresa al sistema de atención médica y presenta ciertos signos y
síntomas compatibles con una enfermedad infecciosa. El médico del paciente
luego ordena pruebas específicas para aclarar la presencia de una enfermedad
infecciosa. Estas enfermedades pueden incluir aquellas causadas por bacterias
(por ejemplo, estreptococos del grupo A que pueden causar estreptococos en la
garganta); las causadas por virus (p. ej., influenza A que causa la gripe); las
causadas por hongos (p. ej., Candida, que puede causar infecciones vaginales
por levaduras); o las causadas por parásitos (p. ej., Giardia, que puede causar
diarrea).
🌡 Reglas a tomar en cuenta en un laboratorio de microbiología
La seguridad en un laboratorio de
microbiología es importante en la prevención de infecciones, ya que el
laboratorio de microbiología cultiva, manipula y utiliza microorganismos
virulentos y / o potencialmente patógenos. Además de los microorganismos, hay
algunos productos químicos utilizados en este laboratorio que son
potencialmente dañinos. Muchos procedimientos involucran cristalería, llamas
abiertas y objetos afilados que pueden causar traumas / daños si se usan
incorrectamente.
Los procedimientos de laboratorio deben
leerse antes de asistir a esa sesión de laboratorio.
Fumar, comer y beber en el laboratorio están absolutamente prohibidos en el laboratorio en cualquier momento.
Solo se deben usar zapatos cerrados en el laboratorio. No se permiten las sandalias o los zapatos de punta abierta o de lona debido al peligro constante de cortes e infecciones por vidrios rotos que se encuentran en los pisos del laboratorio y la posibilidad de derrames químicos.
Mantenga las manos y otros objetos lejos de su cara, nariz, ojos, oídos y boca. La aplicación de cosméticos en el laboratorio está prohibida en el laboratorio.
Las áreas / superficies de trabajo deben desinfectarse antes y después del uso.
Las batas de laboratorio se deben usar y abotonar en el laboratorio. Las batas de laboratorio no deben usarse fuera del laboratorio.
Se deben usar gafas protectoras al realizar cualquier ejercicio o procedimiento en el laboratorio.
El cabello largo debe asegurarse detrás de su cabeza para minimizar el riesgo de incendio o la contaminación de los experimentos.
Las manos deben lavarse antes de salir del laboratorio.
Al ingresar al laboratorio, deben colocarse abrigos, libros y otros accesorios, por ejemplo, carteras, maletines, etc. en lugares específicos y nunca en mesas de trabajo (excepto el manual de laboratorio).
Nunca pipetee nada con la boca (incluso el agua). Utilice siempre dispositivos de pipeteo.
No debes olvidar lo más importante en un laboratorio de microbiología
Etiquete todos los materiales con su nombre, fecha y cualquier otra
información aplicable (por ejemplo, medios de comunicación, organismo, etc.).
Deseche los desechos en sus recipientes apropiados (consulte la sección
Eliminación de desechos con riesgo biológico a continuación).
Al manipular productos químicos, anote el código de peligro en la
botella y tome las precauciones apropiadas indicadas.
No vierta productos químicos en el fregadero.
Devuelva todos los productos químicos, reactivos, cultivos y
cristalería a sus lugares apropiados.
No vierta fluidos biológicos peligrosos en el fregadero.
La cristalería debe lavarse con agua y jabón, luego enjuagarse con agua
destilada.
Bucles de transferencia de llama, cables o agujas antes e
inmediatamente después del uso para transferir material biológico.
No camine por el laboratorio con bucles de transferencia, cables,
agujas o pipetas que contengan material infeccioso.
Tenga cuidado con los quemadores Bunsen. Las llamas no siempre se
pueden ver.
Apague los incineradores antes de salir del laboratorio.
Reporte cualquier equipo roto, inmediatamente, reporte cualquier vidrio
roto, especialmente aquellos que contengan materiales infecciosos.
Si se lesiona en el laboratorio, comuníquese de inmediato con el
instructor de su curso o TA.
Los derrames, cortes y otros accidentes deben informarse al instructor
o a la AT en caso de que sea necesario un tratamiento adicional.
Familiarícese con el equipo de seguridad en el laboratorio y las rutas
de escape de emergencia.
Siempre limpie y limpie las lentes de su microscopio antes de
guardarlo. Utilice el papel de seda adecuado y la solución de limpieza para
este propósito.
Use las precauciones universales apropiadas con todos los fluidos
biológicos.
🔹 Bioseguridad de un laboratorio de microbiología
Equipo de seguridad (barreras primarias del laboratorio de microbiología)
El equipo de seguridad incluye gabinetes de
seguridad biológica y una variedad de contenedores cerrados. El gabinete de
seguridad biológica es el dispositivo principal utilizado para proporcionar la
contención de los aerosoles infecciosos generados por muchos procedimientos
microbiológico.
Diseño de instalaciones (barreras secundarias)
<
La administración del laboratorio es
responsable de proporcionar instalaciones acordes con la función del
laboratorio. A continuación, se describen tres diseños de instalaciones, en
orden ascendente por nivel de contención.
1. El laboratorio básico: este
laboratorio proporciona un espacio general en el que se trabaja con agentes
viables que no están asociados con enfermedades en adultos sanos.
2. El laboratorio de contención:
este laboratorio tiene características de ingeniería especiales que hacen
posible que los trabajadores del laboratorio manipulen materiales peligrosos
sin poner en peligro a ellos mismos, a la comunidad o al medio ambiente.
3. El laboratorio de máxima contención: este laboratorio tiene características especiales de ingeniería y
contención que permiten realizar actividades que involucran agentes infecciosos
que son extremadamente peligrosos para el trabajador del laboratorio o que
pueden causar que una enfermedad epidémica grave se realice de manera segura.
Niveles
Nivel aplicable a las
instalaciones clínicas, de diagnóstico, de enseñanza y otras en las que se
trabaja con el amplio espectro de agentes indígenas de riesgo moderado
presentes en la comunidad y asociados con enfermedades humanas de severidad
variable Con buenas técnicas microbiológicas, estos agentes pueden usarse de
manera segura en actividades realizadas en el banco abierto, siempre que el
potencial para producir aerosoles sea bajo.
Nivel aplicable a las instalaciones clínicas, de diagnóstico, de enseñanza, de investigación o de producción en las que se trabaja con agentes exóticos o indígenas donde el potencial de infección por aerosoles es real y la enfermedad Puede tener consecuencias graves o letales.
🍀 Prácticas de un laboratorio de microbiología
Para que la microbiología pueda ayudar a
diagnosticar la enfermedad infecciosa correcta, se producen varios pasos. El
primer paso es la recolección de las muestras apropiadas para diagnosticar la
enfermedad del paciente. Por ejemplo, si existe la posibilidad de una infección
de la vejiga, el médico puede ordenar un análisis de orina que analice los
tipos de células presentes en la orina, como los glóbulos rojos y blancos, así
como una muestra de orina para un cultivo que crezca. Organismo que está
causando la infección.
Las muestras se pueden recolectar de varias
fuentes diferentes, incluidas muestras de sangre, orina y frotis de la
garganta. A veces se requiere una técnica más invasiva que use una aguja u otro
instrumento especial para recolectar la muestra. ¡Este primer paso en el
diagnóstico microbiológico de enfermedades infecciosas es muy importante! Un
espécimen de buena calidad significa la mejor oportunidad de diagnosticar la
enfermedad infecciosa.
⭐ Importancia de los laboratorios de microbiología
La vacunación y la terapia con antibióticos
han beneficiado a millones de personas. Sin embargo, los recursos limitados
ahora amenazan nuestra capacidad para manejar adecuadamente las amenazas de
enfermedades infecciosas al ubicar los servicios de microbiología clínica y la
experiencia alejados del paciente y su médico de enfermedades infecciosas.
Seguir en esa dirección amenaza la calidad de los resultados de laboratorio, la
puntualidad del diagnóstico, la idoneidad del tratamiento, la comunicación
efectiva, la reducción de las infecciones asociadas a la atención de salud, los
avances en la práctica de las enfermedades infecciosas y la capacitación de
futuros profesionales.
Los laboratorios de microbiología son las primeras líneas de defensa para la detección de nuevas resistencias a los antibióticos, los brotes de infecciones transmitidas por los alimentos y un posible evento de bioterrorismo.
📌 Equipos usados en un laboratorio de microbiología
El equipo de microbiología es una categoría
grande que abarca todo tipo de artículos utilizados en los laboratorios de
microbiología. La microbiología es el estudio de formas de vida microscópicas y
es utilizada por científicos que estudian virus, plantas, hongos, protozoos,
células y parásitos. Muchas industrias utilizan la microbiología para fines de
control de calidad, para demostrar que no hay contaminantes vivos o para
determinar qué tipo de contaminantes hay para que sepan cómo solucionar el
problema.
Los equipos de microbiología incluyen
microscopios; diapositivas Tubos de ensayo; platos de Petri; medios de
crecimiento, tanto sólidos como líquidos; bucles de inoculación; pipetas y
puntas; incubadoras Autoclaves, y campanas de flujo laminar. Algunos equipos,
como los microscopios y las cubiertas, son elementos permanentes, mientras que
otros, como las puntas de las pipetas, son desechables. Tener una autoclave es
una forma de poder reutilizar equipos, como diapositivas y placas de Petri, que
de lo contrario se podrían haber tirado.
🌡 Estructura de un laboratorio de microbiología
El microbiólogo médico es responsable de la política general del laboratorio y responde al jefe del departamento de medicina de laboratorio. En laboratorios sin microbiólogos médicos, un patólogo general o un doctorado. El microbiólogo (con suerte con capacitación especial en microbiología clínica) puede supervisar el laboratorio.
Los tecnólogos, estratificados según la
experiencia y la capacitación, realizan el procesamiento diario de los
especímenes y un gerente de laboratorio los supervisa. Los tecnólogos en
microbiología, en general, son un excelente recurso para los médicos y manejan
muchas consultas de rutina. Cualquier problema que sientan que no pueden
manejar se refiere al microbiólogo médico.
Etiquetado de especímenes
¡Un espécimen que llega al laboratorio sin
etiquetar no se procesa! Es imperativo que se preste atención a esta parte
crucial de la adquisición de la muestra. Las muestras deben ser etiquetadas una
vez obtenidas. El etiquetado previo de los recipientes de muestras puede tener
consecuencias desastrosas. La persona que obtiene el espécimen debe etiquetar
el espécimen o al menos asegurarse de que se haya realizado correctamente. El
procedimiento no está completo hasta que la muestra se encuentre en un recipiente
debidamente etiquetado. La etiqueta debe incluir:
Nombre completo
Número de cuidado de salud
Fecha de nacimiento
Se tomó la muestra de fecha y
hora. (Muy a menudo el tiempo no está indicado)
🔬 Esterilización en los laboratorios de microbiología
Las técnicas de esterilización efectivas son
esenciales para trabajar con líneas celulares aisladas por razones obvias por
las que no desea que crezcan los insectos del medio ambiente en su medio de
cultivo, e igualmente, los cultivos deben esterilizarse antes de desecharlos.
Calor húmedo (Autoclave)
El método de elección para la esterilización
en la mayoría de los laboratorios, es la autoclave. Utilizando vapor a presión
para calentar el material a esterilizar. Este es un método muy efectivo que
mata todos los microbios, esporas y virus, aunque para algunos errores
específicos, se requieren especialmente altas temperaturas o tiempos de
incubación.
La autoclave mata a los microbios por
hidrólisis y coagulación de proteínas celulares, lo que se logra de manera eficiente
mediante el calor intenso en presencia de agua.
El calor intenso proviene del vapor. El vapor
a presión tiene un alto calor latente; a 100degC retiene 7 veces más calor que
el agua a la misma temperatura. Este calor se libera al entrar en contacto con
la superficie más fría del material a esterilizar, lo que permite un suministro
rápido de calor y una buena penetración de los materiales densos.
Calor seco (flameado,
horneando)
El calentamiento en seco tiene una diferencia
crucial con la autoclave. Lo has adivinado: no hay agua, por lo que la
hidrólisis de proteínas no puede realizarse.
En cambio, el calor seco tiende a matar los
microbios por oxidación de los componentes celulares. Esto requiere más energía
que la hidrólisis de proteínas, por lo que se requieren temperaturas más altas
para una esterilización eficiente con calor seco.
Por ejemplo, la esterilización se puede
lograr normalmente en 15 minutos en autoclave a 121 ° C, mientras que el
calentamiento en seco generalmente necesita una temperatura de 160 ° C para
esterilizarse en un período de tiempo similar.
Filtración
La filtración es una excelente manera de
esterilizar rápidamente las soluciones sin calentamiento. Los filtros, por
supuesto, funcionan al pasar la solución a través de un filtro con un diámetro
de poro que es demasiado pequeño para que los microbios lo atraviesen.
Los filtros pueden ser embudos de vidrio desmenuzado
hechos de partículas de vidrio fundidas por calor o, más comúnmente en la
actualidad, filtros de membrana hechos de ésteres de celulosa. Para la
eliminación de bacterias, normalmente se utilizan filtros con un diámetro de
poro promedio de 0.2um.
Pero recuerde, los virus y los fagos pueden
pasar a través de estos filtros, por lo que la filtración no es una buena
opción si estos son un problema.
Disolventes
El etanol se usa comúnmente como
desinfectante, aunque como el isopropanol es un mejor disolvente para la grasa,
probablemente sea una mejor opción.
Ambos trabajan desnaturalizando proteínas a
través de un proceso que requiere agua, por lo que deben diluirse al 60-90% en
agua para que sean eficaces.
Una vez más, es importante recordar que aunque
el etanol y la API son buenos para matar las células microbianas, no tienen
efecto sobre las esporas.
Radiación
Los rayos UV, rayos X y rayos gamma son todos
los tipos de radiación electromagnética que tienen efectos muy dañinos sobre el
ADN, por lo que son excelentes herramientas para la esterilización.
La principal diferencia entre ellos, en
términos de su efectividad, es su penetración.
Los rayos UV tienen una penetración limitada
en el aire, por lo que la esterilización solo ocurre en un área bastante
pequeña alrededor de la lámpara. Sin embargo, es relativamente seguro y es
bastante útil para esterilizar áreas pequeñas, como las campanas de flujo
laminar.
Los rayos X y los rayos gamma son mucho más
penetrantes, lo que los hace más peligrosos pero muy efectivos para la
esterilización en frío a gran escala de artículos de plástico (por ejemplo,
jeringas) durante la fabricación.
Estos son algunos de los principales métodos de esterilización que se me ocurren. Si me he perdido alguno, no dude en hacérmelo saber en la sección de comentarios.
Podridas necesitar la función del embudo de separación, si eres estudiante de química o incluso cursas carreras afines, ten la seguridad de que lo vas a necesitar, es un instrumento maravilloso con funcionamiento muy práctico.
🌡 ¿Qué es?
Los embudos de separación, o
embudos de separación, son un elemento común en los laboratorios de química.
Estos embudos se utilizan para separar líquidos inmiscibles de sus solutos. El
embudo suele ser de vidrio, en forma de pera, y generalmente incluye un tapón y
una llave de paso.
Los embudos de separación
funcionan según el principio de que los líquidos inmiscibles se separarán unos
de otros de forma natural junto con sus solutos, creando diferentes capas de
solución-soluto. Por ejemplo, un soluto no polar se puede extraer de una
solución mezclándolo con un solvente no polar en un embudo de separación.
Después de la mezcla inicial, la solución inicial y el solvente no polar se
separarán y el soluto estará en el nuevo solvente. Estas capas se pueden separar
a perpetuidad al drenarlas del embudo de separación utilizando la llave de paso
para controlar el flujo.
🔬 Uso del embudo
El uso adecuado de un embudo de
separación requiere tiempo y destreza. Primero, debe reconocer que el propósito
es crear la máxima mezcla posible de las dos capas, luego permitir que se
separen (de ahí el nombre). Una complicación es la creación de una acumulación
de presión que puede provenir de la presión de vapor inherente del solvente
orgánico (el éter y el diclorometano son particularmente desagradables en este
aspecto) o de la evolución del gas en el caso de lavados con bicarbonato de
sodio. Necesitas poder identificar qué capa es cuál (¡para que sepas cuál
conservar!). Finalmente, desea evitar contaminar la capa deseada con grasa de llave
de paso o con cualquiera de las otras capas.
Añadir los dos líquidos.
Normalmente, comenzarás con una mezcla de reacción orgánica en un disolvente orgánico. Cierre la llave de paso. Agregue el líquido orgánico a través de la abertura del tapón en la parte superior. Luego agregue la solución acuosa; si se prevé una reacción química (por ejemplo, la formación de CO 2 de la neutralización de un ácido con bicarbonato) asegúrese de agregar la solución acuosa lentamente.
Mezcla inicial
<
Si se produce un desprendimiento de gas, agite
lentamente el contenido del embudo de separación hasta que la mayoría de la
espuma cese. En este punto, debe realizar la maniobra más difícil: coloque el
tapón en la abertura en la parte superior y levante el embudo de separación. Sosténgalo con una mano alrededor de la
parte inferior del matraz con el pulgar y el índice en la manija de la llave de
paso, y con la otra mano agarrando el pennyhead del tapón (si tiene uno):
En un movimiento, invierta el
embudo de separación y abra la llave de paso a medida que se eleva por encima
de la superficie del líquido. Debes escuchar un «zumbido» de escape
de presión de gas.
Hay varios desafíos en este
proceso:
Si el tapón no está lo
suficientemente apretado, el peso del líquido hará que se escape por la
abertura del tapón. Sin embargo, si fuerza el tope demasiado apretado, se
congelará.
Si abre la llave de paso
demasiado pronto, el líquido saldrá por esa abertura.
Si todo el proceso no se realiza rápidamente, la acumulación de presión en el matraz forzará el tapón hacia afuera mientras se invierte el embudo.
El proceso de extracción
En este punto, no ha mezclado las dos capas lo
suficiente para obtener una buena extracción. Es necesario cerrar la llave de
paso y agitar la mezcla vigorosamente. Esto creará más acumulación de presión,
por lo tanto, deténgase y ventile periódicamente. Normalmente, tres ciclos de
sacudidas y ventilación son suficientes para cada paso de extracción.
Separación de las capas
Ahora estás listo para separar las capas. Coloque el embudo de separación de nuevo en el soporte del anillo. Las dos capas deben separarse por sí mismas; Si no, o si solo se separan parcialmente, vea Emulsiones a continuación. Quite el tapón y colóquelo sobre una toalla de papel limpia. Una vez que se haya eliminado la última parte de la emulsión, drene la capa inferior en un recipiente apropiado (los líquidos orgánicos se guardan en matraces Erlenmeyer; los líquidos acuosos se pueden almacenar en vasos de precipitados).
🍀 Las emulsiones en el funcionamiento del embudo de separación
A veces, las dos capas no se
separan fácilmente debido a la formación de una emulsión. (Ya has visto esto
antes; la leche es una suspensión de grasas y proteínas en el agua). A menudo,
simplemente dejar la mezcla sola durante 5-10 minutos permitirá que se separe.
Si esto falla, intente lo siguiente:
Use una varilla de vidrio para
agitar el lado del embudo. A menudo, solo necesita obtener un núcleo de una
capa separada para iniciar el proceso. O bien, puede haber una película de
emulsión que evite que los glóbulos grandes de solución se unan.
Añadir pequeñas cantidades de
cloruro de sodio saturado. El cambio en la fuerza iónica tiende a atraer agua a
la solución salina. (Este es también el principio detrás del uso de NaCl
saturado como lavado final: extraer la mayor cantidad posible de agua de la
capa orgánica).
Agregue pequeñas cantidades de
solvente orgánico para diluir el producto orgánico y disminuir la tensión
superficial.
📌 Capacidad del embudo de separación
Hay diversos modelos de embudos
de separación, depende de su modo de fabricación
Embudos de separación de vidrio boro silicato claro y ámbar
Use un
tubo ranura do para amortiguar el embudo de separación en la abrazadera de
anillo.
Cierre la
llave de paso en el embudo de separación y coloque un matraz Erlenmeyer debajo
de la instalación, en caso de que gotee.
En el
embudo de separación, vierta el líquido que se va a extraer con un embudo: esto
evita que el líquido entre en la junta de vidrio esmerilado, lo que puede hacer
que se pegue.
Verter el
solvente extractivo en el embudo.
Sostenga
el embudo de separación de modo que sus dedos cubran firmemente el tapón.
Invierta
el embudo y agítelo suavemente durante 10-20 segundos.
Periódicamente
«ventile» el embudo (abra la llave de paso mientras está invertido
para liberar la presión). Nunca apunte la punta a alguien mientras ventea.
Vuelva a
colocar el embudo de separación en la abrazadera de anillo y deje que las capas
se separen.
Retire el
tapón (de lo contrario no se drenará).
Drene la
mayor parte de la capa inferior en un matraz Erlenmeyer.
Drene el
resto de la capa inferior, deteniéndose cuando la interfaz esté dentro de la
llave de paso.
Etiquete
el matraz (por ejemplo, «capa acuosa inferior»).
Vierta la
capa superior en otro matraz Erlenmeyer (y etiquétalo).
No deseche
ninguna de las capas hasta que esté seguro de haber logrado el objetivo de la
extracción.
🔬 Características en el funcionamiento del embudo de separación
La mayoría de los modelos posean las siguientes características:
Botella de cuerpo con tapón, matraz de destilación, condensador de doble bobina, botella de cultivo con tapón de rosca, desecador al vacío, matraz de yodo, cubilete con boquilla, graduado , embudo de separación , forma de globo , embudo de separación , forma de pera, sodio Phytate Mncl2, Silica Gel (azul), grueso, cloroformo, gel de sílice G para Tlc Bandeja de acero inoxidable con perforación.
Para entender la función del embudo Büchner, debes tener en cuenta que es un instrumento de laboratorio utilizado para la filtración y que muy probablemente necesitarás uno.
🌡 ¿Cual es la función del embudo Büchner?
Tradicionalmente está hecho de porcelana, pero también hay disponibles embudos de vidrio y plástico. Sobre la parte con forma de embudo hay un cilindro con un disco de vidrio fritado / placa perforada que lo separa del embudo.
La
filtración simple, lenta y por gravedad requiere un pedazo de papel de filtro
en un embudo. Hay maneras más rápidas de filtrar.
🔬 Funciones más detalladas del embudo Büchner
Es un dispositivo utilizado para la filtración asistida por presión.
El
vacío en el matraz debajo del filtro permite que la atmósfera presiones sobre
la mezcla líquida/sólida para forzar el paso del líquido en el papel de filtro.
El dispositivo generador de vacío que usted adquiera es un aspirador, un
sencillo sistema tipo Bernoulli.
<
Fueron diseñados para funcionar con agua. Están adaptados para utilizar el aire. Cuando se conecta a la unidad del embudo Büchner, tiene aproximadamente 15 libras por pulgada empujando hacia abajo.
La filtración al vacío parece haberse introducido en la práctica de laboratorio a mediados del siglo XIX como una adaptación de su aplicación a la filtración industrial. En 1865, el químico suizo Jules Piccard recomendó un aparato que consistía en una botella de Woulfe de dos bocas, un embudo y un aspirador de agua o una bomba Geissler.
Las siguientes décadas vieron la introducción de modificaciones de esta configuración. El más notable de los cuales fue el diseño de embudo patentado de R. Hirsch, que más tarde fue modificado por Ernst Büchner. Tanto el embudo Hirsch como el embudo Büchner fueron fabricados por la firma alemana Max Kaehler y Martini de Berlín.
🔹 ¿Para qué se utiliza comúnmente?
Se usa
en laboratorios de química orgánica para ayudar a recolectar compuestos
recristalizados. La succión permite que el compuesto recristalizado húmedo se
seque de manera que quede el compuesto de cristal seco puro.
Sin
embargo, es necesario un secado adicional, mediante un horno u otros medios,
para eliminar tanto líquido residual como sea posible.
A
menudo se utiliza en combinación con un matraz Büchner, anillo Büchner y sellos
de sintetización. Un sellado hermético al vacío y la estabilidad del matraz y
el filtro Büchner son esenciales durante el proceso de filtración.
Se
puede usar un anillo Büchner con embudos, frascos, crisoles de vidrio y
crisoles Büchner de Büchner.
Pasos para llevar a cabo la función del embudo Büchner
Para
comenzar con la filtración es indispensable colocar en la base de este un tipo
de papel de filtro.
Una
vez realizado este paso, lo siguiente es verter el líquido que se quiere
filtrar.
En consecuencia,
las partículas quedaran atrapadas en el papel de filtro, mientras que el
líquido circulara por el embudo y se almacenara en el matraz.
Si el
vacío es proporcionado por un dispositivo de flujo de agua, un desbordamiento
del líquido podría provocar el derrame de un líquido peligroso en la corriente
de aguas residuales, una posible violación de la ley, dependiendo del líquido.
El
potencial de desbordamiento y la posibilidad de que el agua vuelva al matraz se
puede reducir utilizando una trampa entre el matraz y la fuente de vacío.
Comúnmente se cree que lleva el nombre del premio Nobel, Eduard Buchner (sin diéresis), pero en realidad lleva el nombre del químico industrial Ernst Büchner.
🍀 Producto Pyrex
Embudos Büchner con sinterización de diámetro
40 mm.
Los 40
mm discos sinterizados instalados en estos embudos se fabrican de la misma
Pyrex ® vidrio de boro silicato como los cuerpos de embudo, haciendo que estos
embudos adecuado para ser utilizado con una amplia gama de productos químicos
agresivos.
Amplia gama de embudos de filtro
Büchner con discos de vidrio sinterizado integrales
Cuerpo de disco y embudo fabricado
con vidrio Pyrex ® químicamente resistente
Para la filtración conveniente de
soluciones – No se requieren papeles de filtro – Muy resistente a la mayoría de
los reactivos corrosivos, incluido el amoníaco y el ácido sulfúrico concentrado.
Elección de diámetros de disco y
porosidades.
⭐ Ventajas de usar el embudo Büchner
La
principal ventaja de usar este tipo de filtración es que avanza mucho más
rápidamente (varios órdenes de magnitud) que simplemente permitiendo que el
líquido drene a través del medio de filtro a través de la fuerza de la
gravedad. Es esencial que la cantidad de líquido que se utiliza se limite a menos
de lo que desbordaría el matraz; De lo contrario, el líquido se introducirá en
el equipo de vacío.
Si el
vacío es provisto por un dispositivo de flujo de agua, un desbordamiento del
líquido podría ocasionar el derrame de un líquido peligroso en la corriente de
aguas residuales, una posible violación de la ley, dependiendo del líquido. El
potencial de desbordamiento y la posibilidad de que el agua se arrastre de
nuevo al matraz puede reducirse utilizando una trampa entre el matraz y la
fuente de vacío.
Se
utiliza en laboratorios de química orgánica para ayudar a recolectar compuestos
recristalizados. La succión permite que el compuesto recristalizado húmedo se
seque de tal manera que quede el compuesto de cristal seco puro que queda. Sin
embargo, a menudo es el caso que se requiera más secado, por un horno u otros
medios, para eliminar la mayor cantidad posible de líquido residual.
📌 Cuidados del embudo
Evitar
la reducción de la tasa de flujo
La cama embalada debe permanecer
mojada durante todos los pasos del procesamiento de la muestra.
Una capa de 1 mm de
disolvente/solución debe permanecer encima de la frita superior al final de
cada paso de procesamiento.
Permitir que el lecho se seque
durante el procesamiento de la muestra resultará en la compresión del lecho de
resina/absorbente. Esto nos llevará a una reducción significativa del caudal
durante los pasos subsiguientes del proceso de preparación/purificación de la
muestra.
Reactivación
de la cama de absorbente/resina
En caso de pérdida de caudal debido a un
sobrecalentamiento:
Deje que la cama se remoje en
metanol o acetona durante aproximadamente 20 minutos. Esto aflojará el lecho de
resina/absorbente para el futuro uso.
Aplique de 2 a 3 volúmenes
adicionales de metanol o acetona en el lecho utilizando presión al vacío. Como
todo el metanol o la acetona pasa a través del embudo, mantenga el vacío a
través del embudo de la cama durante 10-20 minutos adicionales. Esto eliminará cualquier
residuo de metanol o acetona que pueda quedar en la cama.
Antes de su uso, puede ser
necesario acondicionar el lecho de resina/absorbente con el disolvente
adecuado.
🔍 Función del Embudo Büchner de porcelana
Este
importante instrumento de laboratorio puede ser fabricado en diversos
materiales; vidrio, plástico y porcelana. El embudo es utilizado de la misma
forma sin importar de que este hecho, la diferencia radica en el tipo de estudio
y material empleado en él, de eso depende mucho el material con el que está
fabricado el embudo.
Para usar el embudo primero; el líquido a ser filtrado es volcado dentro del cilindro, y succionado a través de la placa cribada por una bomba de vacío creado con el efecto Venturi, mediante un kitasato y una corriente de agua. El embudo está provisto de un anillo o junta de caucho, de forma troncocónica, que encaja perfectamente en la boca de un matraz de Erlenmeyer con tubuladura lateral, llamado kitasato.
Si aún no te a quedado muy claro mira un video sobre el funcionamiento del embudo
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