La bureta automática se utiliza para series de pruebas. Se conecta con una botella que contiene la solución de titulación. El aire es bombeado a la botella por una pequeña bomba de aire de goma, creando la presión en la botella que eleva la solución a la parte superior de la bureta.
Cuando la bureta está llena, la válvula se libera, la presión de la botella disminuye y la bureta se pone automáticamente a cero. El trabajo con buretas automáticas es mucho más rápido y el consumo de la solución estándar es menor.
Bureta automática ¿qué es?
Una bureta automática consiste en un matraz
grueso con junta esmerilada de vidrio, donde se coloca una bureta especialmente
diseñada. Este tipo de bureta consiste en un tubo de vidrio concéntrico
inferior.
La parte superior de la bureta contiene un tubo lateral corto con dos aberturas, una abierta y la otra conectada a una bomba de goma, a través de la cual se bombea aire dentro del matraz de la bureta. Un tubo capilar transporta la solución desde el matraz hasta el tubo de la bureta a escala, llenándolo de arriba hacia abajo.
Un pequeño tubo
exterior provisto de una llave de paso de vidrio rectificado de aguja o de PTFE
permite el vaciado de la bureta. El nivel de solución dentro de la bureta se
mantiene en un punto fijo (que corresponde al número 0 de la escala) gracias a
que el extremo del tubo capilar está ligeramente por encima de la línea 0.
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Algunas buretas
tienen una segunda llave de paso, que permite drenar la solución directamente
en el interior del matraz, sin tener que extraerla a mano del mismo y vaciarla
a través del grifo principal.
Las buretas automáticas son de plástico o vidrio, transparentes o ámbar.
Bureta automática capacidades
Con la bureta
automática de vidrio es posible llevar a cabo un llenado más rápido y eficiente
con tan solo apretar un botón. Se ajusta de manera automática desde el punto
cero, la manguera para vertido es hecha de silicona mientras que el tubo de
alimentación es de PVC.
Volumen Capacidad
10 ml 500 ml
15 ml 500 ml
25 ml 1000 ml
50 ml 1000 ml
Bureta automática precio
De acuerdo con la capacidad los precios varían desde unos cientos hasta miles en casos de adquirirlas en kit con otros componentes. Se pueden conseguir fácilmente en los portales digitales que se especializan en este tipo de mercancía.
Características de la bureta automática
Es un tipo de bureta es completamente automática, se programa para hacer
las mediciones correspondientes de los volúmenes y la titulaciones. Son
sumamente precisas y trabajan con sensores internos para hacerlo.
Es increíble ver como se ha pasado de un modelo manual a uno capaz de
hacer las mediciones por sí solo, lo que muestra la preocupación de todos los
científicos por mejorar la calidad en el área laboral y en de investigación.
El vidrio es de borosilicato, su color es ámbar y es de la clase B. Se
puede visualizar marcas cortas en las graduaciones principales, para distancia
de 25 ml que se encuentran en las marcas de subdivisión.
Bureta automática cómo usar
Coloque la botella en el soporte, empujando hacia adentro para asegurarse de que está firmemente sujeta en su lugar.
Desenrosque la tapa de la botella y tome la tapa y el tubo de alimentación. Es posible que desee quite el clip de la bureta amarilla para hacer esto más fácil.
Con un embudo llene el frasco con el líquido de titulación.
Vuelva a colocar el tubo de alimentación en la botella y vuelva a colocar el tapón de rosca, asegurándose de que quede bien apretado.
Apriete la botella para empujar el líquido hacia arriba por el tubo de alimentación y dentro de la bureta, verá que la bureta comienza a llenarse. Llene hasta más allá de la marca de cero en la parte superior de la bureta.
El tubo de retroalimentación en la parte superior de la bureta asegura que el líquido volverá a fluir y terminará en cero. Esto le permite medir de forma rápida y precisa su título final, ya que ha comenzado con un valor exacto de 0.
Comience la titulación: utilice el tornillo para ajustar con precisión el flujo o mantenga un flujo constante para volúmenes más grandes.
Si lo prefiere, también puede plegar el tornillo hacia abajo y pulsar el botón situado debajo para el control manual. Remover el vaso de precipitados o el frasco en el que se está titulando para mezclar el contenido.
Al final de la titulación, lea el resultado en ml del titulante requerido.
Buretas automáticas ¿para qué sirven?
Este tipo de
buretas funcionan de manera muy sencilla, normalmente con una aspiración
automática y una expulsión del líquido mediante una llave de paso, como en las
buretas analógicas.
No son tan
avanzadas como las digitales ni tan básicas como las volumétricas, por lo que
es una buena elección si no sabes cuál comprar.
Bureta Historia
La primera bureta fue inventada en 1845 por el químico francés Étienne
Ossian Henry (1798-1873). En 1855, el químico alemán Karl Friedrich Mohr
(1806-1879) presentó una versión mejorada de la bureta de Henry, con
graduaciones inscritas en el tubo de la bureta.
La palabra “bureta” fue acuñada en 1824 por el químico francés Joseph Louis Gay-Lussac (1778-1850).
Un embudo de decantación es un utensilio para bebidas que se utiliza para airear y filtrar líquidos, como el vino, mientras se vierte en una jarra. Hay una variedad de diferentes tipos disponibles que se hacen con una boca ancha por lo que el vertido y la aireación es más fácil y eficaz a medida que el vino se arremolina y airea cuando se vierte a través del embudo.
¿Cómo funciona el embudo de decantación?
Un embudo de decantación es un embudo de vidrio con un grifo en la parte inferior. Se trata de una técnica con la que es posible la separación de dos líquidos que no se pueden disolver entre sí. Estos se denominan inmiscibles.
En primer lugar, se toma el embudo y se coloca dentro de ellos la mezcla de líquidos, se debe poner un contenedor debajo. A continuación se puede apreciar cómo el líquido de menor densidad flota en la parte superior.
Luego se proceda a
abrir el grifo para que el líquido de mayor densidad fluya por medio del embudo de separación hacia el
contenedor.
El grifo se debe cerrar antes de que el líquido de menor densidad pueda colarse al contenedor. Este, posteriormente, puede ser vaciado en otro recipiente y obtener así la separación de líquidos. Los líquidos que se disuelven entre sí pueden separarse por destilación fraccionada.
¿Qué materiales se utilizan en la Decantación?
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Material necesario
para la decantación:
• Frascos de vidrio de boca ancha con
tapa
• Tubos de centrífuga de plástico con
tapas
• Gradilla para tubos de centrífuga
• Cinta métrica o regla
• Marcador
• Cinta de etiquetas
• Dispersante (hexametafosfato de
sodio)
• Espátula
• Botella exprimible con agua
destilada
• Sonda ultrasónica
• Tejidos de laboratorio
• Termómetro
• Cronómetro
• Jeringa de plástico
¿Qué es un embudo de separación y para qué sirve?
Los embudos
separadores funcionan según el principio de que los líquidos inmiscibles se
separan naturalmente unos de otros junto con sus solutos, creando diferentes
capas de solución-soluto. Por ejemplo, un soluto no polar puede ser extraído de
una solución mezclándolo con un solvente no polar en un embudo de separación.
Después de la
mezcla inicial, la solución inicial y el solvente no polar se separarán y el
soluto estará en el nuevo solvente. Estas capas se pueden separar a perpetuidad
drenándolas del embudo separador utilizando la llave de paso para controlar el
flujo.
Las capas se
separarán en el embudo en función de sus densidades relativas, con el líquido
de menor densidad por encima de las densidades más altas.
Sin embargo, es
importante no asumir que la capa inferior de un embudo separador es siempre la
solución acuosa; mientras que la mayoría de los disolventes orgánicos son menos
densos que los disolventes acuosos, procesos tales como la halogenación pueden
causar excepciones a esta regla. Por estas razones, sigue siendo necesario
elegir los disolventes adecuados para la separación.
Siempre use la técnica apropiada cuando use un embudo separador. Por ejemplo, la mezcla debe hacerse generalmente por inversión suave cuando el tapón está seguro y la llave de paso está cerrada. El venteo debe hacerse con la llave de paso apuntando hacia la parte posterior de la campana.
¿Cuál es la función del embudo de seguridad?
Los embudos de
seguridad aseguran que la eliminación de residuos químicos o biológicos se
mantenga limpia. Con una tapa y un filtro con bisagras, los desechos se
contienen temporalmente a medida que se vierten rápidamente en latas y
recipientes de seguridad compatibles.
Los embudos de
cierre automático reducen la exposición a vapores evaporados peligrosos.
Especialmente diseñados para facilitar la transferencia, estos dispositivos
promueven un entorno de trabajo más seguro. Independientemente de la capacidad
o el diámetro seleccionado, los embudos de seguridad resistentes a los
productos químicos son componentes esenciales para completar cualquier sistema
de seguridad.
Embudo de separación uso
El embudo que se
utiliza para filtrar los sedimentos y cualquier residuo, como el corcho, que
contiene el vino, también se incluye a menudo con un inserto de malla. La
decantación es un procedimiento que mejora el sabor y el aroma del vino, así
como la claridad y el color.
Embudo de decantación dibujo
Embudo de separación capacidad
La capacidad de los
embudos de separación son las siguientes:
50 ml, 100 ml, 250 ml, 500 ml, 1000 ml y 2000 ml
Embudo de separación precio
Dependiendo de la
capacidad y el material con que son elaborados los precios varían desde $24.00
a casi $145
Embudo de separación tamaño
Los tamaños típicos
están entre 30 mL y 3 L. En química industrial pueden ser mucho más grandes y
para volúmenes mucho mayores se utilizan centrífugas.
Embudo de separación tipos
Dos embudos:
A – Con forma de
cono, o pera
B – cilíndrica.
Embudo separador en
forma de pera.
Embudo separador en el uso. La fase orgánica (fase superior amarilla) tiene una densidad menor que la fase acuosa (fase inferior). La fase acuosa se drena en el vaso.
Embudo de separación descripción
Un embudo de decantación tiene la forma de un cono con un extremo hemisférico. Tiene un tapón en la parte superior y una llave de paso en la parte inferior. Los embudos de separación utilizados en los laboratorios se fabrican normalmente con vidrio borosilicato y sus llaves de paso son de vidrio o PTFE. Los tamaños típicos están entre 50 mL y 3 L.
En química
industrial estos embudos separadores pueden ser mucho más grandes y para
volúmenes mucho mayores se utilizan centrífugas. Los lados inclinados de un
embudo separador están diseñados para facilitar la identificación de las capas.
La salida
controlada por llave de paso está diseñada para drenar el líquido del embudo.
Encima del embudo hay una junta cónica estándar que encaja con un tapón de
vidrio esmerilado o de teflón.
Utilización
Para utilizar un
embudo separador, las dos fases y la mezcla a separar en solución se añaden por
la parte superior con la llave de paso en la parte inferior cerrada.
El embudo de decantación se cierra y se agita suavemente invirtiendo el embudo varias veces; si las dos soluciones se mezclan entre sí, se formarán emulsiones demasiado vigorosas. Luego se invierte el embudo y se abre cuidadosamente el grifo para liberar el exceso de presión de vapor.
El embudo de
decantación está reservado para permitir la separación completa de las fases. A
continuación, se abren los grifos superior e inferior y las dos fases se
liberan por gravitación.
Antes de utilizar el embudo separador, asegúrese de que esté colocado de forma segura en un soporte anular. Colocar también un matraz Erlenmeyer debajo del embudo de decantación para asegurarse de que las gotas que puedan salir del embudo queden atrapadas en el mismo. Por último, es de vital importancia asegurarse de que la llave de paso esté bien cerrada.
Embudo de separación seguridad
Cuando el embudo
separador se coloque en un soporte anular, coloque siempre un vaso de
precipitados debajo del embudo separador para atrapar las soluciones que tengan
fugas o derrames.
Siempre sostenga
firmemente el tapón cuando lo sacuda y ventile regularmente el embudo abriendo
la llave de paso. Se recomiendan guantes.
Protéjase siempre y
proteja a su vecino de salpicaduras químicas inesperadas. La presión puede
acumularse en el embudo durante la mezcla, por lo que los productos químicos
pueden ser expulsados violentamente del embudo.
Retire siempre el tapón cuando el embudo esté almacenado en el soporte anular.
Embudo de separación partes
Los componentes de
un embudo separador incluyen: el cuerpo, el tapón y la llave de paso. La llave
de paso, sin embargo, se compone de cuatro partes: una válvula de teflón, una
arandela de teflón, una junta tórica negra y una tuerca de teflón.
El cuerpo del
embudo separador tiene la capacidad de ser sellado desde el exterior tanto por
el tapón como por la llave de paso en la parte superior e inferior,
respectivamente.
Cuerpo del embudo separador
El cuerpo de vidrio
borosilicato representa la mayor parte del embudo separador. El cuerpo funciona
como el recipiente de almacenamiento, que tiene una capacidad de 125 ml, en su
mayoría de forma cónica. Sus dimensiones
son de aproximadamente 22 cm de altura y 7 cm de diámetro en su mayor parte.
William Sabel,
profesor de química industrial en Oxford, afirma que el uso del vidrio
borosilicato es el más utilizado en el laboratorio por dos razones importantes:
1- puede resistir
un calentamiento desigual.
2- es poco probable que reaccione químicamente con el contenido que posee. Por lo tanto, el cuerpo del embudo separador es altamente resistente a la rotura, agrietamiento o fusión y no interferirá con las mezclas químicas que es responsable de mantener.
Tapón
El propósito del
tapón es contener el líquido dentro del cuerpo mientras se invierte el embudo,
algo que ocurre con frecuencia en el proceso de extracción.
Al igual que el
cuerpo del embudo separador, está hecho de vidrio borosilicato. Para mayor
comodidad y facilidad de agarre, se acerca al tamaño y forma de un pulgar.
Tiene aproximadamente 4 cm de largo y 2 cm de diámetro.
Llave de paso
Hay dos funciones
principales de la llave de paso: (1) para retener o liberar líquido del cuerpo
del embudo separador y (2) para liberar la presión acumulada dentro del embudo
mientras se invierte. Ambas funciones se realizan abriendo o cerrando la
válvula.
La llave de paso se
compone de cuatro partes:
Válvula de teflón:
El componente principal de la llave de paso es la válvula de teflón azul. La válvula se utiliza para controlar el flujo de líquido que sale por el fondo del embudo. Es decir, perpendicular al contador; si la válvula estuviera paralela al contador, estaría cerrada.
La válvula se puede
ajustar en varios grados para controlar el caudal. Su forma triangular se
inserta en el cuerpo del embudo separador con un mango que permanece en el
exterior.
Tiene
aproximadamente 4,5 cm de ancho con un mango de 4 cm de largo. Al igual que el vidrio borosilicato, el
teflón es químicamente inactivo y, por lo tanto, es un material de uso común en
las llaves de paso.
Tuerca de teflón:
También hecha de teflón, la tuerca es la parte externa del sistema de tuerca y arandela. El sistema de tuerca y arandela se utiliza para asegurar la válvula en su lugar. Es una tuerca de plástico estándar de aproximadamente 1 cm de espesor.
Arandela tórica negra:
Trabajando en conjunto con la tuerca y la arandela, la junta tórica de goma negra está situada entre las dos. El objetivo principal de la junta tórica es evitar las fugas. Tiene un grosor aproximado de 2 mm.
Arandela de teflón:
Embudos de separación ventajas
Juntos, el cuerpo
del embudo separador, el tapón y la llave de paso construyen este aparato
básico utilizado para una variedad de propósitos. Lo más importante es que se
utiliza en laboratorios de todo el mundo para aislar o purificar un producto.
Es una pieza común de equipo de laboratorio dentro de las compañías farmacéuticas que se utiliza en la investigación y producción de medicamentos potenciales.
Beneficios de la llave de teflón
Específica para
este producto, la llave de paso de teflón tiene una gran ventaja sobre las
llaves de vidrio. El teflón es beneficioso porque es químicamente inactivo,
como se mencionó anteriormente, y no requiere grasa ni lubricación.
Las llaves de paso
de vidrio a menudo requieren un aceite químicamente activo, lo que resulta en
errores experimentales.
Por lo tanto, el
uso de este producto de teflón y como ya se ha comentado anteriormente, el
vidrio borosilicato, limitan significativamente las posibilidades de error y
hacen que este producto sea extremadamente útil.
Una pipeta serológica es una pieza de cristalería volumétrica utilizada para transferir cuantitativamente un volumen deseado de solución de un contenedor a otro.
Las pipetas se
calibran a una temperatura especificada (generalmente 68°F[20°C] o 77°F[25°C])
ya sea para contener (TC) o para entregar (TD) el volumen indicado por las
marcas grabadas/pintadas en el lado de la pipeta.
Las pipetas
marcadas con la marca TD generalmente tienen el volumen deseado con drenaje
libre; mientras que en el caso de las pipetas marcadas con la marca TC, la
última gota debe ser soplada o lavada con un solvente apropiado.
Pipeta serológica ¿qué es?
La pipeta serológica es un instrumento de laboratorio que transfiere líquidos medidos en volumen por ml. La mayoría tienen graduaciones laterales para medir el líquido que se está dispensando o aspirando. Un paso importante al cultivar o recubrir las células es la distribución uniforme a través de una solución.
Pipeta serológica uso correcto
La comprensión de las pipetas serológicas es muy importante en sus aplicaciones de laboratorio. Estas se utilizan con frecuencia por los laboratoristas, para transferir líquidos cuyas mediciones son de 1mL a 50mL.
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La serología es un
estudio científico del suero plasmático u otros fluidos corporales que se
refiere a la identificación diagnóstica de anticuerpos. Hemos reunido algunas
técnicas y consejos útiles para tener en cuenta al usar pipetas serológicas.
No toque la pipeta estéril con las
manos ni la coloque sobre la mesa, ya que esto puede contaminarla.
«Soplado» es un término
común que significa vaciar la pipeta para medir el volumen correcto.
Nunca quieres que la solución suba
al tapón de algodón.
Cuando se utilizan pipetas
serológicas es importante que el usuario use ropa de protección, como bata de
laboratorio, guantes, gafas, etc.
Con una variedad de pipetas serológicas para elegir, pueden utilizarse para una amplia gama de ensayos experimentales.
Pipeta serológica tipos
La función de las
pipetas serológicas en los laboratorios, es la de transferir líquidos medidos
en mililitros desde 1 a 50.
Las pipetas están disponibles en plástico o vidrio, para el propósito de este post nos enfocaremos en pipetas serológicas de plástico de poliestireno de un solo uso. Revisaremos tres tipos de pipetas serológicas, cada tipo de pipeta está diseñada para aplicaciones específicas.
Pipetas de extremo
abierto
Las pipetas de
extremo abierto son pipetas especialmente diseñadas que presentan un extremo
abierto para su uso con líquidos de alta viscosidad. El diseño abierto permite
a las pipetas aspirar y dispensar líquidos viscosos de forma rápida y sencilla.
Por lo tanto, las
rápidas tasas de llenado y liberación hacen que estas pipetas sean muy
adecuadas para su uso en aplicaciones de aceites, cosméticos, pinturas, lodos,
alimentos y cultivos celulares.
Estas pipetas de
extremo abierto están construidas de plástico de poliestireno y proporcionan
una alternativa más segura a las pipetas de vidrio.
El vapor líquido y
la contaminación de fluido al pipeteador y a la muestra se reducen
significativamente con un tapón de filtro de fibra ubicado en el extremo de la
punta de la pipeta.
Estas pipetas no
pirogénicas son esterilizadas por irradiación gamma y vienen envueltas
individualmente en papel termoformado/envases de plástico pelable.
Las pipetas están disponibles en tamaños de 1 mL, 2 mL, 5 mL y 10 mL. Codificadas por colores para cumplir con la norma industrial ASTM E1380 para una fácil identificación, estas pipetas de extremo abierto son una excelente elección para el manejo eficiente de líquidos.
Pipetas
bacteriológicas
Utilizadas
principalmente en el examen de productos lácteos, las pipetas de leche o
bacteriológicas están diseñadas para su uso en el campo de los productos
lácteos y cumplen con la norma de la Asociación Americana de Salud Pública
(A.P.H.A.) para el examen de productos lácteos.
Estas pipetas de
leche de poliestireno están disponibles en tamaños de 1.1 mL y 2.2 mL.
Estas pipetas
bacteriológicas estériles, no pirogénicas, de un solo uso son esterilizadas por
irradiación gamma y vienen envueltas individualmente en papel
termoformado/envases de plástico pelable.
Estas pipetas utilizan un filtro de fibra que ayuda a prevenir la contaminación por fluidos y vapor líquido de las muestras y el mecanismo interno de la pipeta. Esta pipeta está calibrada para suministrar (TD) a +/- 2% y cumple con los estándares ASTM E934.
Pipetas de
aspiración
A diferencia de las
pipetas abiertas y bacteriológicas, las pipetas de aspiración son completamente
transparentes y no tienen gradaciones.
Diseñados para la
transferencia y mezcla de líquidos, se utilizan en una amplia variedad de
aplicaciones, tales como procedimientos de aspiración al vacío o con pipeta.
Estas pipetas de
poliestireno de un solo uso, no pirogénicas, no obstruidas, son una alternativa
más segura a las pipetas de vidrio Pasteur.
Estas pipetas de
aspiración vienen envueltas individualmente en una cáscara de plástico/papel
termoformada para protegerlas contra la contaminación.
Esterilizadas por irradiación gamma, estas pipetas tienen un nivel de aseguramiento de la esterilidad (SAL) de 10-6.
¿Cuál es el uso de la pipeta Serológica?
Ahora que hemos
revisado los tres tipos diferentes de pipetas serológicas disponibles, usted
debe tener una mejor comprensión de las capacidades únicas de cada tipo de
pipeta.
Para mayor
flexibilidad y comodidad, se pueden utilizar diferentes tamaños de pipetas con
el mismo controlador de pipetas para una variedad de ensayos experimentales.
Con un adecuado uso de las técnicas del manejo de las pipetas serológicas, estas terminan siendo una herramienta fundamental para el laboratorista que requiere transferir volúmenes de soluciones medidas en mililitros en su lugar de trabajo.
¿Qué diferencia hay entre una pipeta graduada y la
Serológica?
Pipeta graduada
Se trata de una
pipeta que posee su volumen marcado a lo largo del tubo. Son necesarias en caso
de requerir precisión al momento de llevar a cabo la transferencia de un volumen de líquido
desde un recipiente a otro.
Se encuentran
confeccionados en plástico o vidrio y su punta posee forma cónica. Posee también
marcas de graduación en su cuerpo que permite visualizar la cantidad de volumen
desde la punta hasta el punto que se observa.
Una de las ventajas
de las pipetas pequeñas es que estas permiten una medición de fluidos con mayor
precisión. Las grandes, por su parte son útiles cuando la precisión no es
realmente necesaria.
Por consiguiente, las pipetas varían en volumen, con la mayoría midiendo entre 0 y 25.0 mililitros (0.00 y 0.88 imp fl oz; 0.00 y 0.85 US fl oz).
Pipeta serológica
Las pipetas pueden
ser estériles, de plástico y desechables o esterilizables, de vidrio y
reutilizables.
Los dos tipos de
pipetas requieren de otra para que las ayude en la aspiración y dispensación de
líquidos. Se pueden utilizar diferentes tamaños de pipetas con la misma ayuda
de pipeta para una variedad de ensayos experimentales.
Por ejemplo, en el
caso de las pipetas serológicas, estas se pueden utilizar para realizar mezclas
de soluciones químicas o suspensiones celulares. Como ya se ha dicho, también se
pueden transferir líquidos de un recipiente a otro o para estratificar los
reactivos que posean diferentes densidades.
Con una cuidadosa
atención al nivel de líquido que se está aspirando y dispensando, las pipetas
serológicas pueden ser herramientas útiles para transferir volúmenes exactos de
soluciones de mililitros en el laboratorio.
La incubadora de laboratorio es utilizada ra cultivar y mantener cultivos microbiológicos o cultivos celulares. La finalidad de esta herramienta es mantener la humedad y temperatura, además de otras condiciones, en perfecto estado al igual que el contenido de CO (CO2) y oxigeno de la atmósfera interior.
📌 ¿Qué es una Incubadora laboratorio?
La incubadora es un equipo necesario para cualquier laboratorio que realice cultivos celulares y cultivos de tejidos. Las incubadoras protegen las células de los cambios de temperatura, humedad, CO2 y O2. La temperatura puede ser regulada por medio de camisas de agua o de aire.
La humedad constante es mantenida por un canal de agua húmeda y los ventiladores permiten la circulación de O2. Las incubadoras de CO2 modulares y estándar se controlan con sensores de conductividad térmica o IR.
☘ Historia de Incubadora laboratorio
En el siglo XIX, los
investigadores comenzaron a buscar el entorno in vitro ideal para mantener las
reservas de cultivos celulares.
La primera incubadora de CO2
desarrollada consistió en una simple campana que contenía una vela encendida.
Los cultivos se colocaban bajo la tapa del frasco junto a la vela encendida,
antes de que el frasco se trasladara a un horno seco y caliente. Este sistema
puede considerarse la primera incubadora de CO2 con camisa de aire.
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A finales de la década de 1960,
se desarrollaron las primeras incubadoras comerciales de CO2. Fue durante este
tiempo que New Brunswick Scientific (NBS) introdujo una gama de productos de
incubadora incluyendo el Psychrotherm, el primer agitador refrigerado de
incubadora, el Modelo G25 de gran capacidad estilo consola, y el agitador de
baño de agua G76.
Estos modelos todavía se pueden
encontrar operando en laboratorios de todo el mundo hasta el día de hoy.
Años 80s y 90s
En 1984, SHEL LAB introdujo la
innovadora incubadora de uso general, que resultó ser muy popular en el
mercado. Esta incubadora ofrecía un diseño único de camisa de aire caliente,
puerta exterior calefactada y cinco elementos calefactores estratégicamente
colocados para ofrecer una uniformidad de temperatura sin concesiones, sin
puntos calientes.
A finales de los años 90, Torrey Pines Scientific desarrolló las primeras incubadoras de sobremesa basadas en Peltier capaces de enfriar y calentar. Estas incubadoras se comercializaron bajo el nombre comercial de EchoTherm.
Un nuevo siglo
En 2001, se concedió una patente
para un sistema de control de estabilización de temperatura ambiente para
incubadoras de laboratorio.
Este dispositivo fue capaz de
mantener eficazmente la temperatura de la incubadora dentro de un rango deseado
y de controlar con precisión la tasa de pérdida de calor de la incubadora a
medida que aumentaba la temperatura ambiente.
En 2003, NBS comenzó la
distribución mundial de una nueva línea de incubadoras de CO2 con un diseño de
calentamiento directo y sin ventilador.
Estas incubadoras eran más
ligeras que los diseños tradicionales con camisa de agua, e incluían los
controladores de CO2 más avanzados jamás desarrollados, con diagnósticos a
bordo, menú de ayuda y restablecimiento automático de la línea de base.
También en 2003, se concedió una
patente para una incubadora de microplacas de alta eficiencia. Esta incubadora
ofrecía una uniformidad y estabilidad superior de la temperatura a través de
una construcción simple en la que se apilaban múltiples cámaras de incubación
para conservar el espacio del laboratorio.
Las múltiples cámaras de
incubación pueden ser controladas electrónicamente por un solo conjunto de
control de temperatura en una incubadora maestra. En el interior de la cámara
se instaló un depósito de agua que podía llenarse externamente.
En 2006, NBS introdujo dos nuevas
incubadoras de CO2, Innova CO-170 y Excella CO-170, que ofrecían mayor espacio
interno sin aumentar el tamaño externo.
En el mismo año, NBS también introdujo 14 nuevos agitadores, incluyendo cuatro nuevos agitadores de banco y de piso, dos nuevos agitadores de incubadora apilables I-26 e I26R que ahorran espacio y la nueva línea Excella®.
Se incrementa la innovación
En 2008, CARON presentó la nueva incubadora IR-CO2 de gran capacidad, la primera y única incubadora IR-CO2 de gran capacidad de alcance con un ciclo automático de descontaminación por calor húmedo que limpió la unidad durante la noche.
Esta incubadora también ofrecía
un interior configurable por el usuario que podía soportar agitadores y
rodillos de celda y un sistema opcional de recirculación de agua respetuoso con
el medio ambiente.
En 2009, SANYO lanzó el primer y
más rápido método de esterilización de H2O2 de la industria, la Incubadora de
Cultivos Celulares GxP, MCO-19AIC (UVH), descrita como la solución de cultivo
celular más completa para aplicaciones altamente reguladas o incubación
convencional. Se consideró que éste era el nuevo estándar de la tecnología de
incubación.
Esta incubadora utilizó el primer
sistema de esterilización rápida de H2O2 de la industria, un proceso de
descontaminación de menos de tres horas que sigue siendo el método más rápido
disponible.
En 2010, BINDER lanzó el kit de
suministro de gas BINDER, que aumenta la comodidad del usuario al cambiar
automáticamente la fuente de suministro a una segunda botella de gas tan pronto
como se vacía la primera botella de gas.
Esto evitó que los investigadores tuvieran que venir al laboratorio por la noche o durante el fin de semana para cambiar la botella de gas. El equipo también tenía una función de alarma acústica y óptica, así como una salida de alarma libre de potencial para sistemas de información externos.
😊 ¿Cómo se usa la incubadora de laboratorio?
Las incubadoras de laboratorio
proporcionan un entorno controlado y libre de contaminantes para un trabajo
seguro y fiable con cultivos de células y tejidos, regulando condiciones como
la temperatura, la humedad y el CO2. Las incubadoras microbiológicas se
utilizan para el crecimiento y almacenamiento de cultivos bacterianos.
Abundan los tipos y tamaños,
incluyendo incubadoras de baño seco con uno o dos bloques, unidades de demanda
biológica de oxígeno (DBO) ideales para estudios de insectos o plantas,
incubadoras de agitación, hornos de hibridación, biorreactores y una amplia
variedad de cámaras de prueba de laboratorio.
Encontrar el tamaño correcto para
su aplicación particular es una tarea fácil, con tamaños que van desde pequeñas
unidades de sobremesa hasta el tamaño de una habitación.
Las incubadoras de laboratorio
son esenciales para el cultivo de células y tejidos, los estudios bioquímicos y
hematológicos, el trabajo farmacéutico y el análisis de alimentos.
🔹 ¿Qué es la incubación en microbiología?
Las incubadoras microbiológicas,
también llamadas incubadoras «sólo de calor» o «estándar»,
tienen elementos de calentamiento y pueden proporcionar temperaturas de
incubación que están por encima de la temperatura ambiente únicamente.
Si el laboratorio tiene una
temperatura ambiente de unos 22°C, sólo pueden tratar temperaturas de
incubación superiores a unos 27°C o incluso 30°C.
🔴 ¿Cuáles son las condiciones que debe tener una incubadora?
Control de temperatura
Aunque las células durarán
semanas a temperaturas más bajas, no sobrevivirán más de unas pocas horas si se
exponen a temperaturas más altas que las óptimas.
Para asegurar una temperatura
constante para sus células, es crucial usar una incubadora que no se
sobrecaliente una vez que haya alcanzado la temperatura establecida.
Los ventiladores ayudarán a
normalizar la temperatura en toda la incubadora y pueden acelerar el tiempo de
recuperación después de abrir la puerta.
También puede utilizar una
segunda sonda de temperatura como red de seguridad, sólo en caso de que el
termómetro primario no funcione correctamente.
Además de la temperatura,
asegúrese de vigilar los niveles de humedad. Si éstos son demasiado bajos, el
agua puede evaporarse rápidamente haciendo que las concentraciones de sal,
minerales y solutos se eleven a niveles potencialmente tóxicos.
Para mantener una humedad óptima,
evite el uso de un ventilador muy fuerte, pero mantenga un flujo de aire
constante. Las fuentes externas de agua son buenas para aumentar los niveles de
humedad, pero una sartén tradicional seguirá haciendo un trabajo eficaz, aunque
más lento.
Gases reguladores
El dióxido de carbono está presente
en una concentración del 5% en nuestros pulmones y ésta es a menudo la
concentración utilizada en las incubadoras.
Existen diferentes sensores para
CO2 y los modernos sensores infrarrojos utilizan una fuente de luz de silicona
que mantiene la resistencia después de un uso intenso.
Estos sensores recuperan la
concentración de CO2 más rápidamente después de que la puerta ha sido abierta,
reduciendo el tiempo que sus células están en condiciones subóptimas.
Otro gas que usted necesita
controlar en su incubadora es el oxígeno. La mayoría de las células están en
ambientes hipóxicos in vivo, por lo que es importante mantener los niveles
subatmosféricos de O2 en su incubadora.
Si desea mantener niveles de O2
muy bajos (<1%), puede utilizar un recipiente sellado con gas premezclado.
Mantén la puerta cerrada
Las mezclas de gases, la humedad
y la temperatura cambian rápidamente una vez abierta la puerta y tardan mucho
tiempo en recuperarse una vez cerrada.
Su organización puede hacer mucho para asegurar que usted mantenga un ambiente constante en el cual sus células puedan prosperar.
👉 Limpieza de la Incubadora laboratorio
Reducción de la contaminación
La limpieza es crítica para
prevenir la contaminación en los cultivos celulares. El polvo y la suciedad
pueden ser transportados por corrientes de aire creadas por el movimiento en el
laboratorio.
El aire interior normal contiene
de 100 a 1000 microorganismos por metro cúbico, todos los cuales circulan en
cualquier momento, y la mayoría de ellos provienen de los billones de flora
normal que viven en y sobre la piel.
Esto significa que los
contaminantes pueden entrar cada vez que se abre la puerta de la incubadora. El
laboratorio debe limpiarse por lo menos una vez al mes, incluyendo la limpieza
y desinfección del gabinete de seguridad biológica, baño de agua, centrífuga,
microscopio y todos los rincones del laboratorio y alrededor del equipo.
El almacenamiento de cartón en o
alrededor de refrigeradores y congeladores debe ser eliminado ya que el cartón
puede mojarse y producir hongos.
Los artículos no deben
almacenarse en la parte superior de la incubadora porque el polvo y la suciedad
pueden ser arrastrados dentro de la cámara a través de las corrientes de aire
creadas durante la apertura de la puerta.
Desinfectantes para incubadoras
Aunque hay muchos desinfectantes
disponibles, no todos son seguros para las células. Algunos desinfectantes
fuertes emiten vapores que entran en la incubadora y afectan el crecimiento
celular.
Estos humos contienen sustancias
químicas orgánicas volátiles (COV) que pueden inducir la expresión de choque
térmico y otras proteínas de estrés.
Los productos químicos comunes de
laboratorio como el fenol, el alcohol isoamílico y el beta-mercaptoetanol son
los COV, pero los productos de limpieza y desinfectantes de laboratorio, e
incluso los limpiadores y ceras para suelos, producen vapores nocivos.
El equipo de tecnología de Thermo
Fisher Scientific probó una serie de desinfectantes que cumplían con los
siguientes criterios: ampliamente efectivos contra una amplia gama de
microorganismos e inofensivos (no corrosivos) para los componentes de la
incubadora. Un desinfectante de amonio cuaternario era el que mejor cumplía los
requisitos.
La versión básica está
ampliamente disponible en varios fabricantes. Algunos ejemplos incluyen Lysol
No Rinse (Reckitt Benckiser, Slough, Reino Unido), Conflikt (Decon Labs, King
of Prussia, Penn.) y Fermacidal-D (Labotect, Goettingen, Alemania).
Una solución del 2% del mismo desinfectante de amonio cuaternario que se usa para desinfectar el interior de la incubadora se agrega a la bandeja de agua.2 Se deben evitar los limpiadores que contengan cloro, porque el blanqueador de cloro y sus derivados con actividad oxidante pueden corroer el acero inoxidable y el cobre y son tóxicos para las células cultivadas.
Limpieza de la incubadora
Una incubadora de CO2 debe ser fácil de
limpiar con un manejo mínimo.
La limpieza regular es necesaria
para proteger las células de la contaminación y para mantener la incubadora
funcionando adecuadamente. Las directrices incluyen:
Cambie el agua de la incubadora
(no sólo rellénela, sino que vacíe y añada agua fresca, estéril y destilada) al
menos cada dos semanas.
Limpie la incubadora una o dos
veces al mes (dependiendo del número de usuarios). No es necesario autoclavarlo
todo; rocíe o limpie la incubadora con etanol al 70%, especialmente la bandeja
de agua (no rocíe etanol en los sensores). Deje secar al aire.
Revise la incubadora una vez por
semana y deseche los cultivos no utilizados.
Si alguna de las rejillas de
ventilación de la habitación está soplando hacia la incubadora, redirija el
aire si es posible, ya que los conductos de aire acondicionado pueden contener
moho.
Retire todo lo que esté almacenado en la parte superior de la incubadora y limpie la parte superior de la unidad cada dos semanas para eliminar el polvo. Limpie las puertas y manijas con etanol al 70%. Limpie todos los derrames inmediatamente.
🍁 Aplicaciones de la incubadora en el laboratorio
Ejemplos de aplicaciones en la
incubadora
Cultivos de células en
crecimiento
Reproducción de colonias de gérmenes con
posterior recuento de gérmenes en la industria alimentaria
Reproducción de colonias de gérmenes y posterior
determinación de la demanda bioquímica de oxígeno (control de aguas residuales)
Reproducción de microorganismos como bacterias,
hongos, levaduras o virus
Cría de insectos y eclosión de huevos en
zoología
Almacenamiento controlado de muestras
Cultivo de cristales/cristales de proteínas
🌟 Cuidados de una Incubadora laboratorio
Mantenimiento general de la incubadora
Las incubadoras requieren un mantenimiento mínimo. Reemplace los filtros HEPA cada seis meses a un año, dependiendo del número de usuarios, la limpieza de la unidad y el diseño del laboratorio y de la incubadora.
Maneje los filtros HEPA sólo por
la carcasa externa, sin tocar el medio filtrante. Antes de reemplazar un filtro
HEPA en una incubadora de CO2, inspeccione el medio para asegurarse de que no
haya roturas o desgarros.
El filtro HEPA debe estar ubicado
en la cámara de incubación para su mejor funcionamiento y ser fácil de
reemplazar sin necesidad de usar herramientas. Reemplace los filtros de entrada
de gas (donde el gas CO2 entra en la incubadora) cada seis meses a un año.
La calibración de CO2 debe ser monitoreada regularmente usando un analizador de CO2 o un sensor portátil, desde una vez al mes hasta trimestralmente, dependiendo del tráfico de entrada y salida de la incubadora.
La frecuencia con la que se
realiza el ciclo de esterilización por calor depende de la limpieza del
laboratorio, del número de personas que utilizan la incubadora, de la
frecuencia con la que se abre la puerta y de la conveniencia de cerrar la
incubadora durante la noche. La mayoría de los usuarios utilizan esta función
de una vez al mes a una vez cada seis meses.
Quizás lo más importante para el
mantenimiento de la incubadora es mantener un alto nivel de agua en la bandeja
de agua. Una disminución de la humedad provoca la evaporación del agua del
medio de cultivo.
Cuando el agua se evapora, las sales, minerales, aminoácidos, etc., cuidadosamente balanceados en el medio de crecimiento se vuelven demasiado concentrados, lo que puede resultar en toxicidad y muerte celular. La baja humedad también puede dañar el sensor de CO2.
📌 Incubadora laboratorio precios
Los precios varían de acuerdo con
la aplicación. Algunas aplicaciones
incluyen estudios bioquímicos, bacteriología y estudios hematológicos. Hay
aplicaciones de incubadora de propósito general, cultivo bacteriano e investigación
de determinaciones microbiológicas, ensayos de estabilidad farmacéutica,
procesamiento de alimentos y aplicaciones de aparatos de rodillo de Gran Escala
QC.
En ese sentido, es posible encontrar incubadoras cuyo costo apenas supera los 30 dólares, hasta sobrepasar los 6000 dólares. Cuando se trata de incubadoras para bebés prematuros, el precio, por lo general, ronda los 50,000 dólares.
A continuación te presentamos dos vídeos con los esperamos puedas incrementar los conocimientos adquiridos acerca del correcto uso de las incubadoras.
Los materiales de laboratorio para calentar son instrumentos que se utilizan en los laboratorios para someter a altas temperaturas diversas sustancias tanto sólidas como líquidas.
La temperatura es una de las
variables físicas más importantes que se utiliza para controlar los
experimentos físicos, biológicos y químicos.
Un requisito común en un
experimento de laboratorio es la necesidad de calentar una muestra. Varios
equipos pueden hacer esto, incluyendo el quemador Bunsen, el horno de
laboratorio, la placa caliente y la incubadora.
¿Qué son los materiales de laboratorio para calentar?
Los instrumentos de laboratorio para calentarson resistentes a altas temperaturas, con los que se pueden calentar sustancias sólidas y líquidas. La cápsula de porcelana es un ejemplo de estos materiales, también están los tubos de ensayo, los matraces, etc.
¿Cuáles son los materiales de laboratorio para calentar?
Quemador Bunsen
<
El quemador Bunsen es una de las piezas más conocidas del equipo de laboratorio que se encuentra en los laboratorios de ciencias de las escuelas. Consiste en un tubo mezclador que se utiliza para generar una mezcla de gas y aire.
Una vez encendida, la intensidad
de la llama se puede variar abriendo o cerrando un orificio de aire ajustable.
Los quemadores Bunsen se utilizan normalmente para calentar vasos de
precipitados de líquido con el fin de inducir reacciones químicas.
Los quemadores Bunsen también presentan desventajas: No pueden controlar la temperatura con la misma precisión que los calentadores electrónicos y el uso de una llama abierta puede ser peligroso.
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Horno de laboratorio
Se utiliza un horno de
laboratorio para calentar las muestras (generalmente sólidos) a una temperatura
determinada, durante un tiempo determinado, dentro de un entorno cerrado. Los
dispositivos se utilizan en todas las disciplinas científicas para el recocido,
el secado y la esterilización.
A diferencia de los hornos de cocción estándar, los hornos de laboratorio ofrecen precisión y uniformidad en las temperaturas establecidas. Los hornos de laboratorio están diseñados para asegurar que cada punto dentro del dispositivo esté a la temperatura objetivo.
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Placa caliente
Las placas calientes son aparatos eléctricos sencillos que se utilizan para calentar muestras dentro del aire. Consisten en una superficie calefactora y una serie de controles para cambiar la temperatura. Las placas calientes se utilizan generalmente cuando la temperatura deseada está por encima de los 100 grados centígrados (212 grados Fahrenheit) y se consideran mucho más seguras que los calentadores de llama abierta como los quemadores Bunsen.
Incubadora de laboratorio
Se utiliza una incubadora de laboratorio para calentar una muestra biológica a una temperatura determinada, que normalmente se ha configurado para optimizar el crecimiento de la muestra biológica. Dos tipos principales de incubadoras incluyen las incubadoras de gas y las incubadoras microbiológicas.
La incubadora de gas es un
dispositivo sellado similar a un horno que bombea una concentración fija de
dióxido de carbono al espacio de incubación. Esto permite el control de la
humedad y el pH, así como de la temperatura.
Una incubadora microbiológica no inyecta gas en el espacio de incubación y es esencialmente un horno de laboratorio que funciona entre 5 y 70 grados Celsius (41 y 158 grados Fahrenheit). Esto los hace útiles para el crecimiento y almacenamiento de cultivos bacterianos que no requieren condiciones específicas de humedad y pH.
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Cápsula de porcelana
Es un instrumento que resiste elevadas temperaturas y permite carbonizar sustancias y compuestos químicos.
Matraz
Es un envase de vidrio que se usa para mezclar soluciones químicas. Predominan en forma de esfera con cuello estrecho y recto. En este recipiente se contienen líquidos.
Materiales de laboratorio para calentar a fuego directo
Un quemador Bunsen, llamado así
por Robert Bunsen, es una pieza común de equipo de laboratorio que produce una
sola llama de gas abierta, que se utiliza para la calefacción, la
esterilización y la combustión.
El gas puede ser gas natural (que
es principalmente metano) o un gas licuado de petróleo, como el propano,
butano, o una mezcla de ambos.
Un quemador Bunsen también se
utiliza en los laboratorios de microbiología para esterilizar los equipos y
para producir una corriente ascendente que aleja los contaminantes
transportados por el aire del área de trabajo.
Existen otros quemadores basados
en el mismo principio. Las alternativas más importantes al quemador Bunsen son:
Quemador Teclu
La parte inferior de su tubo es
cónica, con una tuerca redonda debajo de su base. El espacio, fijado por la
distancia entre la tuerca y el extremo del tubo, regula la entrada de aire de
forma similar a las ranuras abiertas del quemador Bunsen.
El quemador Teclu proporciona una mejor mezcla de aire y combustible y puede alcanzar temperaturas de llama más altas que el quemador Bunsen.
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Quemador Meker
La parte inferior de su tubo
tiene más aberturas con una sección total mayor, admitiendo más aire y
facilitando una mejor mezcla de aire y gas. El tubo es más ancho y su parte
superior está cubierta con una rejilla de alambre.
La rejilla separa la llama en un
conjunto de llamas más pequeñas con una envoltura externa común, y también
evita el retorno de la llama al fondo del tubo, lo cual es un riesgo en altas
relaciones aire/combustible y limita la tasa máxima de entrada de aire en un
quemador Bunsen convencional.
Temperaturas de llama de hasta 1.100-1.200 °C (2.000-2.200 °F) son alcanzables si se utilizan correctamente. La llama también arde sin ruido, a diferencia de los quemadores Bunsen o Teclu.
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Quemador Tirrill
La base del quemador tiene una válvula de aguja que permite la regulación de la entrada de gas directamente desde el quemador, en lugar de desde la fuente de gas. La temperatura máxima de la llama puede alcanzar los 1560 °C.
Materiales de laboratorio de vidrio para calentar
Vaso precipitado
Es un envase con forma cilíndrica, elaborado en vidrio Pírex. Por lo general se usa en los laboratorios para calentar sustancias o para traspasar líquidos. Además de su forma cilíndrica, su fondo es plano. Sus capacidades son diversas desde 1ml hasta varios litros. Conoce más del vaso precipitado aquí
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Matraz de Erlenmeyer
Es uno de los recipientes que se
usan con gran frecuencia en los laboratorios. Con ellos se pueden armar
aparatos de destilación o para procurar la reacción de sustancias que debes ser
sometida a periodos largos de calentamiento.
También se utilizan para contener líquidos que ameritan conservación por un tiempo prolongado.
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Balón de destilación
Es un recipiente que se
caracteriza por su cuello largo y la forma esférica de su cuerpo. Su diseño
garantiza el calentamiento de manera uniforme de distintas sustancias. Gracias
a su base redondeada fácilmente es posible agitar su contenido, impidiendo el
derrame de las sustancias fuera del envase.
En ocasiones lleva un tubo de desprendimiento lateral, unido al cuello del envase, que permite la expulsión de vapores cuando se lleva a cabo el proceso de destilación con dirección al condensador.
Se trata de un tubo pequeño, con forma cilíndrica, elaborado en vidrio, con una abertura en uno de sus extremos (puede tener una tapa), mientras que el extremo opuesto es cerrado y redondeado. Este material se utiliza para contener muestras de líquidos o sólidos, en pequeñas cantidades.
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También pueden ser usados para
llevar a cabo reacciones químicas en pequeña escala. Esto incluye la exposición
del contenedor a ciertas temperaturas.
Luna de reloj
Es una lámina elaborada en vidrio. Su forma es circular. En los laboratorios se usa con frecuencia para la evaporación de líquidos, para establecer el peso de los sólidos o como cubierta de vasos precipitados. También se usa para la contención de sustancias, en parte, corrosivas.
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Mechero de alcohol
Se trata de una fuente de calor, aunque su intensidad es baja. Este funciona con alcohol etílico. Para mantener la seguridad de los laboratoristas, la entrada de oxígeno se cubre con una pieza para sofocar el fuego. Son usados con frecuencia en los laboratorios para hacer combustión.
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Crisol
Se trata de un envase elaborado en porcelana y que tiene la capacidad de soportar elementos a temperaturas muy altas.
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Cápsula
Elaboradas en porcelana, las
cápsulas son pequeños contenedores, de forma semiesférico, que tienen un
pequeño pico en un costado. Normalmente se utiliza en la evaporación del exceso
de solvente en una muestra.
Estos recipientes de porcelana
poseen diferentes tamaños y formas, además sus capacidades van desde los 10 ml
hasta los 100 ml.
La pipeta Pasteur, también conocida como gotero o goteros de ojos, es una herramienta de manipulación de líquidos de laboratorio que se utiliza para transferir pequeñas cantidades de líquidos.
Las pipetas Pasteur son tradicionalmente hechas de vidrio, aunque hoy en día las Pipetas Pasteur de plástico son comunes en los laboratorios de todo el mundo.
Las pipetas Pasteur son
esencialmente tubos de vidrio o plástico que se afilan a un punto de abertura
estrecho en el extremo inferior y están equipados con un bulbo de plástico o
caucho en el extremo superior.
La combinación de una pipeta de
vidrio Pasteur y una pera de goma también puede ser conocida como’pipeta de
tetina’.
¿Para qué sirve la pipeta Pasteur?
La pipeta Pasteur está diseñada
para transferir pequeñas cantidades de líquido de un recipiente a otro. Tiene
un volumen fijo de 10 ml.
Pipeta Pasteur plástica
<
Las pipetas de plástico se
recomiendan cuando es importante evitar la posibilidad de fragmentos de vidrio,
como en el caso de los bloques incrustados, con el peligro de dañar un cuchillo
de diamante.
Las pipetas Pasteur de plástico
(o pipetas de transferencia) tienen sus tallos y bulbos en forma de una sola
pieza de plástico.
Pipeta de laboratorio
La pipeta de laboratorio por lo
general se utiliza en biología, medicina y química para llevar a cabo el
transporte de un volumen medido de líquido, con frecuencia como un dispensario
de medios.
Pipeta graduada
Se trata de un tubo recto, que
puede ser de plástico o vidrio, que presenta estrechez en uno de sus extremos y
se llama punto cónica. En el extremo opuesto tiene una boquilla. Estas pipetas
se encuentran calibradas en divisiones pequeñas, de esta manera es posible
medir cantidades diferentes de líquido en unidades que se encuentran entre 0,1
y25 ml.
Se caracteriza por tener un
cuello ancho, condición que lo hace menos preciso que la pipeta volumétrica. Por
esta razón, son usadas cuando la precisión no necesariamente debe ser muy alta,
al momento de tomar un volumen de soluciones.
Son requeridas especialmente cuando en los laboratorios se debe transferir o medir el volumen de una cantidad de líquidos de un contenedor a otro.
Tipos de pipetas
Existen pipetas que carecen de
gran precisión, por eso, se utilizan para mayormente para transferir líquidos,
por el contrario, hay otras que son excesivamente precisas y sirven para medir
el volumen de líquido.
Pipetas volumétricas
Cuando es necesario transferir un
volumen determinado de líquido, se utiliza la pipeta volumétrica. La capacidad
de este tipo de pipeta se encuentre entre 1 y 100 ml. Se caracterizan por su
forma de rodillo, son muy delgados en los extremos y en el centro poseen una
protuberancia de mayor grosor.
Por lo general se usan cuando la precisión
de la medida es determinante para algún registro.
Pipetas de medición
Este tipo de pipetas tienen forma
cónica en su extremo, son tubos rectos. A lo largo del tubo se puede apreciar
las marcas de hachís que permiten la medición de varias cantidades de líquido
con una pipeta.
Este tipo de pipetas usualmente
pueden medir un volumen entre 0.1 mL. y 25 mL. A pesar de la capacidad que
tienen para medir varias cantidades de líquido al mismo tiempo, es cuestionable
su precisión por las fallas que poseen en el diámetro del tubo. En ese sentido,
las pipetas volumétricas los aventajan.
Pipetas Mohr y Serológicas
Las pipetas Mohr y Serológicas
son una subdivisión de las pipetas de medición. La diferencia se aprecia en la
marca hash. En las pipetas Mohr estas marcas culminan antes de la punta de la
pipeta, entre tanto, en las Serológicas, continúan hasta las puntas.
Entre las pipetas serológicas también
se encuentran las de soplado. Este tipo de pipeta posee una abertura en la
parte superior que asemeja a una pajita. Esto para que el laboratorista
sostenga con el pulgar la parte superior y así crear el vacío y sellar el
líquido de en la pipeta.
Otra de las ventajas de las
pipetas de soplado es que permiten soplar en el extremo donde se encuentra la
abertura, para conducir los últimos trozos de líquido que pudieran quedar en el
recipiente receptor, lo que incrementa la precisión.
Una de las características
resaltantes de las pipetas sopladas es que están evidentemente marcadas con una
banda esmerilada, o dos anillos delgados, alrededor del cuello.
No se debe confundir la condición de color del fabricante, con las marcas que puede tener la pipeta de soplado. Aunque es posible usar las pipetas de soplado tal y como se mencionó, podría ser peligroso llevarlo a cabo con una pipeta cuya marcación no esté lo suficientemente clara como sucede con la de soplado.
Pipeta Pasteur cuidados
Las pipetas Pasteur son
tradicionalmente uno de los artículos de cristalería más abusados e
incomprendidos en los laboratorios de los estudiantes. El objetivo de esta
sección es enseñarle a manejar correctamente las pipetas Pasteur.
Eliminación y reutilización de pipetas
El vidrio en una pipeta Pasteur cuesta sólo 5 centavos. Entonces, ¿por qué no usarlo y tirarlo a la basura? En primer lugar, siempre es mejor reutilizar algo si es posible, para ayudar a preservar nuestros recursos y el medio ambiente. ¿Por qué hacer que alguien haga otro si el que tú tienes está perfectamente bien, sólo un poco sucio? ¿Por qué añadir basura a los vertederos si es evitable?
En segundo lugar, la cristalería «sucia» en un laboratorio de química no sólo es «sucia», sino también un residuo peligroso. La «suciedad» que contiene es una sustancia química, y casi con toda seguridad una sustancia química peligrosa.
Legalmente y moralmente no se
pueden colocar residuos peligrosos en el vertedero de la ciudad, que es donde
termina el contenido del cubo de basura.
Para evitar esto, debe limpiar y
reutilizar sus pipetas Pasteur cuando sea posible. Hágalo inmediatamente, antes
de que el producto químico se seque en la pipeta y sea imposible de limpiar.
Si la pipeta sólo se ha utilizado
para un disolvente (hexanos puros, éter, etanol, etc.), simplemente déjela
secar.
Si se ha utilizado para una
solución de un compuesto sólido en un disolvente, o para un ácido acuoso o una
base, enjuáguelo con la cantidad mínima necesaria para eliminar la mayor parte
de la sustancia química -utilice agua o acetona- en el recipiente de desechos
apropiado y, a continuación, enjuáguelo completamente con agua corriente.
Póngalo en el cajón de su
laboratorio y estará listo para usar en su próxima reunión de laboratorio.
Si los pasos anteriores no lo limpian, o si está roto, coloque la pipeta Pasteur en el contenedor de residuos peligrosos de cristalería roto.
Técnica de pipeteado adecuada
Las pipetas Pasteur deben
utilizarse en posición vertical o casi vertical. La bombilla va arriba, la
punta de la pipeta apunta hacia abajo.
Nunca sostenga una pipeta llena
boca abajo u horizontalmente. Si lo sostienes así, el líquido entra en la
bombilla, lo que significa:
La bombilla está sucia y no debe volver a
utilizarse, lo que significa que se desperdician 39 centavos.
Si está sucio pero se deja en uso, se decolorará
rápidamente, se agrietará, secará y simplemente se arruinará.
Si una bombilla sucia se utiliza de nuevo,
cualquier producto químico que quede en ella del uso anterior se mezclará con
el nuevo disolvente, contaminando el nuevo disolvente.
Si una bombilla mal usada está saturada de disolvente
y se deja por ahí, otro estudiante podría recogerla sin sospechar que es un
guante, y recibir una sustancia química peligrosa en todas sus manos.
Si incluso una bombilla limpia entra en contacto
con cualquier disolvente, el disolvente lixiviará los compuestos presentes de
forma natural en la bombilla de goma, lo que contaminará su disolvente y, por
lo tanto, su reacción.
Partes de la pipeta
Las partes básicas de una pipeta
son:
Pulsador, botón de ajuste de gran
volumen, botón de expulsión de puntas, indicador de volumen, expulsor de
puntas, eje, punta desechable.
Pipeta Pasteur precio
De acuerdo con el tipo de pipeta,
los precios pueden variar de unos 7 USD hasta alcanzar los 100 USD sin contar
los gastos de envío, en caso de adquirirlos a través de un portal web.
Antes de definir el pH metro es importante saber que el pH es un parámetro medible entre los valores de 0 y 14, siempre que la concentración de la solución no supere 1M. Las soluciones con un pH<7 son ácidas, mientras que las que tienen un pH>7 son alcalinas.
Un medidor de pH es un aparato que se usa para medir los cambios que se producen en la actividad de los iones de hidrógeno en solución.
¿Qué es el pH metro y cómo funciona?
El pH metro es un dispositivo electrónico compuesto por una sonda de medición especial (un electrodo de vidrio o, en casos especiales, un transistor de efecto de campo selectivo de iones (ISFET)), conectado a un medidor electrónico que muestra la lectura del pH decimal.
El medidor de pH debe calibrarse antes de usarlo contra soluciones reguladoras de la actividad de iones de hidrógeno conocidos.
¿Cómo funciona el electrodo de vidrio?
El
electrodo de vidrio consta básicamente de cuatro componentes principales, una
membrana de vidrio, una solución amortiguadora interna, un alambre de
referencia y el vástago de vidrio.
<
El
electrodo de vidrio de pH trabaja con dos electrodos de referencia, una
referencia dentro del vidrio y una referencia que está en contacto con la
solución fuera del vidrio.
El pH
mide la diferencia de milivoltios en el sistema de electrodos de pH. Se forma
una capa lixiviada a ambos lados de la membrana de vidrio de pH.
La
diferencia de potencial entre las capas interior y exterior se denomina
potencial límite de fase y es la diferencia potencial de mili-voltios que es la
señal de pH.
Para
obtener los mejores resultados, se instala una célula líquida simétrica a ambos
lados de la membrana de vidrio.
Para
configurar la célula simétrica, la solución de relleno interno en el vidrio y
la solución de relleno de referencia son similares en su composición.
La simetría es importante para que las curvas de temperatura de las dos soluciones sean cercanas, cancelando así el efecto de temperatura de cada una de ellas.
¿Qué mide el pH?
El
valor del pH de una sustancia depende de la relación entre las concentraciones
de iones de hidrógeno[H+] e iones de hidroxilo[OH-].
La información
que se obtiene a través de medidor de pH refleja el grado de actividad de
determinado ácido en términos de actividad de iones de hidrógeno.
El
material es ácido cuando la concentración de H+ es superior que OH-, en otras
palabras, la medición de pH es menor que 7.
En
caso contrario, cuando la medición refleja que OH- es mayor que H+, se
considera que el material es básico y el valor de pH supera a 7.
Es
posible que las cantidades de iones H+ y OH sean iguales, en ese sentido el
material es neutro con un pH de 7.
Los ácidos y las bases tienen iones libres de hidrógeno e hidroxilo, respectivamente. La relación entre los iones de hidrógeno y los iones de hidroxilo en una solución dada es constante para un conjunto dado de condiciones, una puede determinarse conociendo a la otra.
¿Qué significa «ph»?
El
término pH proviene de «p», que es el símbolo matemático del
logaritmo negativo, y «H», que es el símbolo químico del Hidrógeno.
Tipos de medidores de pH
Hay
dos tipos comunes de medidores de pH que son para medir el pH del suelo y para
medir el pH del agua. No todas estas dos herramientas se utilizan en el
laboratorio.
Hay
un medidor de pH que se puede llevar a cualquier parte o llamar un medidor de
pH portátil para facilitar el trabajo humano en la medición del pH en un lugar
lejos de la civilización o la medición del pH en un momento determinado.
Los diferentes tipos de medidores de pH: medidor de pH del suelo y medidor de pH del agua son los siguientes.
1. pH-metro del suelo
El
pH-metro se utiliza para conocer la concentración de pH en el suelo a una
cierta profundidad. Además, el pH-metro del suelo también puede leer la
exposición a la luz solar y la humedad del suelo medido. Los tipos de medidores
de pH se explican a continuación:
Medidor de pH del suelo para fertilidad KS-05
El
medidor de pH KS-05 puede ayudarnos a medir el pH, la concentración de humedad
y la concentración de agua en el suelo.
La
debilidad de esta herramienta es que tiene un modelo analógico, por lo que la
calibración debe realizarse con bastante frecuencia.
pH-metro AMAST ETP-111
Medidor
de pH La herramienta AMAST ETP-111 se utiliza para medir el pH del suelo en la
agricultura. Esta herramienta tiene un metal de hierro con una cúpula en su
extremo que se utiliza como un lector de pH y se ve en los análogos que se
encuentran en el dispositivo.
pH-metro 3-1
El
medidor de pH 3-1 es un medidor de pH que puede medir el pH, la humedad y los
niveles de luz. Cómo usar el pH-metro del suelo es lo suficientemente práctico
porque es capaz de leer 3 cosas que son lo suficientemente importantes como
para que la tierra sea utilizada por los seres humanos, como la agricultura.
2. Medidor de pH del agua
Este
se utiliza para medir el pH del agua. En general, existen dos tipos de
medidores de pH estos son: la bolsa de medidores de pH y el laboratorio de
medidores de pH.
Aunque tienen la misma función, pero ambas difieren ligeramente en la forma en que lo leemos.
Los
diferentes tipos de medidores de pH:
pH-metro KL-03
El
medidor de pH KL-03 es un medidor de pH que se puede llevar a cualquier parte.
Este tipo de medidor de pH se puede transportar fácilmente y puede medir el pH
directamente en una bebida dentro del vaso.
Por
ejemplo, podemos medir la acidez de la leche que se ha colocado a temperatura
ambiente en un plazo de 4 días. El sabor agrio se debe a la descomposición de
la lactosa en ácido láctico.
pH-metro pH 105
El
pH-metro pH 105 es un tipo de pH que se puede utilizar fuera de la habitación.
Este medidor de pH puede medir el agua del grifo, el agua de lluvia y los
manantiales.
Esta
herramienta no se puede utilizar a altas temperaturas y no puede medir una
solución que tenga una solución de alta viscosidad / concentración espesa.
Por
lo tanto, esta herramienta es más adecuada para medir agua que tiene una
viscosidad de aproximadamente 1 mPa.s.
PH-metro de laboratorio
El
medidor de pH de laboratorio puede medir el pH del agua junto con su
conductividad. La conductividad es la capacidad del agua para conducir la
electricidad con la unidad llamada S (siemens). Todos los tipos de agua
definitivamente tienen conductividad, aunque es una cantidad muy pequeña de
conductividad. En teoría, el agua aquademin, que es agua pura, tiene un valor
de 0,0054 uS.
Si
utilizamos la herramienta de medición durante mucho tiempo, por supuesto más
tarde la herramienta perderá su capacidad de medir bien.
Por
lo tanto, todas estas herramientas requieren calibración. El objetivo de la
calibración es mejorar y mantener la precisión del dispositivo para detectar
los valores de pH.
Cada
herramienta tiene un periodo de tiempo diferente para su periodo de
calibración. Lea también sobre el análisis químico del agua de mar
Todo
depende de la empresa que creó la herramienta y también de la duración de su
uso. Eso es todo tipo de medidores de pH y sus funciones.
Los términos Autoclave y Esterilizador a vapor son esencialmente sinónimos y a menudo se usan indistintamente. El término «autoclave» se utiliza con mayor frecuencia en entornos de laboratorio, mientras que el término «esterilizador» se utiliza con mayor frecuencia en hospitales o entornos farmacéuticos. Mira aquí todo lo relacionado con el autoclave de laboratorio.
Tipos de autoclave de laboratorio
La esterilización por gravedad
o por pre vacío (prevac) Por lo general, conforman los métodos por los cuales
los autoclave llevan a cabo su proceso de esterilización. En algunos casos es
posible la combinación de ambos métodos.
Aunque ambos tipos de autoclaves esterilizan por medio de vapor de alta temperatura y utilizan la presión como un medio para permitir que el vapor desplace el aire ambiental en la cámara para penetrar en los medios de esterilización, los medios por los cuales ocurren estos mecanismos difieren y, por lo tanto, son más propicios para ciertos tipos de medios que para otros.
Autoclave de laboratorio por gravedad
Este tipo de autoclave también
recibe el nombre de autoclave por desplazamiento. Por sus características se
considera que es el más adecuado y básico para llevar a cabo la esterilización de
los instrumentos de laboratorio más comunes, entre los que se encuentran los
elaborados con acero y cristalería, también se incluyen los residuos
biopeligrosos.
La autoclave inducida por
gravedad consiste en bombear vapor a la cámara del autoclave, lo que desplaza
el aire ambiente y lo fuerza a salir de las válvulas de escape, de modo que el
vapor restante pueda esterilizar el contenido.
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Su diseño redunda en la
ventaja que ofrece en su manejo. Este tipo de autoclave se presenta más
confiable y asequible debido a la falta de dependencia de mecanismos
periféricos para desplazar el aire ambiente con vapor.
El vapor penetra en su
interior sin mayor dificultad, debido a que tanto los materiales, casi en su
totalidad, como los artículos que van a ser esterilizados, poseen un diseño
simple. Esto permite el desplazamiento del vapor de manera amplia para una
mejor esterilización.
Esta es una de las principales
razones por las que los autoclaves que con mayor frecuencia se encuentran en el
mercado son los de gravedad. Son ampliamente recomendados en la mayoría de sus
usos.
Autoclave de laboratorio al vacío
Por su parte, el autoclave de
pre-vacío o esterilización, como también se le conoce, es el indicado cuando el
aire no puede ser removido de los materiales de esterilización, con facilidad.
Entre estos materiales se
incluye artículos de considerables dimensiones o porosos, como sucede con las
jaulas para animales, las camas que deben ser esterilizadas y los kits que se
utilizan en cirugía y vienen envueltos.
Gracias a la función de vacío
de estos autoclaves es posible llevara a cabo una esterilización profunda del contenido,
toda vez que elimina totalmente el aire del ambiente.
Esto permite que el vapor que
se encuentra a muy altas temperaturas, penetre esterilizando zonas que, por lo
general, se encontrarían ocupadas por el aire ambiente. Su eficiencia se puede
incrementar al esterilizar determinados artículos con áreas de difícil acceso.
Autoclave de laboratorio definición
Una cámara para esterilizar
con vapor a presión. El autoclave original era esencialmente una olla a presión
en la que el vapor apretaba la tapa.
Tiempos de esterilización en autoclave de laboratorio
Para ser eficaz, el autoclave
debe alcanzar y mantener una temperatura de 121° C durante al menos 30 minutos
utilizando vapor saturado a una presión de al menos 15 psi. Puede ser necesario
aumentar el tiempo de ciclo dependiendo de la composición y el volumen de la
carga.
La velocidad de escape está
íntimamente relacionada con la naturaleza de la carga. El ciclo de escape
rápido es el más adecuado para tratar el material seco.
Entre tanto, los desechos
bilógicos y los líquidos necesitan de un escape más lento, de esta manera, se
evita volver a hervir los líquidos sobrecalentados.
Material
Ciclo de líquidos
(Escape lento)
Recomendado para:
Uso con recipientes de vidrio
con cierres ventilados; sólo /3 de su capacidad.
Medios líquidos
Líquidos no inflamables
Soluciones acuosas
Residuos biológicos líquidos
Material
Sólidos o Ciclo seco
(Escape rápido)
Recomendado para:
Cristalería: vacía e invertidasin cierres herméticos o impermeables
Artículos duros secos, ya sea
desenvueltos o envueltos en un envoltorio poroso
Artículos de metal con partes
porosas
Otros materiales porosos
Material
Productos envasados o ciclo de pre-vacío
(Limpio: Escape rápido
Sucio: Escape lento)
Recomendado para:
Artículos de vidrio que deben
ser esterilizados en posición vertical y/o que pueden atrapar aire.
Artículos secos envueltos que
pueden atrapar el aire
Cajas de puntas de pipeta
Descontaminación de objetos
punzantes
(en contenedores de
recolección)
Descontaminación de residuos
de riesgo biológico, en bolsas de autoclave; puede ser húmeda o seca.
Autoclave industrial
Se trata de un recipiente a
presión que se caliente con una puerta de presión rápida, esta usa presiones
altas para poder procesar y curar materiales.
Con el calor y la alta presión,
el autoclave industrial tiene la capacidad de curar productos y desinfectar
dispositivos, instrumentos y máquinas.
En ocasiones, en el proceso, también
pueden incorporar el vacío. Con la industria, la función de este aparato
cambia. En laboratorios y hospitales estos equipos son usados para desinfectar
y esterilizar los equipos.
Entre tanto, en la industria
aeroespacial, por ejemplo, estos aparatos se usan para curar las diversas
partes de los aviones. A través de la puerta rápida es posible un acceso al
recipiente, esto facilita tanto la entrada como la salida del producto.
A pesar de que el uso final de autoclave puede variar, el concepto de su funcionamiento es el mismo. Se fabrican varios tipos de autoclaves, como los autoclaves de adhesión/vulcanización de caucho, los autoclaves para compuestos y muchos otros tipos de autoclaves industriales.
Manejo del autoclave
El autoclave debe utilizar
altas temperaturas de vapor (alrededor de 121 °C) además de presiones elevadas
(unas 15 psi), por media hora (30 minutos) aproximadamente, para poder alcanzar
la descontaminación deseada. De esta manera, elimina los microorganismos deshidratando
la célula en condiciones severas.
La naturaleza de la carga
incide en la velocidad de escape. Es posible alcanzar ciclos de escape rápido
cuando se refiere a materiales sólidos secos.
Las cintas indicadoras se
utilizan a menudo para validar la eficacia del autoclave.
PROCEDIMIENTO
1. Use equipo de protección
personal adecuado (PPE)
Las condiciones de operación
de alta presión y temperatura que se encuentran durante el autoclave presentan
riesgos potenciales de quemaduras por calor o explosión.
Para contar con el EPP
adecuado se debe poseer gafas de seguridad, bata de laboratorio, guantes que
resistan las altas temperaturas y calzado cerrado.
Se debe contar con todo
el material mencionado al momento de
cargar y descargar materiales del autoclave. Cuando se trate de muestras
líquidas, use un delantal y un protector facial como EPP adicional.
Preparación de los materiales a cargar
Se procede a
separar los materiales que son compatibles y los que no con el autoclave.
En ese sentido, no
todos los materiales son compatibles con el autoclave, a pesar de que se trata
de un método ampliamente usado, por lo económico, para la descontaminación.
Por lo regular, los materiales
que se pueden evaporar o se pueden fundir con el vapor a alta presión no son
compatibles con el autoclave.
Los disolventes orgánicos, el
polietileno, los metales y los plásticos que generan poca resistencia al calor
y hasta el acero inoxidable están incluidos dentro de esto materiales no
compatibles. Nunca autoclave productos
químicos inflamables, corrosivos, tóxicos, reactivos o radioactivos.
Por otra parte, los materiales que si son compatible son: el vidrio borosicalato Pyrex, guantes, puntas de pipetas, acero inoxidable, papel (cuando se coloca dentro de las bolsas del autoclave) y soluciones de medios.
Material de empaque
Después de identificar los
materiales compatibles con el autoclave, también es importante el embalaje
adecuado, ya que garantiza la seguridad y la eficacia del autoclave.
Estos son los principios
básicos de los materiales de embalaje:
Utilice siempre un recipiente
secundario de polipropileno o acero inoxidable.
Se debe llenar la ampolla,
cerca de ½, se aflojan las tapas o use ventilación para muestras líquidas.
Nunca llene los recipientes de
más de 2/3 de su capacidad con la tapa completamente apretada.
Debe examinar el recipiente de
vidrio para evitar que no se posea grietas. Si se identifican grietas, deseche
los objetos de vidrio en un recipiente adecuado. Nunca autoclave un recipiente
de vidrio roto conocido.
Utilice siempre bolsas
compatibles con autoclaves para envasar los residuos.
En las bolsas debe haber
indicadores. La posibilidad de abrirse en los extremos antes de cargar, es de
mucha ayuda, de esta manera posibilita que el vapor ingrese.
Nunca sobrecargue las bolsas o
el contenedor para permitir un flujo de vapor suficiente para una
esterilización completa. Deje espacio entre los artículos.
No mezcle materiales
incompatibles.
Evite, a toda costa, colocar
objetos afilados en la bolsa de basura.
Cargar material
Revise el interior del
autoclave para asegurarse de que no quede ningún peligro potencial del usuario
anterior.
Antes de cargar los
materiales, debe limpiar los desagües de esta manera es posible la correcta
circulación.
Debe procurar que las bolsas
no entren en contacto con las paredes internas del autoclave, de esta manera se
evita que se derritan.
Para los líquidos y los
materiales secos, es necesario diferentes ciclos y se deben esterilizar en
autoclave por separado.
Debe cerrar fijamente la puerta.
Funcionamiento del autoclave de laboratorio
La operación del autoclave
debe estar en manos de personal calificado para ello. Las veces que sea
necesario, consulte al manual del equipo pues, los protocolos de operación, con
regularidad difieren según el tipo de autoclave.
Luego de cerrar correctamente
la puerta del autoclave, establezca la temperatura a 121 °C y conserve una
presión de al menos 15 psi.
Se beben tomar en cuenta los siguientes factores para poder ajustar el tiempo en el ciclo del autoclave:
Las consideraciones de equipo
de manual de fabricante.
El material cargado en el
interior del autoclave: líquido o seco.
La cantidad de estos
materiales.
Forma y tamaño del contenedor
utilizado.
Conductividad térmica del
envase y de los materiales.
Finalidad de la
descontaminación.
Descarga de material(es) esterilizado(s) en autoclave
Use el equipo de protección
personal adecuado, tal como se describe anteriormente.
En primer lugar, debe
asegurarse que tanto la presión como la temperatura se encuentren en un rango
seguro.
Para liberar los restos de
vapor dentro del autoclave, debe pararse detrás de la puerta y abrirla con
cuidado.
Debe dejar reposar el material
que se encuentra dentro del autoclave por al menos 10 minutos, así se libera el
vapor o aire caliente que puede estar atrapado dentro del material.
No agite ningún material
líquido mientras lo saca del autoclave. Las veces que sea necesario, debe
colocar una etiqueta sobre el material que la identifique como caliente y así
evitar quemaduras por calor en una persona que desconozca que el material ha
sido autoclavado recientemente.
Antes de transportar el
material dentro o fuera del laboratorio, es aconsejable esperar a que el
material se enfrié a temperatura ambiente.
Para llevar a cabo una
adecuada transportación, debe asegurarse de usar una contención adecuada.
Los materiales y las condiciones del autoclave deben quedar registrados en detalle en el registro de usuario.
¿Cuánto tiempo se esteriliza en autoclave de laboratorio?
Muchos autoclaves se utilizan
para esterilizar equipos y suministros sometiéndolos a vapor saturado
presurizado a 121 °C (249 °F) durante unos 15-20 minutos, dependiendo del
tamaño de la carga y del contenido
Ciclos estándar de autoclave para materiales de uso común
Lavandería: 121°C durante 30
minutos con 15 minutos de pre-vacío de 27 pulgadas de mercurio (pulg. Hg.).
Cristalería y basura: 121°C
durante 1 hora con 15 minutos de pre-vacío de 27 pulgadas Hg.
Líquidos: 121°C durante 1 hora
por cada galón.
¿Qué es la esterilización por Tindalización?
La Tindalización consiste
esencialmente en calentar la sustancia hasta el punto de ebullición (o sólo un
poco por debajo del punto de ebullición) y mantenerla allí durante 15 minutos,
tres días seguidos.
Después de cada calentamiento, el
período de descanso permitirá que las esporas que han sobrevivido germinen en
células bacterianas; estas células serán destruidas por el calentamiento del
día siguiente.
Durante los períodos de descanso,
la sustancia que se está esterilizando se mantiene en un ambiente húmedo a una
temperatura ambiente cálida, lo que favorece la germinación de las esporas.
Cuando el ambiente es favorable
para las bacterias, favorece la germinación de las células de las esporas, y
las esporas no se forman a partir de las células de este ambiente.
El proceso de Tindalización es
usualmente efectivo en la práctica. Pero no se considera totalmente confiable –
algunas esporas pueden sobrevivir y luego germinar y multiplicarse.
No se utiliza a menudo hoy en día, pero se utiliza para esterilizar algunas cosas que no pueden soportar el calentamiento a presión, como las semillas de plantas.
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