MATRAZ DE FONDO PLANO: Para Que Sirve, Capacidad, Uso

 Todo buen profesional químico necesita un matraz de fondo plano, puedes adquirirlo junto con todo el instrumental necesario, debes tener en cuenta que hay varios tipos de matraz que igualmente son indispensables para tu trabajo.

🌡 ¿Qué es un matraz de fondo plano?

 Los frascos se utilizan en entornos de laboratorio (incluidos los laboratorios de química) para una variedad de propósitos. Se puede usar un matraz para medir el volumen de muestras y soluciones líquidas o calentar, enfriar, disolver, mezclar o hervir líquidos. Los frascos son generalmente de vidrio o plástico y pueden venir en una variedad de formas y tamaños. Típicamente, un matraz es más ancho en la base que en el cuello, con una abertura en la parte superior. Los matraces pueden tener fondos redondeados o planos.

  Un matraz de fondo plano se usa en configuraciones donde el matraz se colocará en una superficie nivelada, en lugar de una abrazadera o un tazón. Por otro lado, un matraz con un fondo redondo se sentará en un recipiente o se suspenderá sobre una superficie con una abrazadera.

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🔬 Usos del matraz de fondo plano

  Un matraz de fondo plano se usa en un laboratorio de química para experimentos que involucran la recolección y medición de líquidos, soluciones de mezcla y medios de cultivo. El diseño y la construcción del matraz de fondo plano le permite estar solo en el banco de laboratorio. Mira aquí para que sirve el matraz de fondo plano

🔹 Características del matraz de fondo plano

  1. El matraz de fondo plano tiene forma redonda en su parte inferior y además tiene un cuello recto y alargado.
  2. Se utiliza para calentar sustancias y medir las reacciones.
  3. Por lo general se utiliza un material de gasa para poner una barrera entre el calor y el matraz para evaluar las reacciones de forma segura y también es utilizado en el cultivo bacteriológico.
  4. Hay una diferencia entre un matraz de fondo plano y uno de fondo redondo y es que este último no dispone de la base para mantenerse erguido sobre la superficie, se le debe colocar una.
  5. Aunque es muy bueno para calentar sustancia, esta no adquiere el calor uniforme que necesita, esta es otra diferencia con los matraces redondos.
  6. Los matraces de fondo plano no son tan fuertes ni duraderos como los matraces de fondo redondo. A pesar de esta desventaja, tienen una característica a su favor: no tienen las esquinas afiladas y vulnerables de un matraz Erlenmeyer, por ejemplo.

🍀 Variaciones del matraz de fondo plano de otros matraces

Matraz Erlenmeyer

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  El matraz Erlenmeyer también se conoce como matraz cónico. Es un matraz de forma interesante, un cuerpo de cono y un cuello cilíndrico, fue creado en 1860 por el químico alemán Emil Erlenmeyer.

  Generalmente son de cristal, pero también pueden ser fabricados de plástico y también pueden ser fabricados dependiendo del volumen que se requiera.

   La boca de un matraz Erlenmeyer puede tener un tipo de labio que puede detenerse con un trozo de algodón, corcho o goma.

  Gracias a que los lados del matraz son estrechos, se puede mezclar el líquido dentro de el sin ningún problema o preocupación por perder nada.

Matraz medido

  Estos matraces son instrumentos de laboratorio, calibrados para contener una cantidad precisa de volumen a una temperatura particular. Los matraces volumétricos se utilizan para diluciones y preparaciones precisas de soluciones estándar.

  Los cuellos de los matraces volumétricos son alargados y delgados, con un anillo para marcar su graduación. Esta marca indica el volumen de líquido que contiene cuando se llena hasta ese punto.

🍀 Vasos de precipitación

  Estos vasos están disponibles en muchos tamaños y presentaciones, se utilizan para calentar y mesclar cualquier clase de líquidos para ser sometidos a estudios.

Matraz de fondo plano DURAN® con borde moldeado

   La distribución uniforme del espesor de la pared hace que estos matraces sean ideales para aplicaciones de calefacción. La base plana significa que los matraces se pueden colocar sin un anillo de soporte. Los matraces con un diámetro de cuello de 65 mm o más tienen un borde reforzado.

⭐ Cuidados del matraz de fondo plano

  1. Recomendamos que toda la cristalería se lave antes de usarla por primera vez.
  2. Antes de usar cualquier pieza de vidrio, siempre tómese el tiempo para examinar cuidadosamente y asegurarse de que esté en buenas condiciones. No utilice ningún material de vidrio que esté rayado, astillado, agrietado o grabado. Defectos como estos pueden debilitar seriamente la resistencia mecánica del vidrio y hacer que se rompa con el uso.
  3. Nunca use una fuerza excesiva para colocar los tapones de goma en el cuello de una pieza de vidrio. Siempre asegúrese de seleccionar el tamaño correcto de tapón.
  4. Llevar o levantar frascos de vidrio, vasos o botellas grandes, etc. por el cuello o la llanta puede ser muy peligroso. Siempre proporcione soporte desde la base y los lados.
  5. Al agitar las soluciones en recipientes de vidrio, evite usar barras de agitación con extremos afilados que puedan rayar la cristalería y debilitarla.
  6. Siempre caliente la cristalería suavemente y gradualmente para evitar cambios bruscos de temperatura que pueden hacer que el vidrio se rompa debido a un choque térmico. Del mismo modo, permita que la cristalería caliente se enfríe gradualmente y en un lugar alejado de corrientes frías.
  7. Si está utilizando una placa calefactora, asegúrese de que la placa superior sea más grande que la base del recipiente a calentar. Si la base del recipiente sobresale de la parte superior de la placa de cocción, se pueden producir puntos de conexión que causan que la base del recipiente se rompa. Además, nunca ponga cristalería fría en una placa de cocción precalentada. Siempre caliente la cristalería a temperatura ambiente.
  8. Si está utilizando un quemador Bunsen, emplee una llama suave y use una gasa de alambre con un centro de cerámica para difundir la llama. Nunca aplique calor localizado directo a una pieza de vidrio.

📌 Consejos para reducir el peligro al usar matraces de cristal

       1. Inspeccione la cristalería en busca de defectos como grietas, rasguños, marcas profundas y marcas de grabado antes de usar el aparato de vacío

      2. Asegúrese de que los recipientes estén diseñados específicamente para trabajos de vacío. Considere usar matraces más pequeños (menos de 1 L), ya que es menos probable que exploten. Los matraces de pared delgada o de fondo redondo de más de 1 L nunca deben ser evacuados.

     3. Montar el aparato de vacío para evitar tensiones. Los aparatos pesados deben apoyarse desde abajo y también por el cuello.

     4. Pegue el aparato de vacío de vidrio para minimizar los proyectiles debido a la implosión. Use un patrón entrecruzado de cinta de filamento y / o construya un recinto alrededor del matraz.

     5. Use una protección adecuada cuando realice operaciones de presión y vacío, como una barrera de plexiglas.

     6. Conocer la química del contenido del matraz.

     7. No sacuda, golpee ni deje caer un matraz que esté bajo presión de vacío. Además, trate de evitar exponer el matraz a vibraciones innecesarias del equipo en el mismo banco, música fuerte, etc. El matraz debe anclarse en su lugar con un soporte de anillo y una abrazadera.

     8. Utilice vacío de baja intensidad.

     9. Antes de realizar cualquier acción con el matraz (quitar el embudo / tapón, ajustar las mangueras), asegúrese de liberar el vacío al desconectar la manguera en el extremo de la bomba de vacío (a diferencia del extremo del matraz).

    10. Use protección para los ojos y la cara cuando maneje aparatos de vacío o presión.

🔍 Matraz aforado

Posee un cuello alargado y estrecho, con un aforo que marca dónde se debe efectuar el enrase, el cual nos indica un volumen con gran exactitud y precisión.

MATRAZ VOLUMÉTRICO DE LABORATORIO: Para Qué Sirve, Definición, Uso

Todo gran químico necesita un matraz volumétrico de laboratorio, un instrumento de medición y análisis muy importante

🌡 ¿Qué es un matraz volumétrico de laboratorio ?

 Un matraz volumétrico es un tipo de material de vidrio de laboratorio utilizado para preparar soluciones. Un matraz volumétrico es una bombilla de fondo plano con un cuello alargado calibrado para mantener un volumen establecido en una marca en el cuello. El matraz también se puede llamar matraz graduado o matraz de medición porque su marca especifica una medición precisa del volumen.

La marca en el cuello del matraz indica el volumen contenido. Cuando se vacía, parte del líquido puede permanecer en el contenedor, por lo que la marca (a diferencia de una pipeta) no indica la cantidad que se debe dispensar. Cabe señalar que los matraces volumétricos están calibrados para una temperatura particular (generalmente 20 ° C), que se indica en la etiqueta.

🌡 Descripción del Matraz volumétrico de laboratorio

  La mayoría de los matraces volumétricos son de vidrio transparente o plástico, aunque algunos matraces son de color ámbar para la preparación de soluciones sensibles a la luz. La boca del matraz puede tener una junta para acomodar un tapón o un tapón de rosca. una temperatura particular (generalmente 20 ° C), que se indica en la etiqueta.

  La mayoría de los matraces volumétricos son de vidrio transparente o plástico, aunque algunos matraces son de color ámbar para la preparación de soluciones sensibles a la luz. La boca del matraz puede tener una junta para acomodar un tapón o un tapón de rosca.

🔹 Estándares volumétricos del matraz

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  ¡Todos los matraces volumétricos no son creados iguales! Hay matraces de mayor y menor precisión. Un matraz volumétrico hecho para cumplir con un alto estándar es un matraz de Clase A o Clase 1. Su tolerancia, temperatura, precisión y volumen se indicarán en la cristalería. Un matraz de Clase B no cumple con un estándar tan alto y puede no incluir toda esta información. Los matraces de clase A se utilizan para el trabajo de química analítica, mientras que los matraces de clase B son adecuados para la mayoría del trabajo educativo y cualitativo.

🍀 Capacidades de los Matraces volumétricos de laboratorio

Frascos Volumétricos DURAN®

  Los matraces volumétricos DURAN® se utilizan para la medición precisa de cantidades específicas de líquidos. Son ayudas de análisis volumétrico en el trabajo de laboratorio cuantitativo.

  Los matraces volumétricos están disponibles en dos clases diferentes de precisión: clase “A” y clase “B”. Las dos clases difieren en la precisión de la medición, siendo la clase A la máxima precisión y la clase B es aproximadamente la mitad de la clase “A”.

  Los matraces volumétricos con clase de precisión “A” tienen una impresión azul para productos de vidrio transparente y una impresión en blanco para las versiones ámbar. Los matraces volumétricos de clase “A” se calibran individualmente, pero están disponibles con dos tipos diferentes de certificados, un tipo se entrega con un certificado del lote de producción (también disponible en línea) y el otro tipo con certificados individuales.

  Los productos de la clase de precisión “B” tienen una impresión en blanco. Para estos productos solo está disponible una especificación de vidrio general.

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Matraz volumétrico de clase A de la marca PYREX

  1. Capacidad de 5ml a 10ml
  2. Línea de graduación permanente
  3. Cuerpos soplados a maquina
  4. Los cuellos de tubos pesados ​​y con cuentas son útiles para tapones de polietileno
  5. El tapón está hecho con un fondo cerrado y es de polietileno lineal de alta densidad para ajustarse a las dimensiones del tapón cónico estándar.

⭐ Calibración de matraces volumétricos:

  1. Antes de la calibración, limpie y seque el matraz a calibrar.
  2. Pese el frasco vacío y registre el peso exacto del frasco.
  3. Tome el agua destilada a temperatura ambiente y asegúrese de que el agua alcance la temperatura de equilibrio con la temperatura ambiente manteniéndola a temperatura ambiente durante media hora.
  4. Llene el matraz con agua destilada hasta la marca de calibración, teniendo cuidado de que no queden gotas de agua en el cuello del matraz o por encima de la marca de calibración.
  5. Tenga en cuenta la temperatura del agua destilada utilizada y la temperatura ambiente.
  6. Pese el matraz lleno y registre el peso, reste el peso vacío del matraz volumétrico y registre el peso.
  7. Convierta el peso del agua a temperatura ambiente en volumen de agua a 27 ° C como se indica a continuación:

Vt = W x Ft

Donde, Vt = Volumen de agua a la temperatura observada t ° C

W = Wt de agua a la temperatura observada t ° C

Ft = Factor (El valor del cual se puede encontrar en la siguiente tabla)

 t ° C (Agua) Pie t ° C (Agua) Pie
            20 1.0028 28 1.0048
            21 1.0030 29 1.0051
            22 1.0033 30 1.0054
            23 1.0035 31 1.0057
            24 1.0038 32 1.0060
            25 1.0040 33 1.0064
            26 1.0043 34 1.0067
            27 1.0045 35 1.0070

Calcule por ejemplo el volumen de agua a 27 ° C a partir de la siguiente ecuación:

V27 = Vt (1 + 0.0001 (27 – t ° C de aire)) Donde, 0.0001 = coeficiente de expansión térmica del vidrio de borosilicato.

En caso de una pequeña diferencia de temperatura, V27 = Vt

      TOLERANCIAS EN LA CAPACIDAD DE LAS FASES VOLUMÉTRICAS

Capacidad del matraz (ml) 5 10 25 50 100 200 250 500 1000
Tolerancia de clase A +/- (ml) 0.02 0.02 0.03 0.04 0.06 0.1 0.1 0.15 0.2

📌 Usos del matraz volumétrico

El matraz volumétrico se utiliza para medir volúmenes precisos de materiales líquidos para experimentos de laboratorio. Se prefieren cuando están disponibles porque son más precisos que los cilindros graduados y los vasos de precipitados, que son otros equipos que se utilizan para medir líquidos.

🔍 Cómo reconocer un matraz volumétrico

  Un matraz volumétrico se caracteriza por un bulbo y un cuello largo. La mayoría de los matraces volumétricos tienen fondos aplanados para que puedan colocarse en una mesa de laboratorio u otra superficie, aunque algunos matraces volumétricos tienen fondos redondeados y deben manejarse con equipo de protección especial.

🌡 Cómo usar un matraz volumétrico

  1. Para preparar una solución en un matraz volumétrico, siga estos pasos:
  2. Medir y agregar el soluto para la solución.
  3. Agregue suficiente solvente para disolver el soluto.
  4. Continúe agregando solvente hasta que se acerque a la línea marcada en el matraz volumétrico.
  5. Use una pipeta o gotero para llenar el matraz volumétrico, usando el menisco de la solución y la línea en el matraz para determinar su punto final.
  6. Selle el matraz volumétrico e inviértalo para mezclar bien la solución.

🔹 Matraz aforado

  También es conocido como fiola, es un envase de cristal que es empleado en los laboratorios para generar reacciones, preparar disoluciones y medir el volumen de líquidos.

  La parte inferior del instrumento tiene forma redondeada, muy parecido a una pera con una base plana, sin embargo, algunos no tienen esta base. Desde allí erige un cuello largo y estrecho.

    Existen de dos tipos. El primer tipo se emplea para preparar soluciones valoradas, es decir, aquellas en las que existen medidas precisas de soluto y de solvente necesarias para producir la mezcla correcta. Las mediciones arrojadas por este tipo de instrumento son muy precisas.

  El segundo tipo se emplea para preparar otras soluciones que no sean valoradas. En este caso, las mediciones obtenidas son estimadas y no precisas.

🍀 Diferencia entre un matraz aforado y un matraz volumétrico de laboratorio

  La diferencia radica en que un material volumétrico graduado tiene un cierto error en las medidas, no son volúmenes completamente exactos. por ejemplo, en una probeta graduada o en una bureta graduada marcan el volumen junto a un + o – indicándonos que hay una pequeña variación.

Por lo contrario, el material aforado tiene el volumen indicado en el recipiente y es ese exactamente, siempre y cuando lo tengas bien igualado. En todos los casos el material volumétrico debe ser calibrado, para comparar el volumen indicado por el aforo o la graduación con un volumen conocido. Cuando el material volumétrico se compra calibrado debe recibirse con su certificado correspondiente.

No te vallas sin ver mas sobre el matraz aforado y su uso en este video https://www.youtube.com/watch?v=emQt0cBcx4A

ESTERILIZACIÓN De Materiales De Laboratorio: Métodos, Preparación, Equipos, Desinfectantes

 Necesitas saber sobre la esterilización de materiales de laboratorio para trabajar en uno, hay muchos diferentes tipos de bacterias que no pueden distribuirse juntas y sin observación o sin la intención de ser observadas, por lo cual hay que llevar una correcta esterilización de todos los utensilios de trabajo.

🌡 Equipos de esterilización de materiales de laboratorio

  Un ambiente estéril es una necesidad en la mayoría de los laboratorios, en particular en microbiología y laboratorios médicos.

  Los autoclaves, los sistemas de limpieza in situ (CIP) y de esterilización in situ (SIP), los esterilizadores y hornos de calor seco, los esterilizadores de vapor, los esterilizadores de medios y las cámaras UV trabajan para esterilizar el equipo y los suministros.

Equipos adecuados para la esterilización de materiales de laboratorio

  Los autoclaves esterilizan el equipo al someterlo a vapor presurizado durante un tiempo establecido, tal vez 20 minutos a 121 ° C, 15 psig. Las características que se deben buscar incluyen operación automática, puerta de fácil cierre y ciclos de pre-vacío para eliminar el aire de la cámara. Los esterilizadores y hornos de calor seco, que utilizan aire caliente para la esterilización, son particularmente útiles para desinfectar ciertos polvos y aceites.

🌡 Métodos de esterilización de materiales de laboratorio

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  La esterilización de los materiales usados en el laboratorio es un asunto crucial para todos los involucrados, clínicas y hospitales. A menos que el equipo utilizado se esterilice de vez en cuando, los establecimientos de salud no podrán permanecer en funcionamiento. Contrariamente a la creencia popular, hay muchos métodos diferentes para esterilizar equipos médicos. A continuación, se muestra una descripción básica de las diferentes técnicas utilizadas para esterilizar el equipo médico en muchos laboratorios, como los laboratorios de Gibraltar.

Esterilización mediante autoclave

  Un autoclave es una máquina de tamaño variable. Utiliza alto calor y presión y vapor para esterilizar equipos médicos. El tiempo necesario para la esterilización depende de la temperatura alcanzada por el autoclave y de la configuración de los materiales a esterilizar. El factor crítico es que el material debe tener un camino sin obstrucciones al vapor.

Esterilización de materiales de laboratorio a través del vapor

  Este tipo de esterilización es bastante común en las instalaciones de salud y es utilizado por los fabricantes de instrumentos ortopédicos y bandejas para validar sus instrucciones de uso. El equipo se coloca en la cámara principal y el vapor se dirige hacia el equipo médico. El alto calor y el vapor destruyen muchos organismos y garantizan que el instrumento se deje limpio y esterilizado.

Esterilización vía flash

  Esta técnica es similar al uso de vapor para la esterilización, pero tiene una diferencia de principio. La esterilización instantánea de un objeto es significativamente más rápida que la esterilización mediante vapor o muchos otros métodos.

Esterilización por calor seco

  La esterilización de equipos médicos a través de calor seco es un método eficaz para esterilizar equipos médicos. El calor seco se dirige hacia el equipo médico y cualquier microorganismo se destruye. Esto se debe a que el alto calor coagula las proteínas de la sangre y asegura que los microorganismos se destruyan.

Esterilización por calor húmedo

  Esta fue una de las primeras técnicas de esterilización. El aire caliente (con vapor de agua) se dirige hacia instrumentos médicos, desnaturalizando muchos microorganismos en el proceso. Esto asegura que cualquier bacteria o microbio que crece en el instrumento se destruya.

Esterilización por Radiación

  La radiación, especialmente la radiación gamma, se usa para esterilizar el equipo médico. La radiación gamma garantiza la destrucción de muchos tipos diferentes de microbios. Curiosamente, la radiación siempre se usa para esterilizar escalpelos y muchos otros instrumentos médicos metálicos.

  Como es evidente, hay muchos métodos de esterilización de equipos médicos. Aunque no todas las técnicas son empleadas por ningún hospital, muchas de las técnicas anteriores todavía se utilizan para esterilizar equipos médicos. En conclusión, los pacientes pueden estar seguros de que el equipo utilizado para mantener su salud está limpio, de acuerdo con el estándar y perfecto para usar en su cuerpo.

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🔹 Esterilización de materiales de laboratorios (Resultados)

  La esterilización también se puede usar para eliminar agentes biológicos casi vivos, como virus y priones, que muchos científicos no están convencidos de que estén “vivos”. La falta de eliminación de virus y priones de los instrumentos y superficies puede presentar graves ramificaciones para la seguridad del paciente y del personal. por eso es importante seleccionar la técnica de esterilización más apropiada.

🍀 Esterilización versus desinfección

  La esterilización se distingue de la desinfección porque mata, desactiva o elimina todas las formas de vida o agentes biológicos. La desinfección se refiere específicamente a la eliminación de agentes biológicos nocivos. En términos prácticos, la esterilización puede ser necesaria en situaciones críticas para la salud, como hospitales, mientras que la desinfección es un proceso que se utiliza en su cocina o baño.

Formas de esterilización física

  Se pueden usar muchas técnicas para esterilizar superficies. Primero, el calor y la presión pueden eliminar sustancias lábiles de los instrumentos y equipos. Los compuestos biológicos, como algunas proteínas y virus, presentan desafíos durante la esterilización. Los priones, por ejemplo, han demostrado resistir la desnaturalización por calor y presión, así como muchos químicos y enzimas. Se recomienda la modificación covalente de estos compuestos para su eliminación.

  Luego, la radiación ionizante (como los rayos X) también es un esterilizador eficiente, que actúa para liberar electrones de las moléculas. Dado que muchos agentes transmisibles requieren ADN y ARN para su propagación, cortar la estructura del ácido nucleico puede ser un medio útil para reducir su transmisión. Si bien esta técnica ha demostrado ser efectiva para una desinfección segura, se debe prestar mucha atención a la eliminación posterior de estos compuestos, ya que las esporas de bacterias y hongos resisten la mayoría de las técnicas de irradiación.

📌 Esterilizadores por químicos comunes

  El óxido de etileno (EtO) se usa comúnmente para esterilizar objetos que son sensibles a temperaturas superiores a 140 ° F / 60 ° C y / o radiación. Estos incluyen componentes de plástico o suministros, óptica y electrónica. Las altas temperaturas pueden dañar fácilmente los plásticos y la óptica y hacer que el dispositivo no sea adecuado para su aplicación original. Por lo tanto, el EtO se usa comúnmente para esterilizar equipos médicos duraderos y catéteres y endoscopios de un solo uso pre envasados. El químico tiene un efecto disruptivo sobre el ADN, lo que hace que los microorganismos no puedan reproducirse. Si bien este procedimiento de esterilización produce buenos resultados, debe tenerse en cuenta que el (EtO) es un carcinógeno conocido y presenta un grave riesgo para el personal si no se controla cuidadosamente.

  Si bien muchos de estos métodos individuales son capaces de esterilizar efectivamente las superficies, comúnmente se usan en combinación para desarrollar un protocolo de esterilización robusto. Si bien la esterilización en sí misma no requiere una validación posterior para su uso en un entorno de fabricación, se recomienda encarecidamente que estos procesos se supervisen y cuantifiquen de cerca siempre que sea posible para garantizar resultados seguros y confiables que aumenten la seguridad del paciente y del personal.

🔍 Métodos para esterilizar cristalería

  1. En la mayoría de los grandes laboratorios, la cristalería se lava en tres pasos, como:
  2. Lavadora automática.
  3. Seguido de un ciclo de enjuague especial.
  4. Luego manténgala en el secador automático (por debajo de 100 ° C).
  5. Enjuague la cristalería con un disolvente orgánico miscible con agua y luego expóngala a una corriente de aire o nitrógeno.
  6. El uso más común es el de los productos químicos.

🌡 Proctólogo para esterilizar cristalería

  1. Descontamine la cristalería preparando previamente en lejía al 5% o hirviéndola.
  2. Se puede utilizar cualquier tipo de detergente o polvo de limpieza.
  3. Autoclave puede ser el método alternativo.
  4. Si la cristalería se empapa en agua después del uso que es ideal.
  5. Si lo sobra, manténgala en la solución detergente durante la noche.
  6. Ahora enjuague con agua del grifo, seguido de un enjuague con agua des ionizada.

🔬 Los desinfectantes usados para esterilizar más comunes son:

  1. Productos químicos liberadores de cloro donde el cloro es activo contra las bacterias gram positivas y negativas, incluidos los virus VIH y HB.
  2. Algunos ejemplos son el hipoclorito (solución de lejía), que se usa en el hogar y en la lavandería.
  3. Los aldehídos son formaldehído y glutarildehído.
  4. Alcohol usado en etanol o propanol 70 a 80% V / V.
  5. Los fenoles como el hycolin, Clearsol, Stericol y Printol.
  6. Prueba para comprobar la limpieza de la cristalería.
  7. Verifique el agua de enjuague final que debe moverse con una acción de laminado, dejando una película delgada sobre la superficie.
  8. Si la película se rompe en gotitas, o la superficie está húmeda de manera desigual, entonces indica que la cristalería no está limpia.

PLACAS DE PETRI DE LABORATORIO: Para Qué Sirve, Uso, Precio

Las placas de petri de laboratorio son complementos indispensables para llevar a cabo el trabajo de un bioanalista, o cualquier profesional en carreras a fines.

🔍 ¿Qué son placas de Petri?

  Es un plato cilíndrico poco profundo con tapa de vidrio que se usa típicamente para cultivar microorganismos (placas de agar). Hay placas de Petri de vidrio y de plástico, y ambas pueden ser esterilizadas (usando un autoclave) y reutilizadas. Antes de su uso para fines de cultivo, es importante asegurarse de que la placa de Petri no sólo esté limpia, sino también estéril. Esto ayuda a prevenir la contaminación del nuevo cultivo.

🌡 ¿Para qué sirven las placas de Petri de laboratorio?

  La placa de petri fue hecha para la separación. Fue desarrollado para cultivar microorganismos mientras se los separa de los contaminantes del aire. Como parte de su capacidad para hacer separaciones entre el mundo exterior contaminado y el mundo interior no contaminado, el plato también ayudó a separar a los individuos de la enfermedad. En estos días, es cada vez más difícil para las placas de Petri mantener estas separaciones.

🔬 Historia detrás de la fabricación de las placas de Petri

  Julius Richard Petri (1852-1921) trabajó como asistente de Robert Koch en Berlín en la oficina de Imperial Health. Koch, quien identificó los microorganismos responsables del cólera, el ántrax y la tuberculosis, fue, junto con Pasteur y Lister, uno de los “padres de la microbiología” de finales del siglo XIX, alias “padres de la teoría de los gérmenes”. Cuando Petri llegó al laboratorio de Koch 1877, los asistentes de laboratorio utilizaban placas de vidrio plano para hacer crecer colonias de bacterias. Vertían las bacterias junto con un medio de cultivo de gelatina sobre el vidrio, ponían en capas los platos, los cubrían con una gran jarra de vidrio y luego calentaban todo para cultivar la colonia.

Este fue un proceso engorroso y dificulta el conteo de bacterias bajo el microscopio, una herramienta esencial para hacer visibles los microorganismos. Petri mejoró la técnica: desarrolló un plato doble más pequeño, redondo y de fondo plano con lados. Un plato era un poco más grande, sirviendo como tapa y escudo. Como explicó Petri, en su breve artículo de 1887 , “En una pequeña modificación de la técnica de recubrimiento de Koch”, “en estas condiciones, la contaminación por gérmenes en el aire rara vez ocurre . ” La clave de esta modificación fue cómo Petri hizo que su plato se ajustara al microscopio.

Microorganismos

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  La placa de Petri ayudó a los científicos de laboratorio a ver y contar algo que era nuevo: los microorganismos. Solo unas pocas décadas antes, los científicos habían comenzado a identificar las enfermedades como entidades independientes, separadas de los entornos idiosincrásicos y los cuerpos humanos. La placa de Petri ayudó a desarrollar la microbiología y la relativamente nueva “teoría de los gérmenes” de la enfermedad.

  Las placas de petri también se llaman platos de cultivo celular. Este uso de la “cultura” se remonta al cultivo de la agricultura y la ganadería de la 16a.Siglo, que se extendió al proceso de desarrollo humano y eventualmente lo vincularon filósofos, como Johann Gottfried Herder, a personas que se marinan en condiciones particulares de lugar, idioma, espíritu y tradición. Esta cultura no se oponía a la naturaleza, como sucedió más tarde, sino que formaba parte de los procesos materiales del desarrollo de un organismo.

La capacidad de la placa de Petri para cultivar bacterias y evitar la contaminación era, por lo tanto, antigua y nueva: viejo porque el cultivo de bacterias desarrolló organismos conformados por las condiciones enmarañadas del medio de cultivo que las rodeaba; nuevo porque la promesa de los límites demarcados de un experimento controlado con una placa de Petri propuso un mundo donde la separación entre los organismos y el medio ambiente era posible.

🔹 Descripción de las placas de Petri de laboratorio

  Las placas de Petri se pueden rellenar con medios semi sólidos dentro de la superficie de las cuales se pueden cultivar bacterias (u otros microorganismos). Esto permite al microbiólogo observar el tamaño, la forma, el color y otros caracteres de las colonias que se forman. Estas observaciones ayudan a identificar las especies y proporcionan otra información sobre las bacterias. Una colonia es un agregado de crecimiento bacteriano y puede contener hasta 10 ^ 10 células y puede haber comenzado con una célula.

 Son cilindros de vidrio o de plástico semi transparente que aíslan las bacterias del aire que puede contaminarlas.

  Con un tamaño de muestra específico, se espera el recuento regulado dentro de una limitación específica en relación con el área de superficie en función del volumen especificado. Una placa de Petri específica para tipos de bacterias específicas.

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🍀 Tamaños de las placas de Petri de laboratorio

Placa de Petri, 50 x 9 mm, sin almohadilla

Se utiliza con un filtro de 47 mm de diámetro, con o sin almohadilla.

Menos de 1% de pérdida de humedad a 35 ° C (95 ° F) durante un período de 24 horas

El diseño único de la pata deja espacio entre los platos para una distribución uniforme de la temperatura durante la incubación

Poli estireno ópticamente transparente, radiación gamma esterilizada

EasYDish disco de Petri

  Los platos Thermo Scientific ™ Nunc ™ EasYDish ™ son la próxima generación de platos de cultivo celular que mejoran la manipulación, el apilamiento y el transporte de cultivos celulares en su laboratorio. El anillo de agarre biselado es fácil de sostener y se mantiene seguro en su mano enguantada. Los platos reciben el tratamiento estándar de superficie Nunclon Delta para maximizar la adhesión para la mayoría de los tipos de células. Disponible en cuatro tamaños: 35 mm, 60 mm, 100 mm y 150 mm.

  1. Anillo de agarre biselado
  2. Asegura que la tapa permanezca en posición cuando se manipula el plato
  3. Hace que sea más fácil de agarrar y manejar con una mano enguantada
  4. Diseño de muesca propietario
  5. Maximiza la ventilación manteniendo la esterilidad.
  6. Restringe el movimiento de la tapa asegurando un ajuste seguro de la tapa al plato
  7. Aumenta la fuerza física del plato.
  8. Borde exterior elevado en la tapa del plato
  9. Permite el apilamiento estable durante el transporte de cultivos celulares.
  10. Marcas de orientación en el fondo del plato
  11. Simplifica la localización de células al microscopio.
  12. Área de escritura
  13. Mejora la trazabilidad de los cultivos celulares.
  14. Embalaje resellable
  15. Promueve la limpieza de los paquetes abiertos.

📌 Placas de Petri para laboratorio hechas de plástico

  1. Transparente y a prueba de golpes.
  2. Reusables
  3. 100 mm de diámetro x 15 mm de alto
  4. Apilable, para mayor comodidad.
  5. Los platos de polimetil-penteno ofrecen una resistencia química superior y resisten la adhesión de las células

🌡 ¿Dónde comprarlos?

Mercado libre ofrece:

  1. Placa De Petri Simple. Plástico. 90x15mm. Paquete De 20 Unid
  2. Placas Capsulas De Cultivo Petri De Vidrio 100×10 Eisco
  3. Placas De Petri Dobles Y Sencillas

Medical Expo Ofrece:

  1. Placas de poliestireno
  2. Placas de vidrio delgado
  3. Dobles y sencillas

Promeplas

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LABORATORIO DE MICROBIOLOGÍA: Qué Es, Norma, Importancia, Diseño

  Un laboratorio de microbiología es como el santuario de un especialista de salud, hay muchas cosas que necesitas saber sobre un laboratorio de este tipo que puede parecerte impresionante.

🔬 ¿Qué es un laboratorio de microbiología?

  El objetivo principal de este laboratorio es ayudar en el diagnóstico de enfermedades infecciosas. Esto comienza cuando el paciente ingresa al sistema de atención médica y presenta ciertos signos y síntomas compatibles con una enfermedad infecciosa. El médico del paciente luego ordena pruebas específicas para aclarar la presencia de una enfermedad infecciosa. Estas enfermedades pueden incluir aquellas causadas por bacterias (por ejemplo, estreptococos del grupo A que pueden causar estreptococos en la garganta); las causadas por virus (p. ej., influenza A que causa la gripe); las causadas por hongos (p. ej., Candida, que puede causar infecciones vaginales por levaduras); o las causadas por parásitos (p. ej., Giardia, que puede causar diarrea).

🌡 Reglas a tomar en cuenta en un laboratorio de microbiología

  La seguridad en un laboratorio de microbiología es importante en la prevención de infecciones, ya que el laboratorio de microbiología cultiva, manipula y utiliza microorganismos virulentos y / o potencialmente patógenos. Además de los microorganismos, hay algunos productos químicos utilizados en este laboratorio que son potencialmente dañinos. Muchos procedimientos involucran cristalería, llamas abiertas y objetos afilados que pueden causar traumas / daños si se usan incorrectamente.

  Los procedimientos de laboratorio deben leerse antes de asistir a esa sesión de laboratorio.

  1. Fumar, comer y beber en el laboratorio están absolutamente prohibidos en el laboratorio en cualquier momento.
  2. Solo se deben usar zapatos cerrados en el laboratorio. No se permiten las sandalias o los zapatos de punta abierta o de lona   debido al peligro constante de cortes e infecciones por vidrios rotos que se encuentran en los pisos del laboratorio y la posibilidad de derrames químicos.
  3. Mantenga las manos y otros objetos lejos de su cara, nariz, ojos, oídos y boca. La aplicación de cosméticos en el laboratorio está prohibida en el laboratorio.
  4. Las áreas / superficies de trabajo deben desinfectarse antes y después del uso.
  5. Las batas de laboratorio se deben usar y abotonar en el laboratorio. Las batas de laboratorio no deben usarse fuera del laboratorio.
  6. Se deben usar gafas protectoras al realizar cualquier ejercicio o procedimiento en el laboratorio.
  7. El cabello largo debe asegurarse detrás de su cabeza para minimizar el riesgo de incendio o la contaminación de los experimentos.
  8. Las manos deben lavarse antes de salir del laboratorio.
  9. Al ingresar al laboratorio, deben colocarse abrigos, libros y otros accesorios, por ejemplo, carteras, maletines, etc. en lugares específicos y nunca en mesas de trabajo (excepto el manual de laboratorio).
  10. Nunca pipetee nada con la boca (incluso el agua). Utilice siempre dispositivos de pipeteo.

No debes olvidar lo más importante en un laboratorio de microbiología

  1. Etiquete todos los materiales con su nombre, fecha y cualquier otra información aplicable (por ejemplo, medios de comunicación, organismo, etc.).
  2. Deseche los desechos en sus recipientes apropiados (consulte la sección Eliminación de desechos con riesgo biológico a continuación).
  3. Al manipular productos químicos, anote el código de peligro en la botella y tome las precauciones apropiadas indicadas.
  4. No vierta productos químicos en el fregadero.
  5. Devuelva todos los productos químicos, reactivos, cultivos y cristalería a sus lugares apropiados.
  6. No vierta fluidos biológicos peligrosos en el fregadero.
  7. La cristalería debe lavarse con agua y jabón, luego enjuagarse con agua destilada.
  8. Bucles de transferencia de llama, cables o agujas antes e inmediatamente después del uso para transferir material biológico.
  9. No camine por el laboratorio con bucles de transferencia, cables, agujas o pipetas que contengan material infeccioso.
  10. Tenga cuidado con los quemadores Bunsen. Las llamas no siempre se pueden ver.
  11. Apague los incineradores antes de salir del laboratorio.
  12. Reporte cualquier equipo roto, inmediatamente, reporte cualquier vidrio roto, especialmente aquellos que contengan materiales infecciosos.
  13. Si se lesiona en el laboratorio, comuníquese de inmediato con el instructor de su curso o TA.
  14. Los derrames, cortes y otros accidentes deben informarse al instructor o a la AT en caso de que sea necesario un tratamiento adicional.
  15. Familiarícese con el equipo de seguridad en el laboratorio y las rutas de escape de emergencia.
  16. Siempre limpie y limpie las lentes de su microscopio antes de guardarlo. Utilice el papel de seda adecuado y la solución de limpieza para este propósito.
  17. Use las precauciones universales apropiadas con todos los fluidos biológicos.

🔹 Bioseguridad de un laboratorio de microbiología

Equipo de seguridad (barreras primarias del laboratorio de microbiología)

  El equipo de seguridad incluye gabinetes de seguridad biológica y una variedad de contenedores cerrados. El gabinete de seguridad biológica es el dispositivo principal utilizado para proporcionar la contención de los aerosoles infecciosos generados por muchos procedimientos microbiológico.

Diseño de instalaciones (barreras secundarias)

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  La administración del laboratorio es responsable de proporcionar instalaciones acordes con la función del laboratorio. A continuación, se describen tres diseños de instalaciones, en orden ascendente por nivel de contención.

1. El laboratorio básico: este laboratorio proporciona un espacio general en el que se trabaja con agentes viables que no están asociados con enfermedades en adultos sanos.

2. El laboratorio de contención: este laboratorio tiene características de ingeniería especiales que hacen posible que los trabajadores del laboratorio manipulen materiales peligrosos sin poner en peligro a ellos mismos, a la comunidad o al medio ambiente.

3. El laboratorio de máxima contención: este laboratorio tiene características especiales de ingeniería y contención que permiten realizar actividades que involucran agentes infecciosos que son extremadamente peligrosos para el trabajador del laboratorio o que pueden causar que una enfermedad epidémica grave se realice de manera segura.

Niveles

  • Nivel aplicable a las instalaciones clínicas, de diagnóstico, de enseñanza y otras en las que se trabaja con el amplio espectro de agentes indígenas de riesgo moderado presentes en la comunidad y asociados con enfermedades humanas de severidad variable Con buenas técnicas microbiológicas, estos agentes pueden usarse de manera segura en actividades realizadas en el banco abierto, siempre que el potencial para producir aerosoles sea bajo.
  • Nivel aplicable a las instalaciones clínicas, de diagnóstico, de enseñanza, de investigación o de producción en las que se trabaja con agentes exóticos o indígenas donde el potencial de infección por aerosoles es real y la enfermedad Puede tener consecuencias graves o letales.

🍀 Prácticas de un laboratorio de microbiología

  Para que la microbiología pueda ayudar a diagnosticar la enfermedad infecciosa correcta, se producen varios pasos. El primer paso es la recolección de las muestras apropiadas para diagnosticar la enfermedad del paciente. Por ejemplo, si existe la posibilidad de una infección de la vejiga, el médico puede ordenar un análisis de orina que analice los tipos de células presentes en la orina, como los glóbulos rojos y blancos, así como una muestra de orina para un cultivo que crezca. Organismo que está causando la infección.

  Las muestras se pueden recolectar de varias fuentes diferentes, incluidas muestras de sangre, orina y frotis de la garganta. A veces se requiere una técnica más invasiva que use una aguja u otro instrumento especial para recolectar la muestra. ¡Este primer paso en el diagnóstico microbiológico de enfermedades infecciosas es muy importante! Un espécimen de buena calidad significa la mejor oportunidad de diagnosticar la enfermedad infecciosa.

⭐ Importancia de los laboratorios de microbiología

  La vacunación y la terapia con antibióticos han beneficiado a millones de personas. Sin embargo, los recursos limitados ahora amenazan nuestra capacidad para manejar adecuadamente las amenazas de enfermedades infecciosas al ubicar los servicios de microbiología clínica y la experiencia alejados del paciente y su médico de enfermedades infecciosas. Seguir en esa dirección amenaza la calidad de los resultados de laboratorio, la puntualidad del diagnóstico, la idoneidad del tratamiento, la comunicación efectiva, la reducción de las infecciones asociadas a la atención de salud, los avances en la práctica de las enfermedades infecciosas y la capacitación de futuros profesionales.

  Los laboratorios de microbiología son las primeras líneas de defensa para la detección de nuevas resistencias a los antibióticos, los brotes de infecciones transmitidas por los alimentos y un posible evento de bioterrorismo.

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📌 Equipos usados en un laboratorio de microbiología

  El equipo de microbiología es una categoría grande que abarca todo tipo de artículos utilizados en los laboratorios de microbiología. La microbiología es el estudio de formas de vida microscópicas y es utilizada por científicos que estudian virus, plantas, hongos, protozoos, células y parásitos. Muchas industrias utilizan la microbiología para fines de control de calidad, para demostrar que no hay contaminantes vivos o para determinar qué tipo de contaminantes hay para que sepan cómo solucionar el problema.

  Los equipos de microbiología incluyen microscopios; diapositivas Tubos de ensayo; platos de Petri; medios de crecimiento, tanto sólidos como líquidos; bucles de inoculación; pipetas y puntas; incubadoras Autoclaves, y campanas de flujo laminar. Algunos equipos, como los microscopios y las cubiertas, son elementos permanentes, mientras que otros, como las puntas de las pipetas, son desechables. Tener una autoclave es una forma de poder reutilizar equipos, como diapositivas y placas de Petri, que de lo contrario se podrían haber tirado.

🌡 Estructura de un laboratorio de microbiología

El microbiólogo médico es responsable de la política general del laboratorio y responde al jefe del departamento de medicina de laboratorio. En laboratorios sin microbiólogos médicos, un patólogo general o un doctorado. El microbiólogo (con suerte con capacitación especial en microbiología clínica) puede supervisar el laboratorio.

  Los tecnólogos, estratificados según la experiencia y la capacitación, realizan el procesamiento diario de los especímenes y un gerente de laboratorio los supervisa. Los tecnólogos en microbiología, en general, son un excelente recurso para los médicos y manejan muchas consultas de rutina. Cualquier problema que sientan que no pueden manejar se refiere al microbiólogo médico.

Etiquetado de especímenes

  ¡Un espécimen que llega al laboratorio sin etiquetar no se procesa! Es imperativo que se preste atención a esta parte crucial de la adquisición de la muestra. Las muestras deben ser etiquetadas una vez obtenidas. El etiquetado previo de los recipientes de muestras puede tener consecuencias desastrosas. La persona que obtiene el espécimen debe etiquetar el espécimen o al menos asegurarse de que se haya realizado correctamente. El procedimiento no está completo hasta que la muestra se encuentre en un recipiente debidamente etiquetado. La etiqueta debe incluir:

  1. Nombre completo
  2. Número de cuidado de salud
  3. Fecha de nacimiento
  4. Se tomó la muestra de fecha y hora. (Muy a menudo el tiempo no está indicado)

🔬 Esterilización en los laboratorios de microbiología

  Las técnicas de esterilización efectivas son esenciales para trabajar con líneas celulares aisladas por razones obvias por las que no desea que crezcan los insectos del medio ambiente en su medio de cultivo, e igualmente, los cultivos deben esterilizarse antes de desecharlos.

Calor húmedo (Autoclave)

  El método de elección para la esterilización en la mayoría de los laboratorios, es la autoclave. Utilizando vapor a presión para calentar el material a esterilizar. Este es un método muy efectivo que mata todos los microbios, esporas y virus, aunque para algunos errores específicos, se requieren especialmente altas temperaturas o tiempos de incubación.

  La autoclave mata a los microbios por hidrólisis y coagulación de proteínas celulares, lo que se logra de manera eficiente mediante el calor intenso en presencia de agua.

  El calor intenso proviene del vapor. El vapor a presión tiene un alto calor latente; a 100degC retiene 7 veces más calor que el agua a la misma temperatura. Este calor se libera al entrar en contacto con la superficie más fría del material a esterilizar, lo que permite un suministro rápido de calor y una buena penetración de los materiales densos.

esterilización

Calor seco (flameado, horneando)

  El calentamiento en seco tiene una diferencia crucial con la autoclave. Lo has adivinado: no hay agua, por lo que la hidrólisis de proteínas no puede realizarse.

  En cambio, el calor seco tiende a matar los microbios por oxidación de los componentes celulares. Esto requiere más energía que la hidrólisis de proteínas, por lo que se requieren temperaturas más altas para una esterilización eficiente con calor seco.

  Por ejemplo, la esterilización se puede lograr normalmente en 15 minutos en autoclave a 121 ° C, mientras que el calentamiento en seco generalmente necesita una temperatura de 160 ° C para esterilizarse en un período de tiempo similar.

Filtración

  La filtración es una excelente manera de esterilizar rápidamente las soluciones sin calentamiento. Los filtros, por supuesto, funcionan al pasar la solución a través de un filtro con un diámetro de poro que es demasiado pequeño para que los microbios lo atraviesen.

  Los filtros pueden ser embudos de vidrio desmenuzado hechos de partículas de vidrio fundidas por calor o, más comúnmente en la actualidad, filtros de membrana hechos de ésteres de celulosa. Para la eliminación de bacterias, normalmente se utilizan filtros con un diámetro de poro promedio de 0.2um.

  Pero recuerde, los virus y los fagos pueden pasar a través de estos filtros, por lo que la filtración no es una buena opción si estos son un problema.

Disolventes

  El etanol se usa comúnmente como desinfectante, aunque como el isopropanol es un mejor disolvente para la grasa, probablemente sea una mejor opción.

  Ambos trabajan desnaturalizando proteínas a través de un proceso que requiere agua, por lo que deben diluirse al 60-90% en agua para que sean eficaces.

  Una vez más, es importante recordar que aunque el etanol y la API son buenos para matar las células microbianas, no tienen efecto sobre las esporas.

Radiación

  Los rayos UV, rayos X y rayos gamma son todos los tipos de radiación electromagnética que tienen efectos muy dañinos sobre el ADN, por lo que son excelentes herramientas para la esterilización.

  La principal diferencia entre ellos, en términos de su efectividad, es su penetración.

  Los rayos UV tienen una penetración limitada en el aire, por lo que la esterilización solo ocurre en un área bastante pequeña alrededor de la lámpara. Sin embargo, es relativamente seguro y es bastante útil para esterilizar áreas pequeñas, como las campanas de flujo laminar.

  Los rayos X y los rayos gamma son mucho más penetrantes, lo que los hace más peligrosos pero muy efectivos para la esterilización en frío a gran escala de artículos de plástico (por ejemplo, jeringas) durante la fabricación.

  Estos son algunos de los principales métodos de esterilización que se me ocurren. Si me he perdido alguno, no dude en hacérmelo saber en la sección de comentarios.

Función del Embudo De Separación: Qué Es, Como Se Usa, Características

  Podridas necesitar la función del embudo de separación, si eres estudiante de química o incluso cursas carreras afines, ten la seguridad de que lo vas a necesitar, es un instrumento maravilloso con funcionamiento muy práctico.  

🌡 ¿Qué es?

  Los embudos de separación, o embudos de separación, son un elemento común en los laboratorios de química. Estos embudos se utilizan para separar líquidos inmiscibles de sus solutos. El embudo suele ser de vidrio, en forma de pera, y generalmente incluye un tapón y una llave de paso.

  Los embudos de separación funcionan según el principio de que los líquidos inmiscibles se separarán unos de otros de forma natural junto con sus solutos, creando diferentes capas de solución-soluto. Por ejemplo, un soluto no polar se puede extraer de una solución mezclándolo con un solvente no polar en un embudo de separación. Después de la mezcla inicial, la solución inicial y el solvente no polar se separarán y el soluto estará en el nuevo solvente. Estas capas se pueden separar a perpetuidad al drenarlas del embudo de separación utilizando la llave de paso para controlar el flujo.

🔬 Uso del embudo

  El uso adecuado de un embudo de separación requiere tiempo y destreza. Primero, debe reconocer que el propósito es crear la máxima mezcla posible de las dos capas, luego permitir que se separen (de ahí el nombre). Una complicación es la creación de una acumulación de presión que puede provenir de la presión de vapor inherente del solvente orgánico (el éter y el diclorometano son particularmente desagradables en este aspecto) o de la evolución del gas en el caso de lavados con bicarbonato de sodio. Necesitas poder identificar qué capa es cuál (¡para que sepas cuál conservar!). Finalmente, desea evitar contaminar la capa deseada con grasa de llave de paso o con cualquiera de las otras capas. 

Añadir los dos líquidos.

  Normalmente, comenzarás con una mezcla de reacción orgánica en un disolvente orgánico. Cierre la llave de paso. Agregue el líquido orgánico a través de la abertura del tapón en la parte superior. Luego agregue la solución acuosa; si se prevé una reacción química (por ejemplo, la formación de CO 2 de la neutralización de un ácido con bicarbonato) asegúrese de agregar la solución acuosa lentamente.

Mezcla inicial

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  Si se produce un desprendimiento de gas, agite lentamente el contenido del embudo de separación hasta que la mayoría de la espuma cese. En este punto, debe realizar la maniobra más difícil: coloque el tapón en la abertura en la parte superior y levante el embudo de separación.       Sosténgalo con una mano alrededor de la parte inferior del matraz con el pulgar y el índice en la manija de la llave de paso, y con la otra mano agarrando el pennyhead del tapón (si tiene uno):

  En un movimiento, invierta el embudo de separación y abra la llave de paso a medida que se eleva por encima de la superficie del líquido. Debes escuchar un “zumbido” de escape de presión de gas.

Hay varios desafíos en este proceso:

  Si el tapón no está lo suficientemente apretado, el peso del líquido hará que se escape por la abertura del tapón. Sin embargo, si fuerza el tope demasiado apretado, se congelará.

  Si abre la llave de paso demasiado pronto, el líquido saldrá por esa abertura.

  Si todo el proceso no se realiza rápidamente, la acumulación de presión en el matraz forzará el tapón hacia afuera mientras se invierte el embudo.

El proceso de extracción

  En este punto, no ha mezclado las dos capas lo suficiente para obtener una buena extracción. Es necesario cerrar la llave de paso y agitar la mezcla vigorosamente. Esto creará más acumulación de presión, por lo tanto, deténgase y ventile periódicamente. Normalmente, tres ciclos de sacudidas y ventilación son suficientes para cada paso de extracción. 

Separación de las capas

Ahora estás listo para separar las capas. Coloque el embudo de separación de nuevo en el soporte del anillo. Las dos capas deben separarse por sí mismas; Si no, o si solo se separan parcialmente, vea Emulsiones a continuación. Quite el tapón y colóquelo sobre una toalla de papel limpia. Una vez que se haya eliminado la última parte de la emulsión, drene la capa inferior en un recipiente apropiado (los líquidos orgánicos se guardan en matraces Erlenmeyer; los líquidos acuosos se pueden almacenar en vasos de precipitados). 

🍀 Las emulsiones en el funcionamiento del embudo de separación

  A veces, las dos capas no se separan fácilmente debido a la formación de una emulsión. (Ya has visto esto antes; la leche es una suspensión de grasas y proteínas en el agua). A menudo, simplemente dejar la mezcla sola durante 5-10 minutos permitirá que se separe. Si esto falla, intente lo siguiente:

  Use una varilla de vidrio para agitar el lado del embudo. A menudo, solo necesita obtener un núcleo de una capa separada para iniciar el proceso. O bien, puede haber una película de emulsión que evite que los glóbulos grandes de solución se unan.

  Añadir pequeñas cantidades de cloruro de sodio saturado. El cambio en la fuerza iónica tiende a atraer agua a la solución salina. (Este es también el principio detrás del uso de NaCl saturado como lavado final: extraer la mayor cantidad posible de agua de la capa orgánica).

  Agregue pequeñas cantidades de solvente orgánico para diluir el producto orgánico y disminuir la tensión superficial.

📌 Capacidad del embudo de separación

  Hay diversos modelos de embudos de separación, depende de su modo de fabricación

Embudos de separación de vidrio boro silicato claro y ámbar

Tamaño               Según la capacidad

Solicitud              Laboratorio químico

 Capacidad Ml   30 – 2000 ml

 Material             Vidrio de boro silicato

Embudo de separación con Rotaflow Stopcock

Capacidad:  250 ml.

MIra más sobre materiales de laboratorio

🌡 Funcionamiento del embudo de separación

  1. Use un tubo ranura do para amortiguar el embudo de separación en la abrazadera de anillo.
  2. Cierre la llave de paso en el embudo de separación y coloque un matraz Erlenmeyer debajo de la instalación, en caso de que gotee.
  3. En el embudo de separación, vierta el líquido que se va a extraer con un embudo: esto evita que el líquido entre en la junta de vidrio esmerilado, lo que puede hacer que se pegue.
  4. Verter el solvente extractivo en el embudo.
  5. Sostenga el embudo de separación de modo que sus dedos cubran firmemente el tapón.
  6. Invierta el embudo y agítelo suavemente durante 10-20 segundos.
  7. Periódicamente “ventile” el embudo (abra la llave de paso mientras está invertido para liberar la presión). Nunca apunte la punta a alguien mientras ventea.
  8. Vuelva a colocar el embudo de separación en la abrazadera de anillo y deje que las capas se separen.
  9. Retire el tapón (de lo contrario no se drenará).
  10. Drene la mayor parte de la capa inferior en un matraz Erlenmeyer.
  11. Drene el resto de la capa inferior, deteniéndose cuando la interfaz esté dentro de la llave de paso.
  12. Etiquete el matraz (por ejemplo, “capa acuosa inferior”).
  13. Vierta la capa superior en otro matraz Erlenmeyer (y etiquétalo).
  14. No deseche ninguna de las capas hasta que esté seguro de haber logrado el objetivo de la extracción.

🔬 Características en el funcionamiento del embudo de separación

La mayoría de los modelos posean las siguientes características:

  Botella de cuerpo con tapón, matraz de destilación, condensador de doble bobina, botella de cultivo con tapón de rosca, desecador al vacío, matraz de yodo, cubilete con boquilla, graduado , embudo de separación , forma de globo , embudo de separación , forma de pera, sodio Phytate Mncl2, Silica Gel (azul), grueso, cloroformo, gel de sílice G para Tlc Bandeja de acero inoxidable con perforación.

Aquí puedes ver un video sobre el funcionamiento del embudo

Función Del Embudo Büchner: Para Que Sirve, Uso, Cuidados

  Para entender la función del embudo Büchner, debes tener en cuenta que es un instrumento de laboratorio utilizado para la filtración y que muy probablemente necesitarás uno.

🌡 ¿Cual es la función del embudo Büchner?

Tradicionalmente está hecho de porcelana, pero también hay disponibles embudos de vidrio y plástico. Sobre la parte con forma de embudo hay un cilindro con un disco de vidrio fritado / placa perforada que lo separa del embudo.

  La filtración simple, lenta y por gravedad requiere un pedazo de papel de filtro en un embudo. Hay maneras más rápidas de filtrar.

🔬 Funciones más detalladas del embudo Büchner

Es un dispositivo utilizado para la filtración asistida por presión.

  El vacío en el matraz debajo del filtro permite que la atmósfera presiones sobre la mezcla líquida/sólida para forzar el paso del líquido en el papel de filtro. El dispositivo generador de vacío que usted adquiera es un aspirador, un sencillo sistema tipo Bernoulli.

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  Fueron diseñados para funcionar con agua. Están adaptados para utilizar el aire. Cuando se conecta a la unidad del embudo Büchner, tiene aproximadamente 15 libras por pulgada empujando hacia abajo.

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🔹 Historia del embudo Büchner

  La filtración al vacío parece haberse introducido en la práctica de laboratorio a mediados del siglo XIX como una adaptación de su aplicación a la filtración industrial. En 1865, el químico suizo Jules Piccard recomendó un aparato que consistía en una botella de Woulfe de dos bocas, un embudo y un aspirador de agua o una bomba Geissler.

Las siguientes décadas vieron la introducción de modificaciones de esta configuración. El más notable de los cuales fue el diseño de embudo patentado de R. Hirsch, que más tarde fue modificado por Ernst Büchner. Tanto el embudo Hirsch como el embudo Büchner fueron fabricados por la firma alemana Max Kaehler y Martini de Berlín.

🔹 ¿Para qué se utiliza comúnmente?

  Se usa en laboratorios de química orgánica para ayudar a recolectar compuestos recristalizados. La succión permite que el compuesto recristalizado húmedo se seque de manera que quede el compuesto de cristal seco puro.

  Sin embargo, es necesario un secado adicional, mediante un horno u otros medios, para eliminar tanto líquido residual como sea posible.

  A menudo se utiliza en combinación con un matraz Büchner, anillo Büchner y sellos de sintetización. Un sellado hermético al vacío y la estabilidad del matraz y el filtro Büchner son esenciales durante el proceso de filtración.

  Se puede usar un anillo Büchner con embudos, frascos, crisoles de vidrio y crisoles Büchner de Büchner.

Pasos para llevar a cabo la función del embudo Büchner

  Para comenzar con la filtración es indispensable colocar en la base de este un tipo de papel de filtro.

  Una vez realizado este paso, lo siguiente es verter el líquido que se quiere filtrar.

  En consecuencia, las partículas quedaran atrapadas en el papel de filtro, mientras que el líquido circulara por el embudo y se almacenara en el matraz.

  Si el vacío es proporcionado por un dispositivo de flujo de agua, un desbordamiento del líquido podría provocar el derrame de un líquido peligroso en la corriente de aguas residuales, una posible violación de la ley, dependiendo del líquido.

  El potencial de desbordamiento y la posibilidad de que el agua vuelva al matraz se puede reducir utilizando una trampa entre el matraz y la fuente de vacío.

Comúnmente se cree que lleva el nombre del premio Nobel, Eduard Buchner (sin diéresis), pero en realidad lleva el nombre del químico industrial Ernst Büchner.

🍀 Producto Pyrex

Embudos Büchner con sinterización de diámetro 40 mm.

  Los 40 mm discos sinterizados instalados en estos embudos se fabrican de la misma Pyrex ® vidrio de boro silicato como los cuerpos de embudo, haciendo que estos embudos adecuado para ser utilizado con una amplia gama de productos químicos agresivos.

  1. Amplia gama de embudos de filtro Büchner con discos de vidrio sinterizado integrales
  2. Cuerpo de disco y embudo fabricado con vidrio Pyrex ® químicamente resistente
  3. Para la filtración conveniente de soluciones – No se requieren papeles de filtro – Muy resistente a la mayoría de los reactivos corrosivos, incluido el amoníaco y el ácido sulfúrico concentrado.
  4. Elección de diámetros de disco y porosidades.

⭐ Ventajas de usar el embudo Büchner

  La principal ventaja de usar este tipo de filtración es que avanza mucho más rápidamente (varios órdenes de magnitud) que simplemente permitiendo que el líquido drene a través del medio de filtro a través de la fuerza de la gravedad. Es esencial que la cantidad de líquido que se utiliza se limite a menos de lo que desbordaría el matraz; De lo contrario, el líquido se introducirá en el equipo de vacío.

  Si el vacío es provisto por un dispositivo de flujo de agua, un desbordamiento del líquido podría ocasionar el derrame de un líquido peligroso en la corriente de aguas residuales, una posible violación de la ley, dependiendo del líquido. El potencial de desbordamiento y la posibilidad de que el agua se arrastre de nuevo al matraz puede reducirse utilizando una trampa entre el matraz y la fuente de vacío.

  Se utiliza en laboratorios de química orgánica para ayudar a recolectar compuestos recristalizados. La succión permite que el compuesto recristalizado húmedo se seque de tal manera que quede el compuesto de cristal seco puro que queda. Sin embargo, a menudo es el caso que se requiera más secado, por un horno u otros medios, para eliminar la mayor cantidad posible de líquido residual.

📌 Cuidados del embudo

Evitar la reducción de la tasa de flujo

  1. La cama embalada debe permanecer mojada durante todos los pasos del procesamiento de la muestra.
  2. Una capa de 1 mm de disolvente/solución debe permanecer encima de la frita superior al final de cada paso de procesamiento.
  3. Permitir que el lecho se seque durante el procesamiento de la muestra resultará en la compresión del lecho de resina/absorbente. Esto nos llevará a una reducción significativa del caudal durante los pasos subsiguientes del proceso de preparación/purificación de la muestra.

Reactivación de la cama de absorbente/resina

En caso de pérdida de caudal debido a un sobrecalentamiento:

  1. Deje que la cama se remoje en metanol o acetona durante aproximadamente 20 minutos. Esto aflojará el lecho de resina/absorbente para el futuro uso.
  2. Aplique de 2 a 3 volúmenes adicionales de metanol o acetona en el lecho utilizando presión al vacío. Como todo el metanol o la acetona pasa a través del embudo, mantenga el vacío a través del embudo de la cama durante 10-20 minutos adicionales. Esto eliminará cualquier residuo de metanol o acetona que pueda quedar en la cama.
  3. Antes de su uso, puede ser necesario acondicionar el lecho de resina/absorbente con el disolvente adecuado.

🔍 Función del Embudo Büchner de porcelana

  Este importante instrumento de laboratorio puede ser fabricado en diversos materiales; vidrio, plástico y porcelana. El embudo es utilizado de la misma forma sin importar de que este hecho, la diferencia radica en el tipo de estudio y material empleado en él, de eso depende mucho el material con el que está fabricado el embudo.

  Para usar el embudo primero; el líquido a ser filtrado es volcado dentro del cilindro, y succionado a través de la placa cribada por una bomba de vacío creado con el efecto Venturi, mediante un kitasato y una corriente de agua. El embudo está provisto de un anillo o junta de caucho, de forma troncocónica, que encaja perfectamente en la boca de un matraz de Erlenmeyer con tubuladura lateral, llamado kitasato.

Si aún no te a quedado muy claro mira un video sobre el funcionamiento del embudo