Agitador magnético

El agitador magnético tiene varias aplicaciones y se utiliza activamente en muchas industrias diferentes. La tarea principal que realiza es agitar o mezclar muestras de fluidos. Esto es muy útil en la industria alimentaria y química, además de que también se utiliza en otras industrias como la biotecnología.

¿Qué función tiene el agitador?

Un agitador magnético es un dispositivo ampliamente utilizado en laboratorios y consiste en un imán giratorio o un electroimán estacionario que crea un campo magnético giratorio. Este dispositivo se utiliza para hacer una barra de agitación, sumergir en un líquido, girar rápidamente, o agitar o mezclar una solución, por ejemplo. Un sistema de agitación magnética generalmente incluye un sistema de calentamiento acoplado para calentar el líquido.

¿Qué es un agitador magnético de laboratorio?

Un agitador magnético es un equipo utilizado para crear un campo magnético giratorio. El agitador magnético está diseñado de tal manera que hay una barra magnética pequeña y un soporte o placa que contiene el imán giratorio.

En general, la barra magnética está recubierta de plástico y la placa contiene un imán giratorio. Es posible crear un campo magnético giratorio con la ayuda de un imán giratorio.

Agitador magnético casero

Para construir un agitador magnético casero se necesitan los siguientes materiales:

  • Ventilador del ordenador
  • Imanes pequeños: http://www.dealextreme.com/p/super-strong-rare-earth-re-magnets-8mm-20-pack-4248 (envío gratuito)
  • Plástico moldeable (polimorfo, instamorfo, shapelock)
  • Lexan
  • Baterías
  • Superpegamento (cianoacrilato)

1 Unir los imanes con el ventilador

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Antes de comenzar debe limpiar cuidadosamente el ventilador. Tenga en consideración el cable rojo y azul que normalmente traen los ventiladores. En caso de haber un tercer cable, si es de color blanco no le debe prestar atención.

Utilice la pega para fijar los imanes en los lados opuestos del cabezal del ventilador. Estos deben estar bien fijos. Las polaridades de los imanes deben estar opuestas con la cara hacia arriba.

2 Los espaciadores

En este paso usted requerirá de separadores previo a la colocación de una superficie plana en la parte superior.

Es posible utilizar casi cualquier material para que haga las veces de espaciadores, en ese sentido, puede emplear monedas, por ejemplo.

También pude utilizar algo de plexiglás que tenga a disposición para colocarlo en los bordes del ventilador. Lo importante es que los espaciadores superen el perfil del ventilador con los imanes.

3 Colocación de la plataforma

Para la colocación de la plataforma será necesario cortar un pequeño trozo de plexiglás que irá encima del ventilador.

A continuación, utilice algún material fino (delgado), que sea impermeable, por su puesto, para adherirlo a los espaciadores.

4 Elaboración de la barra de agitación

Para la elaboración de la barra de agitación se lleva a cabo mediante el encaje de imanes en el plástico moldeable. El procedimiento es simple,  tan solo debe colocar el plástico en un envase que contenga agua a altas temperaturas hasta que se aclare.

Tome dos imanes, con las polaridades opuestas, colóquelos encima del plástico y envuelva con mayor cantidad de cinta adhesiva hasta cubrir en su totalidad los imanes.

Una vez realizado esto, debe procurar que la barra tenga forma cilíndrica, con los imanes de disco  esto se logra redondeando los bordes con los imanes de disco empotrados dentro.

5 Encendido del agitador magnético

Con cualquier fuente de tensión se puede proceder al encendido del agitador magnético.

Pero hay que estar pendientes de que los imanes pueden acoplarse, sin problemas, desde el ventilador a la barra de agitación.

La barra de agitación no trabajará como se espera en caso de que la velocidad sea muy alta. Para comenzar, es recomendable utilizar baterías de 9V. Con un voltaje bajo es posible tener los resultados esperados.

6 Use el agitador magnético

Para llevar a cabo tareas con el agitador magnético casero, utilice un envase cuyas dimensiones permitan que la barra de agitación magnética comience a girar.

Debido a lo pequeño del dispositivo, es posible utilizar un escritorio para colocarlo, de esta manera, podrá remover bebidas frías.

No es recomendable utilizar líquidos calientes pues, esto produce que la barra de agitacion se suavice y pierde la forma en consecuencia.

Para mejorar su desempeño, puede utilizar cerámica para incrustar imanes en ella y esmaltar la barra de agitación.

Agitador magnético con calentamiento

Dependiendo de la aplicación, puede configurar su agitador magnético con placas calientes para calentar sus muestras a medida que se agitan. Con el uso de placas calentadoras, puede mezclar una amplia variedad de muestras para diferentes aplicaciones.

Algunos agitadores magnéticos tienen una función de calentamiento que puede calentar el matraz desde abajo, mientras que otros tienen una función de velocidad variable. En líquidos muy viscosos, la barra de agitación sólo puede ser eficaz girando a las velocidades más lentas, mientras que cuando se hace una solución a partir de cristales pesados (CuSO4, por ejemplo), una velocidad rápida suele ayudar a disolver el sólido más rápidamente.

Funciones y usos de un agitador magnético:

  • Los agitadores magnéticos también se conocen como placas de agitación magnética y se utilizan muy a menudo para experimentos en química y biología.
  • Son muy útiles cuando se necesita mezclar componentes, ya sean sólidos o líquidos y obtener una mezcla líquida homogénea. Algunas de las muestras comunes incluyen medios de crecimiento bacteriano, así como soluciones tampón.
  • La función principal de un agitador es agitar el líquido para acelerar las reacciones o mejorar las mezclas. Un agitador magnético se utiliza a menudo con placas calientes.

Tipos de agitadores magnéticos:

Hay varios tipos de agitadores magnéticos disponibles y todo depende de su selección de tamaño, aplicación y configuración. A continuación se enumeran los diferentes tipos:

Mini-agitador magnético:

Como su nombre indica, el mini-agitador magnético es un agitador de tamaño compacto que ocupa muy poco espacio y permite a los usuarios regular la velocidad con gran precisión con la ayuda de los controles proporcionados. Ha sido sabiamente diseñado para resistir a las sustancias químicas dañinas presentes en el entorno de un laboratorio. Además de que también consiste en un regulador de velocidad que asegura que el dispositivo nunca exceda la velocidad máxima.

Agitador magnético con temporizador:

Otra vez el nombre lo dice todo. Este es el tipo de agitador que tiene la capacidad de apagar automáticamente el motor después de la cantidad de tiempo establecida. La forma en que esto funciona es que utiliza un temporizador incorporado para apagar el agitador cuando el período de tiempo pre-seleccionado ha terminado. Además, la velocidad también se reduce automáticamente y la carga se elimina automáticamente.

Agitador magnético de alta resistencia:

Los agitadores magnéticos de alto rendimiento son fieles a su nombre. Tienen una mayor resistencia química y son muy duraderos, además de tener una gran capacidad de mezcla. Además disponen de un dispositivo de control electrónico interno que regula automáticamente la velocidad respecto a la carga. Por lo tanto, el agitador magnético de alta resistencia es un instrumento perfecto para su uso en un laboratorio o en un entorno de producción.

Agitador magnético alimentado por batería:

El agitador magnético alimentado por batería es muy útil cuando no hay toma de corriente. Su principal aplicación es en incubadoras. Consisten en patas de goma y su velocidad puede ser controlada con la ayuda de las perillas de control de velocidad suministradas. En general, las pilas alcalinas se pueden utilizar con estos dispositivos, aunque las pilas recargables deberían funcionar correctamente.

Agitador magnético de turbina de aire:

Si usted tiene la necesidad de agitar el líquido hasta un litro que el separador de turbina operado por aire es el equipo ideal. La mayor ventaja es que elimina los peligros asociados con las chispas de las fuentes eléctricas.

Importancia del agitador magnético en la preparación de mezclas

Una de las principales ventajas de un agitador magnético es que minimiza el riesgo de contaminación ya que sólo hay una barra magnética inerte que se coloca dentro de la muestra (fluido).

Además, también se puede limpiar fácilmente. Un agitador manual no es tan consistente como el magnético y el magnético es también crítico para la mezcla reproducible o la mezcla en una escala de tiempo larga. Por ejemplo, la diálisis de proteínas requiere una mezcla de muestras de varias horas o durante la noche y es sensible a la contaminación bacteriana.

Precio del agitador magnético

Es posible adquirir estos aparatos en línea. Los precios varían de acuerdo con el modelo, la marca y el tipo de agitador magnético que se necesite. Es posible encontrar agitadores magnéticos sumamente económicos a partir de 70 dólares. Algunos llegan a sobrepasar los 1000 dólares.

Para que posesa mayor información sobre el funcionamiento del agitador magnético, a continuación colocamos un vídeo para que enriquezcas tus conocimientos:

Centrífuga de laboratorio

Una centrífuga de laboratorio es un dispositivo de laboratorio es un aparato usado en los laboratorios de biología y química que consiste en la separación de fluidos y líquidos en función de la densidad.

Esta separación se lleva a cabo cuando el recipiente que contiene el líquido, gira a velocidades altas. De esta manera, la fuerza centrífuga lleva a los materiales más pesados hacia el exterior del envase.

🔬 ¿Qué es una centrífuga de laboratorio?

La centrífuga de laboratorio es una máquina cuya utilidad en los laboratorios consiste en separar los componentes de un líquido.

Las centrífugas de laboratorio son ampliamente utilizadas en hospitales u otras industrias donde se utilizan para extraer material suspendido de una variedad de medios. Esto se consigue mediante el principio de sedimentación, en el que la aceleración centrípeta produce sustancias más densas que se desplazan hacia la dirección radial.

🧪 Tubo de centrífuga de laboratorio función

Los tubos de centrífuga son tubos de muy resistentes elaborados en vidrio o plástico, fabricados con exactitud con la finalidad de que encajen perfectamente en las cavidades del rotor. Típicamente, la capacidad de los tubos varía de 10 ml a 100 ml. Se asemejan a tubos de ensayo en miniatura con puntas cónicas. El diseño de la conicidad varía dependiendo de los tipos de sólidos como biomoléculas, insolúbulos, etc., dentro de la muestra.

Usos

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Los tubos de centrifuga de vidrio son los más costosos, toda vez que pueden ser usados en casi la mayoría de los disolventes. Al igual que cualquier material de vidrio, los tubos de centrífuga se pueden limpiar y esterilizar.

Es menester el manejo de estos tubos con precaución, puesto que unos pequeños roces que produzcan las más mínimas roturas, pueden originar fallas por las fuerzas que deben resistir durante la carrera. Para protegerlos, se insertan tubos de vidrio en manguitos de goma blandos.

Los tubos de centrifuga elaborados con plásticos, poseen la misma resistencia y durabilidad de los hechos de vidrio, por sus bajos costos también se pueden considerar desechables.

No se necesita ningún cuidado adicional mientras se manipulan los tubos de centrífuga de plástico. Sin embargo, por lo general son más difíciles de limpiar a fondo.

Las muestras más grandes se centrifugan con botellas centrífugas, cuya capacidad oscila entre 250 y 1000 mililitros.

Estas botellas suelen estar hechas de plásticos a prueba de roturas como el polipropileno o el policarbonato, y para mayor seguridad se pueden utilizar cierres de sellado a prueba de fugas. Globe Scientific es un fabricante líder de tubos de centrífuga.

☘ Partes de una centrífuga de laboratorio

La centrífuga de laboratorio tiene tres componentes básicos:

  • Un rotor
  • Un eje de transmisión
  • Un motor

El rotor contiene los tubos, botellas o bolsas que contienen los líquidos a centrifugar. En el eje de accionamiento, que se conecta al motor, se pueden montar diferentes tipos y tamaños de rotor, intercambiables entre sí.

El motor proporciona la potencia para hacer girar el rotor.

Por lo general, un gabinete rodea y soporta estas partes, y también protege al operador en caso de que se rompa un tubo o cualquier parte metálica falle mientras la centrifugadora está en funcionamiento.

Los controles de operación y los indicadores de velocidad y tiempo están montados en el gabinete. La mayoría de las centrífugas tienen un sistema de frenos para detener el rotor poco después de terminar la marcha.

A diferencia de los frenos mecánicos de un coche, la acción de frenado es eléctrica, la corriente del motor simplemente se invierte. Muchas centrífugas también se refrigeran para evitar que las muestras biológicas delicadas se calienten.

Existen dos configuraciones de centrífugas: modelo de suelo y sobremesa. La diferencia entre ambos es básicamente de capacidad; sus principios de funcionamiento son los mismos.

👉 Historia de la centrífuga de laboratorio

La primera centrifugadora fue creada por Antonin Prandtl, propietario de un café alemán. Según una biografía escrita por la sobrina nieta de Prandtl, el diseño del dispositivo, que publicó en una revista politécnica, era para una máquina que trabajaba continuamente para separar la leche de su grasa.

Se sabe poco sobre Antonin o su diseño, pero probablemente fue creado a mediados del siglo XIX (posiblemente alrededor de 1850). Se sabe mucho más sobre el sobrino de Antonin, Ludwig, un ingeniero y simpatizante nazi que con el tiempo se convertiría en uno de los expertos mundiales en dinámica de fluidos.

El padre de Ludwig, el hermano de Antonin, finalmente se llevó la mayor parte del mérito del diseño de la primera centrifugadora al perfeccionar el sistema de separación suave y mostrarlo en la Exposición Mundial de Frankfurt de 1875.

En el laboratorio

La siguiente gran actualización del dispositivo, y la que trajo la centrífuga al laboratorio, fue inventada por el químico sueco Theodor Svedberg.

En su laboratorio, Svedberg estaba estudiando coloides, una sustancia que, en los términos más simples posibles, está compuesta de materia en un tipo de estado uniformemente dispersa dentro de la materia que está en otro tipo de estado.

(La crema batida, por ejemplo, es un coloide de gas y líquido.) Svedberg quería entender mejor los coloides (mucho más complejos que la crema batida) que estaba estudiando y por eso creó un dispositivo que separaría los coloides en sus partes individuales.

En 1924 su ultracentrífuga, como se le llamaba, fue construida para hacer girar sustancias con fuerzas de hasta 10^6 de gravedad.

Los hallazgos que surgieron de su uso de la centrífuga, de que las partículas se sedimentaban en función de su tamaño y peso, lo que podía utilizarse como método para medirlas, le valieron finalmente el Premio Nobel de Química de 1926.

Evolución

Durante las siguientes décadas, la centrífuga vio toda una serie de actualizaciones por parte de varios investigadores diferentes.

Un investigador utilizó aire comprimido para hacer que se moviera a altas velocidades. Otros se dieron cuenta de los pasos necesarios para usar el dispositivo para recolectar el sedimento que se separó después de que se completó la centrifugación.

Y un equipo descubrió cómo utilizarlo para filtrar los virus utilizando una aspiradora.

El siguiente gran paso adelante en el diseño de la centrífuga sería una innovación que, sin la cual, no tendríamos reactores nucleares o armas nucleares.

En los años cincuenta, a Gernot Zippe, un investigador alemán que vivía y trabajaba en un campo de prisioneros de guerra ruso, se le encargó la tarea de encontrar una forma de aislar el uranio-235.

El acceso al isótopo fue considerado un gran premio porque sus partículas podían ser fácilmente divididas para producir energía atómica.

Según una historia del New York Times sobre Zippe, él y un equipo de 60 investigadores se dieron cuenta de que para concentrar lo suficiente del U-235 necesitarían cientos o miles de ellos girando continuamente durante años.

Zippe se lo dijo al Times: “Todos se reían y decían: ‘Esto nunca funcionará'”. Yo era muy joven. No tenía ni idea de cómo hacerlo. Pero decidí hacer lo mejor que pude”.

Modernización

Después de varios años de trabajo, el equipo de científicos logró perfeccionar lo que más tarde se llamaría la centrífuga Zippe-Type. El dispositivo utiliza un campo magnético y calor para lograr la separación del U-235 del gas uranio.

Aunque a Zippe no se le permitió llevarse ninguna de sus notas cuando salió del campo soviético, finalmente se dirigió a los Estados Unidos, donde reconstruyó de memoria el diseño para el gobierno de los Estados Unidos.

Hoy en día, las centrífugas son controladas por microprocesadores. Algunos pueden ser utilizados bajo alta presión o súper refrigerados.

Y hay incluso una en la Estación Espacial Internacional, llamada NanoRacks Astrium Centrifuge, que simula la gravedad y microgravedad de la Tierra para diferentes experimentos. Los dispositivos son tan comunes y omnipresentes que incluso puede comprar uno en Amazon.

🧬 Tipos de centrífuga de laboratorio

Las centrífugas son soluciones prácticas para diversos niveles de ensayos clínicos y aplicaciones de investigación. Diferentes tipos de centrífugas de laboratorio realizan diferentes tipos de aplicaciones de centrifugación, tales como gradiente de sacarosa, diferencial, isopícnico y una variedad de otros tipos de procesos de centrifugación.

Los varios los factores que determinan el tipo de centrífuga que se va a usar, entre esos factores los más importantes son: procedimiento clínico y las dimensiones del laboratorio, entre otros.

Algunos de ellos pueden utilizarse para todas las aplicaciones de uso general, mientras que otros son muy específicos.

Centrífugas de diferentes tamaños

Los laboratorios utilizan principalmente dos tipos principales de centrífugas de laboratorio: las de mayor tamaño y las de menor tamaño.

Las centrifugadoras de mayor tamaño se conocen comúnmente como centrifugadoras propiamente dichas, mientras que las más pequeñas son microfugadoras o microcentrifugadoras.

En estos modelos se utilizan pequeños tubos de plástico que son capaces de contener pequeñas cantidades de líquidos de muestreo.

Modelos de sobremesa y de pie

Dependiendo del entorno de trabajo de sus laboratorios, puede optar por modelos de mesa o de pie de centrífugas de laboratorio.

Los modelos de sobremesa son más pequeños y fáciles de manejar. Suelen ser mucho más versátiles en la solución de centrifugación que proporcionan. Aunque son más adecuados para laboratorios con espacio limitado, ahora se utilizan en laboratorios de todos los tamaños.

Los modelos de pie son muy solicitados por los laboratorios con un espacio de trabajo limitado. Se utilizan para procedimientos científicos que requieren un gran volumen de procesamiento de muestras y centrifugación de grandes volúmenes de tubos estándar.

Modelos refrigerados para sustancias sensibles a la temperatura

Las centrífugas de laboratorio normales no funcionan bien para centrifugar muestras sensibles a la temperatura. Para ello se pueden utilizar centrífugas de laboratorio refrigeradas.

En estos modelos se incluyen sistemas de refrigeración interna, como condensadores y compresores, que ayudan a centrifugar las muestras a una temperatura preestablecida o por debajo de la temperatura ambiente.

Aunque todavía hay más modelos y tipos disponibles, sus funciones siguen siendo las mismas. Los diferentes tipos de centrífugas, en su totalidad, giran la sustancia alrededor de un ángulo fijo, entonces, separan el fluido de las sustancias sólidas aplicando la sedimentación como principio. Funcionan principalmente con el apoyo de un motor centralizado.

📌 Tipos de Centrífugas y sus Usos:

Existen cuatro tipos principales de centrífugas. Estas son:

1. Centrífugas de banco pequeño:

Se utilizan para recoger pequeñas cantidades de material que se sedimenta rápidamente como células de levadura, eritrocitos, etc. Tienen un campo centrífugo relativo máximo de 3000-7000 g.

2.Centrífugas refrigeradas de gran capacidad:

Disponen de cámara de rotor refrigerada y tienen capacidad para cambiar las cámaras de rotor para diferentes tamaños. Pueden llegar hasta un máximo de 6500 g y utilizarlos para sedimentar o recoger las sustancias que sedimentan rápidamente como los eritrocitos, las células de levadura, los núcleos y el cloroplasto.

3. Centrífugas refrigeradas de alta velocidad:

Pueden generar una velocidad de unos 60000 g y se utilizan para recoger microorganismos, restos celulares, orgánulos celulares más grandes y proteínas precipitadas por el sulfato de amonio.

4. Ultra Centrífugas:

a) Ultracentrífuga preparativa:

Puede producir una fuerza centrífuga relativa de unos 600.000 g y su cámara es refrigerada, sellada y evacuada. Se utiliza para la separación de macromoléculas/estudios cinéticos de unión de ligandos, separación de varias fracciones de lipoproteínas del plasma y desprotonización de fluidos fisiológicos para el análisis de aminoácidos.

b) Ultracentrífuga analítica:

Es capaz de operar a 500.000 g. Tres tipos de sistemas ópticos están disponibles en ultracentrífugas analíticas: un sistema de absorción de luz, y el sistema alternativo de Schlieren y el sistema interferométrico de Rayleigh, los cuales detectan cambios en el índice de refracción de la solución.

🔹 Como usar una centrífuga de laboratorio

Los laboratorios están llenos de equipos que nadie sabe instintivamente cómo usar. En lugar de abrir alegremente una centrífuga, tirar las muestras y presionar el botón “on”, es necesario conocer las reglas básicas de seguridad en el laboratorio. La centrífuga funciona a velocidades tan altas que un uso incorrecto puede crear un grave peligro.

Manual del usuario

Muchos fabricantes diferentes fabrican centrífugas. Cada uno es diferente y cada uno tiene instrucciones específicas de uso.

Su institución puede proporcionarle un protocolo operativo que usted debe seguir exactamente, pero si no tiene un protocolo, entonces debe seguir las instrucciones del fabricante.

Seguridad

Coloque la centrífuga en un lugar seguro. No debe estar en peligro de ser tirado de una mesa, o tirado por una persona que tropieza con un cordón suelto.

La centrifugadora también tiene que estar sobre una superficie plana y robusta para que la vibración que genera cuando está funcionando se mantenga al mínimo.

Si la máquina se tambalea excesivamente, apáguela inmediatamente en caso de que funcione mal o esté mal cargada.

Cargando

Equilibrar la carga. Si sólo tiene una muestra, por ejemplo, cargue otro tubo en el otro lado directamente enfrente de la muestra que tiene una carga equivalente.

Es importante equilibrarlo por masa, en lugar de simplemente por volumen, como recomiendan los consejos de uso de la centrífuga de la Universidad de Stanford.

Si la muestra es más densa que el agua, por ejemplo, tiene que compensar añadiendo más densidad o volumen al tubo de equilibrado.

Apertura y cierre

Asegúrese de que la tapa esté bien cerrada cuando termine de cargar la centrífuga. Además, nunca abra una centrífuga cuando esté en funcionamiento, ya que aunque la máquina se apague, la energía residual puede seguir girando las muestras a alta velocidad y las muestras, o incluso el propio rotor, si se rompe, puede volar a velocidades peligrosas.

🔬 ¿Qué significa RCF en una centrífuga?

RPM significa “Revoluciones por minuto”. Así es como los fabricantes de centrífugas generalmente describen lo rápido que va la centrífuga.

El rotor, independientemente de su tamaño, gira a esa velocidad. La fuerza aplicada al contenido varía según el tamaño del rotor de la centrifugadora.

La RCF (fuerza centrífuga relativa) se mide en fuerza x gravedad o fuerza g. Es la fuerza ejercida sobre el contenido del rotor, resultante de las revoluciones del rotor.

Es RCF, no RPM, lo que separa las soluciones acuosas en la centrífuga. Las RPM se pueden calcular para cualquier centrifugadora mediante esta ecuación:

RCF = 1.1118 x 10-5 x r x rpm2

Donde r es el radio del rotor en centímetros

🧪 ¿Qué es una centrifugadora industrial?

Una centrífuga industrial es una máquina utilizada para la separación de fluidos/partículas. Las centrífugas dependen del uso de la fuerza centrífuga, generando varios cientos o miles de veces la gravedad de la tierra.

La ley de la física que rige la separación centrífuga se conoce como Ley Stokes. Las centrífugas industriales se utilizan para separar sólidos de líquidos, separación líquido-líquido y separación líquido-líquido-sólido.

Las centrífugas industriales se pueden clasificar en dos tipos principales: centrífugas de sedimentación y centrífugas de filtración.

Las centrífugas de sedimentación utilizan la fuerza centrífuga para separar los sólidos de los líquidos, así como dos líquidos con diferentes gravedades específicas.

Las centrífugas de sedimentación incluyen decantadores, pilas de discos, cestas de tazones sólidos y centrífugas de tazones tubulares. Las centrífugas de filtración utilizan la fuerza centrífuga para hacer pasar un líquido a través de un medio filtrante, como una malla o un paño, mientras que los sólidos son capturados por el medio filtrante.

Las centrifugadoras de filtrado se ocupan principalmente de las centrifugadoras de cesto perforado, de empuje y de pelado.

☘ Centrifuga de laboratorio precio

Desde un punto de vista técnico, es posible comparar centrífugas que cuestan entre 1.000 y 5.000 dólares.

Con la intención de que amplíes tus conocimientos en el tema de las centrifugas de laboratorio, a continuación te mostramos dos vídeos que esperamos sean de gran utilidad:

Micropipetas

Las micropipetas se utilizan en el laboratorio para transferir pequeñas cantidades de líquido, generalmente hasta 0,1 uL. Son más comúnmente utilizados en laboratorios de química, biología, forenses, farmacéuticos y de descubrimiento de fármacos, entre otros.

🌡 ¿Qué es Micropipeta en química?

Cuando los científicos necesitan entregar volúmenes más pequeños de un líquido de forma exacta y precisa, utilizan una pipeta, un tubo de vidrio calibrado en el que se introduce el líquido y luego se libera.

Las pipetas de vidrio y plástico han sido los pilares de los laboratorios de química y biología durante décadas, y se puede confiar en ellas para dispensar volúmenes de hasta 0,1 mL.

Los biólogos moleculares utilizan frecuentemente volúmenes mucho más pequeños de líquidos en su trabajo, llegando incluso a 0,1µl (¡es decir, una décima parte de un mililitro, o una décima parte de un millón de un litro!).  Para volúmenes tan pequeños, necesitan usar una micropipeta.

Las micropipetas reciben muchos nombres diferentes, la mayoría de los cuales se basan en las empresas que las fabrican.

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Por ejemplo, se les puede llamar “Gilsons”, ya que un gran número de estos dispositivos utilizados en los laboratorios son fabricados por esta empresa.

Independientemente del fabricante, las micropipetas funcionan según el mismo principio: un émbolo es presionado por el pulgar y, a medida que se libera, el líquido se introduce en una punta de plástico desechable. Cuando el émbolo se presiona de nuevo, el líquido se dispensa.

🔬 ¿Qué diferencia existe entre pipeta aforada micropipeta y pipeta graduada?

Pipetas volumétricas

Pipetas volumétricas son usadas para medir un solo volumen con precisión, típicamente hasta 4 cifras significativas. (Los volúmenes típicamente varían de 0.5 a 100 mL) En una pipeta volumétrica, las especificaciones indican:

♦ La cantidad de líquido que se transferirá si el líquido es arrastrado hasta la línea de calibración del cuello.

♦ La temperatura a la que se realizó la calibración (recuerde que el volumen de un líquido cambia con la temperatura)

♦ Tanto si se trata de un dispositivo de medición TD (para entregar) como TC (para contener). 

El uso adecuado de una pipeta volumétrica incluye:

  •  Cuando se vacía una pipeta volumétrica, se deja que el líquido se drene lentamente. Nunca es forzado
  • hacia fuera.
  •  Después de vaciarlo, la pequeña cantidad de líquido que queda en la punta no debe ser soplada.
  • Las pipetas volumétricas NO son pipetas de soplado.

👉 Micropipetas

Se utiliza para medir con precisión pequeños volúmenes de líquidos (los volúmenes varían típicamente de 5 a 1000 µL)

Pipetas graduadas

Se utiliza para medir varios volúmenes con una sola pipeta (los volúmenes suministrados dependen del tamaño total de la pipeta).

Micropipeta partes

Las partes básicas de una micropipeta incluyen el botón del émbolo, el botón del expulsor de puntas, el dial de ajuste de volumen, la pantalla de volumen, el expulsor de puntas y el eje.

🧬 Historia de las micropipetas

La micropipeta fue inventada en 1957 en la Universidad de Marburgo, Alemania, por el postdoctor Heinrich Schnitger.

Frustrado por el pipeteado repetitivo de pequeños volúmenes con micropipetas de vidrio, Schnitger desarrolló un prototipo con un pistón de resorte y una punta de plástico extraíble para contener líquidos.

Todas las características principales de las micropipetas actuales fueron incorporadas al prototipo, mostrado arriba, que fue patentado en 1957.

En el fondo de la micropipeta se mueve un pequeño pistón en un orificio hermético. En el extremo cónico se colocan puntas de plástico extraíbles. Gracias a un amortiguador de aire, el líquido no entra en contacto con el pistón.

El volumen se define por un tope fijo o ajustable inferior y superior en el pistón accionado por resorte. Para la liberación completa del líquido, se aplica una mayor presión, la cual presiona un segundo resorte que sostiene el tope inferior.

Simple, elegante y eficaz, la micropipeta revolucionó la manipulación de pequeños volúmenes de líquidos.

Al permitir una transferencia rápida de microvolúmenes, transformó el trabajo bioquímico, médico, molecular y biológico celular y se ha convertido en el dispositivo más utilizado en la ciencia biológica.

📌 Micropipeta precio

Los precios de las micropipetas varían. Es posible encontrarlas desde 60 hasta casi los 1300 dólares. Depende de la calidad del fabricante, el volumen; además de los costos de envío en caso de adquirirlas a través de un portal electrónico.

🔹 Puntas para micropipetas función

Las puntas son una parte importante de la micropipeta y permiten que el mismo dispositivo se utilice para diferentes muestras (siempre y cuando cambie la punta entre muestras) sin necesidad de lavarlas.

Se presentan en diferentes tamaños y colores, dependiendo de la micropipeta con la que se utilicen y del volumen que se vaya a dispensar.

Las puntas más comúnmente utilizadas son:

  • Azul Grande – 200-1000µL
  • Amarillo pequeño – 2-200µL
  • Blanco Pequeño – <2µL

Se cargan en cajas de puntas que a menudo se esterilizan para evitar la contaminación. Por esta razón, las cajas de puntas deben mantenerse cerradas si no están en uso.

Las puntas se cargan en el extremo de la micropipeta empujando el extremo del dispositivo en la punta y dando dos golpecitos agudos.

Una vez utilizadas, las puntas son expulsadas a un contenedor de eliminación de objetos punzantes mediante el botón de expulsión de puntas. Nunca toque la punta con los dedos, ya que esto representa un riesgo de contaminación.

🌡 Cuidados de las micropipetas

Las instrucciones del fabricante se suministran con todas las micropipetas. Por favor, lea y asegúrese de entender cómo operar y cuidar la pipeta.

  • Las micropipetas son materiales delicados de presicion, por ello es menester manejarlas con cuidado.
  • Manténgase en posición vertical cuando esté en uso para evitar que los líquidos corran dentro del eje de la pipeta.
  • No deje las pipetas tiradas en el banco de trabajo donde puedan ser golpeadas y dañadas.
  • Antes de utilizarlo, asegúrese de que el volumen ha sido ajustado correctamente.
  • La mayoría de las pipetas tienen una pantalla digital de volumen. Algunas marcas tienen un ajuste de micrómetro, que puede ser difícil de leer.
  • Compruebe que todas las puntas estén bien ajustadas a la pipeta.

🔬 ¿Cómo pipetear líquidos con una micropipeta?

1. Las micropipetas tienen 3 posiciones:

– Posición de descanso

– Primera parada

– Segunda parada

2. A continuación, debe colocar la punta en el extremo del eje. Luego, proceda a hacer presión hacia abajo, entonces debe girarlo con cuidado para, de esta manera, asegurar que el sellado sea hermético.

3. Es importante que sostenga la pipeta verticalmente, entonces proceda a presionar el embolo hasta el primer tope. El aire igual al volumen del ajuste (por ejemplo, 100 μL) se desplaza.

4. Luego, la punta se debe sumergir en el líquido. Para ello debe soltar el embolo hasta que alcance la posición de reposo.

Después de un segundo, el líquido es aspirado en la punta. El volumen de ajuste de la micropipeta será el mismo al del líquido en la punta.

5. Seguidamente la punta debe ser colocada, contra la pared del envase que recibe el líquido, en un ángulo de 10° a 45.

Presione el émbolo hasta la primera parada, espere un segundo, presione el émbolo hasta la segunda parada para expulsar todo el líquido.

6. Debe apartar el extremo de la punta del líquido. Entonces proceda a soltar el embolo hasta alcanzar la posición de reposo.

☘ Lo que debes evitar hacer con la micropipeta

Dejar caer la pipeta. Si se le cae la pipeta, podría estar fuera de calibración. Así que sé muy gentil y cuidadoso.

Aspirar en la pipeta. Créanos, eso sucede. Si está trabajando con productos químicos agresivos, el tenerlo pegado dentro de la pipeta puede llevar a que se acumule y le dé resultados inexactos.

Gire el dial más allá o por debajo de su rango de volumen. Esto puede romper el indicador de volumen u otros componentes dentro de la pipeta.

Atascar la punta de la pipeta en la pipeta. Esto no sólo puede dañar la punta de la pipeta, sino también el eje de la pipeta. Lo que el atasco significa es que lo más probable es que necesite una punta de pipeta que se ajuste mejor.

Debe ser cauteloso en el manejo de la micropipeta. Se trata de un instrumento muy preciso y, como tal, hay que prestar especial atención a su funcionamiento.

Si nota que está fuera de rango o que no funciona como antes, es hora de repararlo y/o calibrarla.

👉 ¿Cómo calibrar la Micropipeta?

Para llevar a cabo la calibración de la micropipeta se deben realizar los siguientes pasos:

Comprobación de la calibración

Reúna los materiales necesarios

Para comprobar la calibración de una pipeta, necesitará la pipeta, las puntas de pipeta, el agua destilada, un vaso de precipitados, un termómetro, una balanza y botes de pesaje. La balanza debe ser específica para microgramos para calibrar micropipetas con un máximo de 1 µL.

No necesitará más de 5 ml de agua. Llene el vaso con agua.

Asegúrese de que las puntas de las pipetas sean las puntas correctas que se ajusten correctamente a la pipeta.

Mida la temperatura del agua destilada

Coloque el termómetro en el agua y déjelo por lo menos un minuto. Si la línea roja del termómetro sigue moviéndose, déjela un minuto más.

Después de un minuto, registre la temperatura en un cuaderno. Retire el termómetro y séquelo cuando haya terminado.

Conocer la temperatura del agua es importante para los cálculos que se realizarán para comprobar la calibración.

Colocar el recipiente de pesaje sobre la balanza y ponerlo a cero

Lo ideal es utilizar una balanza que tenga puertas y sea una cámara aislada. Colocar el barco de pesaje en la cámara y cerrar las puertas.

Si no tiene puertas, simplemente coloque el barco de pesaje sobre la balanza. Pulsar la tecla “Zero” o “Tare” y esperar hasta que la balanza indique cero.

Poner a cero la balanza resta el peso del barco de plástico y le permite medir sólo el peso de lo que usted puso en el recipiente.

Preparar la pipeta para la calibración

Limpie la pipeta con etanol para eliminar cualquier contaminante antes de comenzar y asegúrese de que nada esté obstruyendo el extremo de la punta de la pipeta.

Coloque la punta apropiada en el extremo y ajuste el volumen que desea probar.

Para la calibración, pruebe tanto el volumen más pequeño como el más grande que la pipeta pueda dispensar.

Pre-enjuague la punta antes de la calibración

Presione el botón hasta el primer tope y pegue la punta en el agua destilada de modo que se sumerja unos 2 mm en el líquido.

Suelte el botón para aspirar un poco de líquido y luego vuelva a dispensar el líquido presionando el botón hacia abajo. Repita esto tres veces para enjuagar previamente la punta.

Presione el botón hasta el segundo tope para dispensar cualquier líquido que quede en la punta y retire la pipeta del agua.

Aspirar el volumen de calibración

 Con la punta fuera del líquido, presione el botón hasta el primer tope. Coloque aproximadamente 2 mm de la punta en el agua destilada y suelte el botón para aspirar el líquido en la punta. Espere aproximadamente 1 segundo antes de retirar la punta del agua.

Asegúrese de que la punta esté completamente sumergida durante todo el proceso de aspiración. Usted no quiere burbujas en la punta o los resultados serán erróneos.

Dispensar el líquido en el contenedor de pesaje de la balanza. La punta debe ser conducida hasta el fondo del recipiente de pesaje, una vez hecho esto, hay que hacer presión sobre el botón hasta el primer tope.

Muévase a otro lugar ligeramente alejado del agua y presione el botón hasta la segunda parada. Manteniendo el botón presionado, levante la punta del bote de pesaje.

Mantenga la punta en la pipeta, ya que la volverá a utilizar para pesar más pruebas de calibración.

Debe asegurarse de que la punta no entre en contacto con nada.

Anote el peso en la balanza

Cierre la puerta si está utilizando una balanza de cámara. Espere hasta que los números dejen de cambiar. Anote este número en su cuaderno.

Es importante esperar hasta que el número se haya estabilizado antes de registrarlo. Sus lecturas serán incorrectas si no espera.

Repita este proceso para tomar al menos 10 lecturas

Ponga a cero la báscula, enjuague previamente la punta, aspire el mismo volumen, dispense el volumen y, a continuación, registre el peso.

Usted quiere tener múltiples grabaciones del mismo volumen y luego puede promediarlas todas juntas.

Puede repetir este mismo proceso con volúmenes diferentes siempre y cuando tome varias lecturas por volumen.

Cálculo de los resultados

Defina la fórmula para el volumen calculado

La fórmula para calcular el volumen dispensado por la pipeta es V = w * Z donde w es el peso del agua, Z es el factor de conversión basado en la densidad del agua, y V es el volumen calculado de cuánta agua fue dispensada.

Puedes encontrar la variable Z buscando la densidad del agua usando la temperatura registrada al principio del experimento.

Por ejemplo: Si la temperatura del agua era de 23°C, se utilizará un valor Z de 1,0035 µg/mg.

Promedie de las réplicas juntas

Debe haber pesado el volumen de agua dispensada por la pipeta al menos 10 veces. Para promediar todos estos valores juntos, súmelos y divídalos por 10. Si hizo más o menos ensayos, sume cada ensayo y divida por el número total de ensayos.

Por ejemplo: Los diez pesos que registró para un volumen de pipeta de 10 µl son los siguientes: 9.89, 10.01, 10.02, 9.99, 9.95, 10.04, 9.96, 10.01, 9.99 y 9.98.

El promedio es: (9.89 + 10.01 + 10.02 + 9.99 + 9.95+ 10.04 + 9.96 + 10.01 + 9.99 + 9.98)/10 = 99.84/10 = 9.984

Calcule la precisión de la pipeta

Para calcular la precisión se puede utilizar la ecuación A = 100 x Vavg/V0, donde A es la precisión de la pipeta, Vavg es el volumen medio calculado y V0 es el valor que se ajusta para dispensar la pipeta. La precisión debe estar entre 99-101% [12].

Si la pipeta está correctamente calibrada, el valor calculado debe estar muy cerca del valor real que usted estableció en la pipeta.

Por ejemplo: A = 100 x Vavg/V0 = 100 x 10.019/10 = 100 x 1.0019 = 100.19%.

Esta pipeta en particular está debidamente calibrada.

Si es necesario, envíe la pipeta para su calibración

Si su pipeta no supera la prueba de calibración, deje de utilizarla inmediatamente para realizar experimentos. Las pipetas son equipos de laboratorio muy delicados y caros.

Usted no puede fijar la calibración por sí mismo, por lo que tendrá que enviarlos para que reciban el servicio adecuado. Alternativamente, algunas compañías irán a su laboratorio y calibrarán sus pipetas allí.

Póngase en contacto con la compañía que fabrica su marca particular de pipetas para el mantenimiento.

Seguidamente les presentamos un vídeo en el cual podrá apreciar cómo se realiza el mantenimiento de las micropipetas y la forma más eficiente de manejarlas. De esta manera podrá complementar la información que acaba de obtener.

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MATRAZ DE FONDO PLANO: Para Que Sirve, Capacidad, Uso

 Todo buen profesional químico necesita un matraz de fondo plano, puedes adquirirlo junto con todo el instrumental necesario, debes tener en cuenta que hay varios tipos de matraz que igualmente son indispensables para tu trabajo.

🌡 ¿Qué es un matraz de fondo plano?

 Los frascos se utilizan en entornos de laboratorio (incluidos los laboratorios de química) para una variedad de propósitos. Se puede usar un matraz para medir el volumen de muestras y soluciones líquidas o calentar, enfriar, disolver, mezclar o hervir líquidos. Los frascos son generalmente de vidrio o plástico y pueden venir en una variedad de formas y tamaños. Típicamente, un matraz es más ancho en la base que en el cuello, con una abertura en la parte superior. Los matraces pueden tener fondos redondeados o planos.

  Un matraz de fondo plano se usa en configuraciones donde el matraz se colocará en una superficie nivelada, en lugar de una abrazadera o un tazón. Por otro lado, un matraz con un fondo redondo se sentará en un recipiente o se suspenderá sobre una superficie con una abrazadera.

Mira más sobre materiales de laboratorio aquí

🔬 Usos del matraz de fondo plano

  Un matraz de fondo plano se usa en un laboratorio de química para experimentos que involucran la recolección y medición de líquidos, soluciones de mezcla y medios de cultivo. El diseño y la construcción del matraz de fondo plano le permite estar solo en el banco de laboratorio. Mira aquí para que sirve el matraz de fondo plano

🔹 Características del matraz de fondo plano

  1. El matraz de fondo plano tiene forma redonda en su parte inferior y además tiene un cuello recto y alargado.
  2. Se utiliza para calentar sustancias y medir las reacciones.
  3. Por lo general se utiliza un material de gasa para poner una barrera entre el calor y el matraz para evaluar las reacciones de forma segura y también es utilizado en el cultivo bacteriológico.
  4. Hay una diferencia entre un matraz de fondo plano y uno de fondo redondo y es que este último no dispone de la base para mantenerse erguido sobre la superficie, se le debe colocar una.
  5. Aunque es muy bueno para calentar sustancia, esta no adquiere el calor uniforme que necesita, esta es otra diferencia con los matraces redondos.
  6. Los matraces de fondo plano no son tan fuertes ni duraderos como los matraces de fondo redondo. A pesar de esta desventaja, tienen una característica a su favor: no tienen las esquinas afiladas y vulnerables de un matraz Erlenmeyer, por ejemplo.

🍀 Variaciones del matraz de fondo plano de otros matraces

Matraz Erlenmeyer

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  El matraz Erlenmeyer también se conoce como matraz cónico. Es un matraz de forma interesante, un cuerpo de cono y un cuello cilíndrico, fue creado en 1860 por el químico alemán Emil Erlenmeyer.

  Generalmente son de cristal, pero también pueden ser fabricados de plástico y también pueden ser fabricados dependiendo del volumen que se requiera.

   La boca de un matraz Erlenmeyer puede tener un tipo de labio que puede detenerse con un trozo de algodón, corcho o goma.

  Gracias a que los lados del matraz son estrechos, se puede mezclar el líquido dentro de el sin ningún problema o preocupación por perder nada.

Matraz medido

  Estos matraces son instrumentos de laboratorio, calibrados para contener una cantidad precisa de volumen a una temperatura particular. Los matraces volumétricos se utilizan para diluciones y preparaciones precisas de soluciones estándar.

  Los cuellos de los matraces volumétricos son alargados y delgados, con un anillo para marcar su graduación. Esta marca indica el volumen de líquido que contiene cuando se llena hasta ese punto.

🍀 Vasos de precipitación

  Estos vasos están disponibles en muchos tamaños y presentaciones, se utilizan para calentar y mesclar cualquier clase de líquidos para ser sometidos a estudios.

Matraz de fondo plano DURAN® con borde moldeado

   La distribución uniforme del espesor de la pared hace que estos matraces sean ideales para aplicaciones de calefacción. La base plana significa que los matraces se pueden colocar sin un anillo de soporte. Los matraces con un diámetro de cuello de 65 mm o más tienen un borde reforzado.

⭐ Cuidados del matraz de fondo plano

  1. Recomendamos que toda la cristalería se lave antes de usarla por primera vez.
  2. Antes de usar cualquier pieza de vidrio, siempre tómese el tiempo para examinar cuidadosamente y asegurarse de que esté en buenas condiciones. No utilice ningún material de vidrio que esté rayado, astillado, agrietado o grabado. Defectos como estos pueden debilitar seriamente la resistencia mecánica del vidrio y hacer que se rompa con el uso.
  3. Nunca use una fuerza excesiva para colocar los tapones de goma en el cuello de una pieza de vidrio. Siempre asegúrese de seleccionar el tamaño correcto de tapón.
  4. Llevar o levantar frascos de vidrio, vasos o botellas grandes, etc. por el cuello o la llanta puede ser muy peligroso. Siempre proporcione soporte desde la base y los lados.
  5. Al agitar las soluciones en recipientes de vidrio, evite usar barras de agitación con extremos afilados que puedan rayar la cristalería y debilitarla.
  6. Siempre caliente la cristalería suavemente y gradualmente para evitar cambios bruscos de temperatura que pueden hacer que el vidrio se rompa debido a un choque térmico. Del mismo modo, permita que la cristalería caliente se enfríe gradualmente y en un lugar alejado de corrientes frías.
  7. Si está utilizando una placa calefactora, asegúrese de que la placa superior sea más grande que la base del recipiente a calentar. Si la base del recipiente sobresale de la parte superior de la placa de cocción, se pueden producir puntos de conexión que causan que la base del recipiente se rompa. Además, nunca ponga cristalería fría en una placa de cocción precalentada. Siempre caliente la cristalería a temperatura ambiente.
  8. Si está utilizando un quemador Bunsen, emplee una llama suave y use una gasa de alambre con un centro de cerámica para difundir la llama. Nunca aplique calor localizado directo a una pieza de vidrio.

📌 Consejos para reducir el peligro al usar matraces de cristal

       1. Inspeccione la cristalería en busca de defectos como grietas, rasguños, marcas profundas y marcas de grabado antes de usar el aparato de vacío

      2. Asegúrese de que los recipientes estén diseñados específicamente para trabajos de vacío. Considere usar matraces más pequeños (menos de 1 L), ya que es menos probable que exploten. Los matraces de pared delgada o de fondo redondo de más de 1 L nunca deben ser evacuados.

     3. Montar el aparato de vacío para evitar tensiones. Los aparatos pesados deben apoyarse desde abajo y también por el cuello.

     4. Pegue el aparato de vacío de vidrio para minimizar los proyectiles debido a la implosión. Use un patrón entrecruzado de cinta de filamento y / o construya un recinto alrededor del matraz.

     5. Use una protección adecuada cuando realice operaciones de presión y vacío, como una barrera de plexiglas.

     6. Conocer la química del contenido del matraz.

     7. No sacuda, golpee ni deje caer un matraz que esté bajo presión de vacío. Además, trate de evitar exponer el matraz a vibraciones innecesarias del equipo en el mismo banco, música fuerte, etc. El matraz debe anclarse en su lugar con un soporte de anillo y una abrazadera.

     8. Utilice vacío de baja intensidad.

     9. Antes de realizar cualquier acción con el matraz (quitar el embudo / tapón, ajustar las mangueras), asegúrese de liberar el vacío al desconectar la manguera en el extremo de la bomba de vacío (a diferencia del extremo del matraz).

    10. Use protección para los ojos y la cara cuando maneje aparatos de vacío o presión.

🔍 Matraz aforado

Posee un cuello alargado y estrecho, con un aforo que marca dónde se debe efectuar el enrase, el cual nos indica un volumen con gran exactitud y precisión.

TRÍPODE DE LABORATORIO: Para Qué Sirve, Uso, Características

Un trípode de laboratorio es una pieza de equipo de tres patas que se utiliza comúnmente para realizar experimentos en laboratorios.

Se utiliza como plataforma para sostener y soportar objetos de vidrio, como vasos de precipitados y frascos, durante los experimentos y cuando los objetos de vidrio no están en uso.

La altura de un trípode es fácilmente ajustable para adaptarse a las diferentes necesidades individuales.

🌡 ¿Qué es trípode de laboratorio?

El trípode de laboratorio es una suerte de armazón que consta de tres patas y que sirve para colocar diferentes frascos y matraces.

Los trípodes suelen ser de acero inoxidable o aluminio y están ligeramente construidos para que sean portátiles dentro del laboratorio.

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A menudo se coloca una tela metálica en la parte superior del trípode para proporcionar una base plana para la cristalería. Los trípodes son generalmente lo suficientemente altos para colocar un quemador Bunsen debajo.

🔬 ¿Quién invento el trípode de laboratorio?

La invención del trípode portátil se le atribuye al científico e inventor inglés Sir Francis Ronalds, quien fuera, posiblemente, el primer ingeniero eléctrico.

Empero, se dice que el trípode de laboratorio fue inventado en 1850 por Golbart Matthews, aunque hay muy poca documentación precisa al respecto. Un trípode es un término general para un soporte o poste con tres patas.

Se utiliza a menudo para apoyar un arma o para hacer espacio en el laboratorio científico sobre el quemador Bunsen para calentar / cocinar algo.

🔹 Trípode de laboratorio uso

Los trípodes son útiles en áreas de experimentación y observación. Son ampliamente utilizados con los quemadores Bunsen, ya que mantienen las cosas que se calientan por encima del quemador. Un ejemplo de los trípodes utilizados en los laboratorios es el trípode del mechero, que se utiliza junto con la tela metálica o el baño de arena.

Los soportes para trípodes se utilizan en diversos campos, como los farmacéuticos y los laboratorios clínicos, industriales, patológicos y educativos.

El trípode de laboratorio es más utilizado en las escuelas secundarias y preparatorias para experimentos básicos de calefacción[2] Sin embargo, los trípodes y los quemadores bunsen se han vuelto obsoletos por las placas calentadoras, que se consideran más seguras ya que no hay contacto directo con la llama.

🍀 Trípode de laboratorio función

El trípode de laboratorio es un equipo de plataforma portátil de tres patas, que normalmente está hecho de metal ligero como el acero inoxidable y el aluminio, de modo que se puede mover cómodamente dentro del laboratorio. El uso principal es apoyar o sostener los frascos y vasos de precipitados durante los experimentos.

⭐ Trípode de laboratorio precio

Es posible conseguir los trípodes para laboratorio a través de tiendas especializadas en línea o fiscas. Los precios varían de acuerdo con los modelos y tipos específicos según señalamos con anterioridad. Por lo general, los precios rondan entre 5 y 50 dólares, además de los gastos de envío.

📌 ¿Cómo se usa el trípode de laboratorio?

El trípode de laboratorio se utiliza esencialmente para apoyar recipientes de vidrio, vasos entre otros, mientras el investigador lleva a cabo diversos experimentos.

Cuando se requiere para calentar sustancias con el mechero Bunsen, lo ideal es utilizar una rejilla que pueda soportar las altas temperaturas.

El modo de empleo es sencillo, luego de colocar la rejilla sobre ella debe poner los recipientes, o matraces y debajo se coloca el mechero. Se ajusta la altura, de acuerdo con los requerimientos de la experimentación, y simplemente resta esperar a que ocurra la reacción o que la sustancia alcance la temperatura deseada.

Se recomienda el uso de los trípodes de laboratorios sobre superficies planas para evitar inconvenientes, sin embargo, algunos de estos aparatos tiene la capacidad de ajustarse para minimizar las posibles desviaciones que puedan existir sobre la superficie. Una gran opción que brinda de seguridad al laboratorista.

🌡 Características de trípode

Los trípodes tienen tres patas para sostener diferentes tipos de equipo de manera efectiva. Los soportes están hechos de metales ligeros que los hacen ligeros y fáciles de transportar.

Son portátiles y plegables, lo que los hace adecuados para laboratorios con espacio limitado. Algunos soportes de trípode están construidos con una tapa de hierro fundido y patas de acero dulce para una mejor estabilidad.

Los materiales típicos utilizados en la construcción de trípodes son el acero inoxidable, el aluminio y el cromo.

🔬 Variaciones

Hay varios diseños diferentes. La parte superior es comúnmente triangular o circular, y a veces las tres patas pueden ser removidas y ajustadas dependiendo de las preferencias del usuario.

Los trípodes pequeños tienen 6 pulgadas de altura y están emparejados con gasas de 4 pulgadas o más pequeñas. Los trípodes grandes tienen aproximadamente 9 pulgadas de altura.

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PINZAS PARA TUBOS DE ENSAYO : Para Que Sirve, Características, Precio

Las pinzas para tubos de ensayo forman parte de la instrumentación esencial entre los materiales de laboratorio. Con ellas es posible tomar, transportar y sostener sustancias contenidas, a altas temperaturas, en los tubos.

Entre las ventajas que tienen los laboratoristas con estas pinzas se encuentra la seguridad. Las personas que se ven en la necesidad de manipular tubos de ensayo, pueden hacerlo con la tranquilidad que las pinzas proporcionan especialmente cuando se debe tomar o desplazar material muy caliente. De esta manera se evita el contacto directo con las manos.

De allí nace la necesidad imperiosa de contar en todo momento con este tipo de herramientas en los laboratorios, ya sea de madera, metal o plástico para llevar a cabo con tranquilidad el trabajo profesional del laboratorista.

🌡 ¿Para qué sirven las pinzas para tubos de ensayo?

Las pinzas para tubos de ensayo se utilizan primordialmente para sujetar tubos de laboratorio. Los tubos de ensayo son piezas en forma de tubo de vidrio de laboratorio que se utilizan comúnmente para contener, mezclar o calentar pequeñas cantidades de productos químicos sólidos o líquidos.

🔬 Tipos de pinzas para tubos de ensayo

Existe gran variedad de pinzas para tubos de ensayos disponibles en el mercado. Todo depende del trabajo que se vaya a llevar a cabo para decidirse por determinado tipo de pinza.

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Entre las variedades que se pueden encontrar están las siguientes:

Pinzas de madera.

Son las menos costosas y, por otra parte, son muy prácticas al momento de realizar algún tipo de demostración educativa.

Stoddard.

Por lo general este tipo de pinza está elaborada de bronce o de níquel. En cuanto a sus medidas, tiene 12,7 cm (5 pulgadas) de longitud.

Semi micro.

Este tipo de pinza es manufacturada con alambre de acero niquelado y posee mordazas redondeadas.

Las pinzas que acabamos de mencionar son las más comunes, sin embargo, hay que aclarar que existen muchos modelos lo que implica una exhaustiva investigación para escoger el tipo de pinza o pinzas que realmente necesita en su laboratorio.

🍀 Pinzas para tubos de ensayo de madera

Las pinzas de madera para tubos de ensayo son muy útiles en los laboratorios. Los especialistas las usan para sostener los tubos de ensayo mientras estos se calientan o para verter algún líquido.

Esto, precisamente, permite sostener el tubo de ensayo sin correr el riesgo de posibles quemaduras. De esta manera, es posible trasladar el tubo de ensayo desde una gradilla hasta llevarlo al fuego sin la necesidad de que entre en contacto directo con el laboratorista.

Toda vez que la madera es propensa a la combustión, hay que tener mucho cuidado cuando se procede a calentar el tubo de ensayo. El fuego debe orientarse de manera de que solamente se caliente el tubo y no la madera.

También se ha determinado que la resistencia de este material ante los productos químicos corrosivos es muy poca o nula (en especial cuando se trata de ácidos fuertes).

Existen pinzas elaboradas en plástico, pero por su poca resistencia al fuego se utilizan muy poco, no son tan populares en los laboratorios. Otra de las ventajas de las pinzas de madera sobre las de metal es que esta última puede producir quemaduras en la mano del laboratorista, gracias a la conductividad del calor a través del metal.

No te vayas sin visitar: materiales de laboratorio de biología

⭐ Agarraderas para tubos de ensayo características

Las pinzas metálicas para tubos de ensayo se caracterizan por los brazos metálicos que ejercen la presión, sobre el recipiente, a través un tornillo ajustable.

Para proteger el envase, los brazos están recubiertos por corcho, fieltro o plástico, de esta manera se previene el contacto directo del metal con el tubo de ensayo y así evitar un posible rompimiento del frasco.

Existen pinzas para tubos de ensayo que tienen anillos en los dedos para un agarre cómodo y un anillo colector de metal para un cierre consistente. Las mordazas, por lo general, están diseñadas para sostener un solo tubo de ensayo sobre una llama abierta. Su longitud es de 6.5 pulgadas (17 cm).

En relación con las pinzas de madera, estas suelen ser duras con  acabado liso y un resorte de autocierre. Algunas de estas pinzas aceptan tubos de hasta 3/4″ (19mm) de diámetro. Su longitud es de 7″ (178mm).

📌 Pinzas para tubos de ensayo precio

Es posible conseguir las pinzas para tubos de ensayo a través de tiendas especializadas en línea o fiscas. Los precios varían de acuerdo con los modelos y tipos específicos según señalamos con anterioridad. Por lo general, los precios rondan entre 2 y 120 dólares por unidad, además de los gastos de envío. 

MATRAZ VOLUMÉTRICO DE LABORATORIO: Para Qué Sirve, Definición, Uso

Todo gran químico necesita un matraz volumétrico de laboratorio, un instrumento de medición y análisis muy importante

🌡 ¿Qué es un matraz volumétrico de laboratorio ?

 Un matraz volumétrico es un tipo de material de vidrio de laboratorio utilizado para preparar soluciones. Un matraz volumétrico es una bombilla de fondo plano con un cuello alargado calibrado para mantener un volumen establecido en una marca en el cuello. El matraz también se puede llamar matraz graduado o matraz de medición porque su marca especifica una medición precisa del volumen.

La marca en el cuello del matraz indica el volumen contenido. Cuando se vacía, parte del líquido puede permanecer en el contenedor, por lo que la marca (a diferencia de una pipeta) no indica la cantidad que se debe dispensar. Cabe señalar que los matraces volumétricos están calibrados para una temperatura particular (generalmente 20 ° C), que se indica en la etiqueta.

🌡 Descripción del Matraz volumétrico de laboratorio

  La mayoría de los matraces volumétricos son de vidrio transparente o plástico, aunque algunos matraces son de color ámbar para la preparación de soluciones sensibles a la luz. La boca del matraz puede tener una junta para acomodar un tapón o un tapón de rosca. una temperatura particular (generalmente 20 ° C), que se indica en la etiqueta.

  La mayoría de los matraces volumétricos son de vidrio transparente o plástico, aunque algunos matraces son de color ámbar para la preparación de soluciones sensibles a la luz. La boca del matraz puede tener una junta para acomodar un tapón o un tapón de rosca.

🔹 Estándares volumétricos del matraz

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  ¡Todos los matraces volumétricos no son creados iguales! Hay matraces de mayor y menor precisión. Un matraz volumétrico hecho para cumplir con un alto estándar es un matraz de Clase A o Clase 1. Su tolerancia, temperatura, precisión y volumen se indicarán en la cristalería. Un matraz de Clase B no cumple con un estándar tan alto y puede no incluir toda esta información. Los matraces de clase A se utilizan para el trabajo de química analítica, mientras que los matraces de clase B son adecuados para la mayoría del trabajo educativo y cualitativo.

🍀 Capacidades de los Matraces volumétricos de laboratorio

Frascos Volumétricos DURAN®

  Los matraces volumétricos DURAN® se utilizan para la medición precisa de cantidades específicas de líquidos. Son ayudas de análisis volumétrico en el trabajo de laboratorio cuantitativo.

  Los matraces volumétricos están disponibles en dos clases diferentes de precisión: clase “A” y clase “B”. Las dos clases difieren en la precisión de la medición, siendo la clase A la máxima precisión y la clase B es aproximadamente la mitad de la clase “A”.

  Los matraces volumétricos con clase de precisión “A” tienen una impresión azul para productos de vidrio transparente y una impresión en blanco para las versiones ámbar. Los matraces volumétricos de clase “A” se calibran individualmente, pero están disponibles con dos tipos diferentes de certificados, un tipo se entrega con un certificado del lote de producción (también disponible en línea) y el otro tipo con certificados individuales.

  Los productos de la clase de precisión “B” tienen una impresión en blanco. Para estos productos solo está disponible una especificación de vidrio general.

Mira más instrumentos de laboratorio aquí

Matraz volumétrico de clase A de la marca PYREX

  1. Capacidad de 5ml a 10ml
  2. Línea de graduación permanente
  3. Cuerpos soplados a maquina
  4. Los cuellos de tubos pesados ​​y con cuentas son útiles para tapones de polietileno
  5. El tapón está hecho con un fondo cerrado y es de polietileno lineal de alta densidad para ajustarse a las dimensiones del tapón cónico estándar.

⭐ Calibración de matraces volumétricos:

  1. Antes de la calibración, limpie y seque el matraz a calibrar.
  2. Pese el frasco vacío y registre el peso exacto del frasco.
  3. Tome el agua destilada a temperatura ambiente y asegúrese de que el agua alcance la temperatura de equilibrio con la temperatura ambiente manteniéndola a temperatura ambiente durante media hora.
  4. Llene el matraz con agua destilada hasta la marca de calibración, teniendo cuidado de que no queden gotas de agua en el cuello del matraz o por encima de la marca de calibración.
  5. Tenga en cuenta la temperatura del agua destilada utilizada y la temperatura ambiente.
  6. Pese el matraz lleno y registre el peso, reste el peso vacío del matraz volumétrico y registre el peso.
  7. Convierta el peso del agua a temperatura ambiente en volumen de agua a 27 ° C como se indica a continuación:

Vt = W x Ft

Donde, Vt = Volumen de agua a la temperatura observada t ° C

W = Wt de agua a la temperatura observada t ° C

Ft = Factor (El valor del cual se puede encontrar en la siguiente tabla)

 t ° C (Agua) Pie t ° C (Agua) Pie
            20 1.0028 28 1.0048
            21 1.0030 29 1.0051
            22 1.0033 30 1.0054
            23 1.0035 31 1.0057
            24 1.0038 32 1.0060
            25 1.0040 33 1.0064
            26 1.0043 34 1.0067
            27 1.0045 35 1.0070

Calcule por ejemplo el volumen de agua a 27 ° C a partir de la siguiente ecuación:

V27 = Vt (1 + 0.0001 (27 – t ° C de aire)) Donde, 0.0001 = coeficiente de expansión térmica del vidrio de borosilicato.

En caso de una pequeña diferencia de temperatura, V27 = Vt

      TOLERANCIAS EN LA CAPACIDAD DE LAS FASES VOLUMÉTRICAS

Capacidad del matraz (ml) 5 10 25 50 100 200 250 500 1000
Tolerancia de clase A +/- (ml) 0.02 0.02 0.03 0.04 0.06 0.1 0.1 0.15 0.2

📌 Usos del matraz volumétrico

El matraz volumétrico se utiliza para medir volúmenes precisos de materiales líquidos para experimentos de laboratorio. Se prefieren cuando están disponibles porque son más precisos que los cilindros graduados y los vasos de precipitados, que son otros equipos que se utilizan para medir líquidos.

🔍 Cómo reconocer un matraz volumétrico

  Un matraz volumétrico se caracteriza por un bulbo y un cuello largo. La mayoría de los matraces volumétricos tienen fondos aplanados para que puedan colocarse en una mesa de laboratorio u otra superficie, aunque algunos matraces volumétricos tienen fondos redondeados y deben manejarse con equipo de protección especial.

🌡 Cómo usar un matraz volumétrico

  1. Para preparar una solución en un matraz volumétrico, siga estos pasos:
  2. Medir y agregar el soluto para la solución.
  3. Agregue suficiente solvente para disolver el soluto.
  4. Continúe agregando solvente hasta que se acerque a la línea marcada en el matraz volumétrico.
  5. Use una pipeta o gotero para llenar el matraz volumétrico, usando el menisco de la solución y la línea en el matraz para determinar su punto final.
  6. Selle el matraz volumétrico e inviértalo para mezclar bien la solución.

🔹 Matraz aforado

  También es conocido como fiola, es un envase de cristal que es empleado en los laboratorios para generar reacciones, preparar disoluciones y medir el volumen de líquidos.

  La parte inferior del instrumento tiene forma redondeada, muy parecido a una pera con una base plana, sin embargo, algunos no tienen esta base. Desde allí erige un cuello largo y estrecho.

    Existen de dos tipos. El primer tipo se emplea para preparar soluciones valoradas, es decir, aquellas en las que existen medidas precisas de soluto y de solvente necesarias para producir la mezcla correcta. Las mediciones arrojadas por este tipo de instrumento son muy precisas.

  El segundo tipo se emplea para preparar otras soluciones que no sean valoradas. En este caso, las mediciones obtenidas son estimadas y no precisas.

🍀 Diferencia entre un matraz aforado y un matraz volumétrico de laboratorio

  La diferencia radica en que un material volumétrico graduado tiene un cierto error en las medidas, no son volúmenes completamente exactos. por ejemplo, en una probeta graduada o en una bureta graduada marcan el volumen junto a un + o – indicándonos que hay una pequeña variación.

Por lo contrario, el material aforado tiene el volumen indicado en el recipiente y es ese exactamente, siempre y cuando lo tengas bien igualado. En todos los casos el material volumétrico debe ser calibrado, para comparar el volumen indicado por el aforo o la graduación con un volumen conocido. Cuando el material volumétrico se compra calibrado debe recibirse con su certificado correspondiente.

No te vallas sin ver mas sobre el matraz aforado y su uso en este video https://www.youtube.com/watch?v=emQt0cBcx4A

ESTERILIZACIÓN De Materiales De Laboratorio: Métodos, Preparación, Equipos, Desinfectantes

 Necesitas saber sobre la esterilización de materiales de laboratorio para trabajar en uno, hay muchos diferentes tipos de bacterias que no pueden distribuirse juntas y sin observación o sin la intención de ser observadas, por lo cual hay que llevar una correcta esterilización de todos los utensilios de trabajo.

🌡 Equipos de esterilización de materiales de laboratorio

  Un ambiente estéril es una necesidad en la mayoría de los laboratorios, en particular en microbiología y laboratorios médicos.

  Los autoclaves, los sistemas de limpieza in situ (CIP) y de esterilización in situ (SIP), los esterilizadores y hornos de calor seco, los esterilizadores de vapor, los esterilizadores de medios y las cámaras UV trabajan para esterilizar el equipo y los suministros.

Equipos adecuados para la esterilización de materiales de laboratorio

  Los autoclaves esterilizan el equipo al someterlo a vapor presurizado durante un tiempo establecido, tal vez 20 minutos a 121 ° C, 15 psig. Las características que se deben buscar incluyen operación automática, puerta de fácil cierre y ciclos de pre-vacío para eliminar el aire de la cámara. Los esterilizadores y hornos de calor seco, que utilizan aire caliente para la esterilización, son particularmente útiles para desinfectar ciertos polvos y aceites.

🌡 Métodos de esterilización de materiales de laboratorio

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  La esterilización de los materiales usados en el laboratorio es un asunto crucial para todos los involucrados, clínicas y hospitales. A menos que el equipo utilizado se esterilice de vez en cuando, los establecimientos de salud no podrán permanecer en funcionamiento. Contrariamente a la creencia popular, hay muchos métodos diferentes para esterilizar equipos médicos. A continuación, se muestra una descripción básica de las diferentes técnicas utilizadas para esterilizar el equipo médico en muchos laboratorios, como los laboratorios de Gibraltar.

Esterilización mediante autoclave

  Un autoclave es una máquina de tamaño variable. Utiliza alto calor y presión y vapor para esterilizar equipos médicos. El tiempo necesario para la esterilización depende de la temperatura alcanzada por el autoclave y de la configuración de los materiales a esterilizar. El factor crítico es que el material debe tener un camino sin obstrucciones al vapor.

Esterilización de materiales de laboratorio a través del vapor

  Este tipo de esterilización es bastante común en las instalaciones de salud y es utilizado por los fabricantes de instrumentos ortopédicos y bandejas para validar sus instrucciones de uso. El equipo se coloca en la cámara principal y el vapor se dirige hacia el equipo médico. El alto calor y el vapor destruyen muchos organismos y garantizan que el instrumento se deje limpio y esterilizado.

Esterilización vía flash

  Esta técnica es similar al uso de vapor para la esterilización, pero tiene una diferencia de principio. La esterilización instantánea de un objeto es significativamente más rápida que la esterilización mediante vapor o muchos otros métodos.

Esterilización por calor seco

  La esterilización de equipos médicos a través de calor seco es un método eficaz para esterilizar equipos médicos. El calor seco se dirige hacia el equipo médico y cualquier microorganismo se destruye. Esto se debe a que el alto calor coagula las proteínas de la sangre y asegura que los microorganismos se destruyan.

Esterilización por calor húmedo

  Esta fue una de las primeras técnicas de esterilización. El aire caliente (con vapor de agua) se dirige hacia instrumentos médicos, desnaturalizando muchos microorganismos en el proceso. Esto asegura que cualquier bacteria o microbio que crece en el instrumento se destruya.

Esterilización por Radiación

  La radiación, especialmente la radiación gamma, se usa para esterilizar el equipo médico. La radiación gamma garantiza la destrucción de muchos tipos diferentes de microbios. Curiosamente, la radiación siempre se usa para esterilizar escalpelos y muchos otros instrumentos médicos metálicos.

  Como es evidente, hay muchos métodos de esterilización de equipos médicos. Aunque no todas las técnicas son empleadas por ningún hospital, muchas de las técnicas anteriores todavía se utilizan para esterilizar equipos médicos. En conclusión, los pacientes pueden estar seguros de que el equipo utilizado para mantener su salud está limpio, de acuerdo con el estándar y perfecto para usar en su cuerpo.

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🔹 Esterilización de materiales de laboratorios (Resultados)

  La esterilización también se puede usar para eliminar agentes biológicos casi vivos, como virus y priones, que muchos científicos no están convencidos de que estén “vivos”. La falta de eliminación de virus y priones de los instrumentos y superficies puede presentar graves ramificaciones para la seguridad del paciente y del personal. por eso es importante seleccionar la técnica de esterilización más apropiada.

🍀 Esterilización versus desinfección

  La esterilización se distingue de la desinfección porque mata, desactiva o elimina todas las formas de vida o agentes biológicos. La desinfección se refiere específicamente a la eliminación de agentes biológicos nocivos. En términos prácticos, la esterilización puede ser necesaria en situaciones críticas para la salud, como hospitales, mientras que la desinfección es un proceso que se utiliza en su cocina o baño.

Formas de esterilización física

  Se pueden usar muchas técnicas para esterilizar superficies. Primero, el calor y la presión pueden eliminar sustancias lábiles de los instrumentos y equipos. Los compuestos biológicos, como algunas proteínas y virus, presentan desafíos durante la esterilización. Los priones, por ejemplo, han demostrado resistir la desnaturalización por calor y presión, así como muchos químicos y enzimas. Se recomienda la modificación covalente de estos compuestos para su eliminación.

  Luego, la radiación ionizante (como los rayos X) también es un esterilizador eficiente, que actúa para liberar electrones de las moléculas. Dado que muchos agentes transmisibles requieren ADN y ARN para su propagación, cortar la estructura del ácido nucleico puede ser un medio útil para reducir su transmisión. Si bien esta técnica ha demostrado ser efectiva para una desinfección segura, se debe prestar mucha atención a la eliminación posterior de estos compuestos, ya que las esporas de bacterias y hongos resisten la mayoría de las técnicas de irradiación.

📌 Esterilizadores por químicos comunes

  El óxido de etileno (EtO) se usa comúnmente para esterilizar objetos que son sensibles a temperaturas superiores a 140 ° F / 60 ° C y / o radiación. Estos incluyen componentes de plástico o suministros, óptica y electrónica. Las altas temperaturas pueden dañar fácilmente los plásticos y la óptica y hacer que el dispositivo no sea adecuado para su aplicación original. Por lo tanto, el EtO se usa comúnmente para esterilizar equipos médicos duraderos y catéteres y endoscopios de un solo uso pre envasados. El químico tiene un efecto disruptivo sobre el ADN, lo que hace que los microorganismos no puedan reproducirse. Si bien este procedimiento de esterilización produce buenos resultados, debe tenerse en cuenta que el (EtO) es un carcinógeno conocido y presenta un grave riesgo para el personal si no se controla cuidadosamente.

  Si bien muchos de estos métodos individuales son capaces de esterilizar efectivamente las superficies, comúnmente se usan en combinación para desarrollar un protocolo de esterilización robusto. Si bien la esterilización en sí misma no requiere una validación posterior para su uso en un entorno de fabricación, se recomienda encarecidamente que estos procesos se supervisen y cuantifiquen de cerca siempre que sea posible para garantizar resultados seguros y confiables que aumenten la seguridad del paciente y del personal.

🔍 Métodos para esterilizar cristalería

  1. En la mayoría de los grandes laboratorios, la cristalería se lava en tres pasos, como:
  2. Lavadora automática.
  3. Seguido de un ciclo de enjuague especial.
  4. Luego manténgala en el secador automático (por debajo de 100 ° C).
  5. Enjuague la cristalería con un disolvente orgánico miscible con agua y luego expóngala a una corriente de aire o nitrógeno.
  6. El uso más común es el de los productos químicos.

🌡 Proctólogo para esterilizar cristalería

  1. Descontamine la cristalería preparando previamente en lejía al 5% o hirviéndola.
  2. Se puede utilizar cualquier tipo de detergente o polvo de limpieza.
  3. Autoclave puede ser el método alternativo.
  4. Si la cristalería se empapa en agua después del uso que es ideal.
  5. Si lo sobra, manténgala en la solución detergente durante la noche.
  6. Ahora enjuague con agua del grifo, seguido de un enjuague con agua des ionizada.

🔬 Los desinfectantes usados para esterilizar más comunes son:

  1. Productos químicos liberadores de cloro donde el cloro es activo contra las bacterias gram positivas y negativas, incluidos los virus VIH y HB.
  2. Algunos ejemplos son el hipoclorito (solución de lejía), que se usa en el hogar y en la lavandería.
  3. Los aldehídos son formaldehído y glutarildehído.
  4. Alcohol usado en etanol o propanol 70 a 80% V / V.
  5. Los fenoles como el hycolin, Clearsol, Stericol y Printol.
  6. Prueba para comprobar la limpieza de la cristalería.
  7. Verifique el agua de enjuague final que debe moverse con una acción de laminado, dejando una película delgada sobre la superficie.
  8. Si la película se rompe en gotitas, o la superficie está húmeda de manera desigual, entonces indica que la cristalería no está limpia.

PLACAS DE PETRI DE LABORATORIO: Para Qué Sirve, Uso, Precio

Las placas de petri de laboratorio son complementos indispensables para llevar a cabo el trabajo de un bioanalista, o cualquier profesional en carreras a fines.

🔍 ¿Qué son placas de Petri?

  Es un plato cilíndrico poco profundo con tapa de vidrio que se usa típicamente para cultivar microorganismos (placas de agar). Hay placas de Petri de vidrio y de plástico, y ambas pueden ser esterilizadas (usando un autoclave) y reutilizadas. Antes de su uso para fines de cultivo, es importante asegurarse de que la placa de Petri no sólo esté limpia, sino también estéril. Esto ayuda a prevenir la contaminación del nuevo cultivo.

🌡 ¿Para qué sirven las placas de Petri de laboratorio?

  La placa de petri fue hecha para la separación. Fue desarrollado para cultivar microorganismos mientras se los separa de los contaminantes del aire. Como parte de su capacidad para hacer separaciones entre el mundo exterior contaminado y el mundo interior no contaminado, el plato también ayudó a separar a los individuos de la enfermedad. En estos días, es cada vez más difícil para las placas de Petri mantener estas separaciones.

🔬 Historia detrás de la fabricación de las placas de Petri

  Julius Richard Petri (1852-1921) trabajó como asistente de Robert Koch en Berlín en la oficina de Imperial Health. Koch, quien identificó los microorganismos responsables del cólera, el ántrax y la tuberculosis, fue, junto con Pasteur y Lister, uno de los “padres de la microbiología” de finales del siglo XIX, alias “padres de la teoría de los gérmenes”. Cuando Petri llegó al laboratorio de Koch 1877, los asistentes de laboratorio utilizaban placas de vidrio plano para hacer crecer colonias de bacterias. Vertían las bacterias junto con un medio de cultivo de gelatina sobre el vidrio, ponían en capas los platos, los cubrían con una gran jarra de vidrio y luego calentaban todo para cultivar la colonia.

Este fue un proceso engorroso y dificulta el conteo de bacterias bajo el microscopio, una herramienta esencial para hacer visibles los microorganismos. Petri mejoró la técnica: desarrolló un plato doble más pequeño, redondo y de fondo plano con lados. Un plato era un poco más grande, sirviendo como tapa y escudo. Como explicó Petri, en su breve artículo de 1887 , “En una pequeña modificación de la técnica de recubrimiento de Koch”, “en estas condiciones, la contaminación por gérmenes en el aire rara vez ocurre . ” La clave de esta modificación fue cómo Petri hizo que su plato se ajustara al microscopio.

Microorganismos

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  La placa de Petri ayudó a los científicos de laboratorio a ver y contar algo que era nuevo: los microorganismos. Solo unas pocas décadas antes, los científicos habían comenzado a identificar las enfermedades como entidades independientes, separadas de los entornos idiosincrásicos y los cuerpos humanos. La placa de Petri ayudó a desarrollar la microbiología y la relativamente nueva “teoría de los gérmenes” de la enfermedad.

  Las placas de petri también se llaman platos de cultivo celular. Este uso de la “cultura” se remonta al cultivo de la agricultura y la ganadería de la 16a.Siglo, que se extendió al proceso de desarrollo humano y eventualmente lo vincularon filósofos, como Johann Gottfried Herder, a personas que se marinan en condiciones particulares de lugar, idioma, espíritu y tradición. Esta cultura no se oponía a la naturaleza, como sucedió más tarde, sino que formaba parte de los procesos materiales del desarrollo de un organismo.

La capacidad de la placa de Petri para cultivar bacterias y evitar la contaminación era, por lo tanto, antigua y nueva: viejo porque el cultivo de bacterias desarrolló organismos conformados por las condiciones enmarañadas del medio de cultivo que las rodeaba; nuevo porque la promesa de los límites demarcados de un experimento controlado con una placa de Petri propuso un mundo donde la separación entre los organismos y el medio ambiente era posible.

🔹 Descripción de las placas de Petri de laboratorio

  Las placas de Petri se pueden rellenar con medios semi sólidos dentro de la superficie de las cuales se pueden cultivar bacterias (u otros microorganismos). Esto permite al microbiólogo observar el tamaño, la forma, el color y otros caracteres de las colonias que se forman. Estas observaciones ayudan a identificar las especies y proporcionan otra información sobre las bacterias. Una colonia es un agregado de crecimiento bacteriano y puede contener hasta 10 ^ 10 células y puede haber comenzado con una célula.

 Son cilindros de vidrio o de plástico semi transparente que aíslan las bacterias del aire que puede contaminarlas.

  Con un tamaño de muestra específico, se espera el recuento regulado dentro de una limitación específica en relación con el área de superficie en función del volumen especificado. Una placa de Petri específica para tipos de bacterias específicas.

Mira mas sobre materiales de laboratorio

🍀 Tamaños de las placas de Petri de laboratorio

Placa de Petri, 50 x 9 mm, sin almohadilla

Se utiliza con un filtro de 47 mm de diámetro, con o sin almohadilla.

Menos de 1% de pérdida de humedad a 35 ° C (95 ° F) durante un período de 24 horas

El diseño único de la pata deja espacio entre los platos para una distribución uniforme de la temperatura durante la incubación

Poli estireno ópticamente transparente, radiación gamma esterilizada

EasYDish disco de Petri

  Los platos Thermo Scientific ™ Nunc ™ EasYDish ™ son la próxima generación de platos de cultivo celular que mejoran la manipulación, el apilamiento y el transporte de cultivos celulares en su laboratorio. El anillo de agarre biselado es fácil de sostener y se mantiene seguro en su mano enguantada. Los platos reciben el tratamiento estándar de superficie Nunclon Delta para maximizar la adhesión para la mayoría de los tipos de células. Disponible en cuatro tamaños: 35 mm, 60 mm, 100 mm y 150 mm.

  1. Anillo de agarre biselado
  2. Asegura que la tapa permanezca en posición cuando se manipula el plato
  3. Hace que sea más fácil de agarrar y manejar con una mano enguantada
  4. Diseño de muesca propietario
  5. Maximiza la ventilación manteniendo la esterilidad.
  6. Restringe el movimiento de la tapa asegurando un ajuste seguro de la tapa al plato
  7. Aumenta la fuerza física del plato.
  8. Borde exterior elevado en la tapa del plato
  9. Permite el apilamiento estable durante el transporte de cultivos celulares.
  10. Marcas de orientación en el fondo del plato
  11. Simplifica la localización de células al microscopio.
  12. Área de escritura
  13. Mejora la trazabilidad de los cultivos celulares.
  14. Embalaje resellable
  15. Promueve la limpieza de los paquetes abiertos.

📌 Placas de Petri para laboratorio hechas de plástico

  1. Transparente y a prueba de golpes.
  2. Reusables
  3. 100 mm de diámetro x 15 mm de alto
  4. Apilable, para mayor comodidad.
  5. Los platos de polimetil-penteno ofrecen una resistencia química superior y resisten la adhesión de las células

🌡 ¿Dónde comprarlos?

Mercado libre ofrece:

  1. Placa De Petri Simple. Plástico. 90x15mm. Paquete De 20 Unid
  2. Placas Capsulas De Cultivo Petri De Vidrio 100×10 Eisco
  3. Placas De Petri Dobles Y Sencillas

Medical Expo Ofrece:

  1. Placas de poliestireno
  2. Placas de vidrio delgado
  3. Dobles y sencillas

Promeplas

Proveedores de Placas petri plasticas esteriles en Caracas, Venezuela.

En amazon puedes conseguir muchos modelos que te pueden interesa. Si quiere comprar escriba en los comentarios.

🔹 Precio

Los precio pueden variar, puede conseguir entre 2 $ y 20 dolares. Hasta las mejores en 100 $

No te vallas sin antes ver un video sobre cultivo de bacterias en estas placas

LABORATORIO DE MICROBIOLOGÍA: Qué Es, Norma, Importancia, Diseño

  Un laboratorio de microbiología es como el santuario de un especialista de salud, hay muchas cosas que necesitas saber sobre un laboratorio de este tipo que puede parecerte impresionante.

🔬 ¿Qué es un laboratorio de microbiología?

  El objetivo principal de este laboratorio es ayudar en el diagnóstico de enfermedades infecciosas. Esto comienza cuando el paciente ingresa al sistema de atención médica y presenta ciertos signos y síntomas compatibles con una enfermedad infecciosa. El médico del paciente luego ordena pruebas específicas para aclarar la presencia de una enfermedad infecciosa. Estas enfermedades pueden incluir aquellas causadas por bacterias (por ejemplo, estreptococos del grupo A que pueden causar estreptococos en la garganta); las causadas por virus (p. ej., influenza A que causa la gripe); las causadas por hongos (p. ej., Candida, que puede causar infecciones vaginales por levaduras); o las causadas por parásitos (p. ej., Giardia, que puede causar diarrea).

🌡 Reglas a tomar en cuenta en un laboratorio de microbiología

  La seguridad en un laboratorio de microbiología es importante en la prevención de infecciones, ya que el laboratorio de microbiología cultiva, manipula y utiliza microorganismos virulentos y / o potencialmente patógenos. Además de los microorganismos, hay algunos productos químicos utilizados en este laboratorio que son potencialmente dañinos. Muchos procedimientos involucran cristalería, llamas abiertas y objetos afilados que pueden causar traumas / daños si se usan incorrectamente.

  Los procedimientos de laboratorio deben leerse antes de asistir a esa sesión de laboratorio.

  1. Fumar, comer y beber en el laboratorio están absolutamente prohibidos en el laboratorio en cualquier momento.
  2. Solo se deben usar zapatos cerrados en el laboratorio. No se permiten las sandalias o los zapatos de punta abierta o de lona   debido al peligro constante de cortes e infecciones por vidrios rotos que se encuentran en los pisos del laboratorio y la posibilidad de derrames químicos.
  3. Mantenga las manos y otros objetos lejos de su cara, nariz, ojos, oídos y boca. La aplicación de cosméticos en el laboratorio está prohibida en el laboratorio.
  4. Las áreas / superficies de trabajo deben desinfectarse antes y después del uso.
  5. Las batas de laboratorio se deben usar y abotonar en el laboratorio. Las batas de laboratorio no deben usarse fuera del laboratorio.
  6. Se deben usar gafas protectoras al realizar cualquier ejercicio o procedimiento en el laboratorio.
  7. El cabello largo debe asegurarse detrás de su cabeza para minimizar el riesgo de incendio o la contaminación de los experimentos.
  8. Las manos deben lavarse antes de salir del laboratorio.
  9. Al ingresar al laboratorio, deben colocarse abrigos, libros y otros accesorios, por ejemplo, carteras, maletines, etc. en lugares específicos y nunca en mesas de trabajo (excepto el manual de laboratorio).
  10. Nunca pipetee nada con la boca (incluso el agua). Utilice siempre dispositivos de pipeteo.

No debes olvidar lo más importante en un laboratorio de microbiología

  1. Etiquete todos los materiales con su nombre, fecha y cualquier otra información aplicable (por ejemplo, medios de comunicación, organismo, etc.).
  2. Deseche los desechos en sus recipientes apropiados (consulte la sección Eliminación de desechos con riesgo biológico a continuación).
  3. Al manipular productos químicos, anote el código de peligro en la botella y tome las precauciones apropiadas indicadas.
  4. No vierta productos químicos en el fregadero.
  5. Devuelva todos los productos químicos, reactivos, cultivos y cristalería a sus lugares apropiados.
  6. No vierta fluidos biológicos peligrosos en el fregadero.
  7. La cristalería debe lavarse con agua y jabón, luego enjuagarse con agua destilada.
  8. Bucles de transferencia de llama, cables o agujas antes e inmediatamente después del uso para transferir material biológico.
  9. No camine por el laboratorio con bucles de transferencia, cables, agujas o pipetas que contengan material infeccioso.
  10. Tenga cuidado con los quemadores Bunsen. Las llamas no siempre se pueden ver.
  11. Apague los incineradores antes de salir del laboratorio.
  12. Reporte cualquier equipo roto, inmediatamente, reporte cualquier vidrio roto, especialmente aquellos que contengan materiales infecciosos.
  13. Si se lesiona en el laboratorio, comuníquese de inmediato con el instructor de su curso o TA.
  14. Los derrames, cortes y otros accidentes deben informarse al instructor o a la AT en caso de que sea necesario un tratamiento adicional.
  15. Familiarícese con el equipo de seguridad en el laboratorio y las rutas de escape de emergencia.
  16. Siempre limpie y limpie las lentes de su microscopio antes de guardarlo. Utilice el papel de seda adecuado y la solución de limpieza para este propósito.
  17. Use las precauciones universales apropiadas con todos los fluidos biológicos.

🔹 Bioseguridad de un laboratorio de microbiología

Equipo de seguridad (barreras primarias del laboratorio de microbiología)

  El equipo de seguridad incluye gabinetes de seguridad biológica y una variedad de contenedores cerrados. El gabinete de seguridad biológica es el dispositivo principal utilizado para proporcionar la contención de los aerosoles infecciosos generados por muchos procedimientos microbiológico.

Diseño de instalaciones (barreras secundarias)

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  La administración del laboratorio es responsable de proporcionar instalaciones acordes con la función del laboratorio. A continuación, se describen tres diseños de instalaciones, en orden ascendente por nivel de contención.

1. El laboratorio básico: este laboratorio proporciona un espacio general en el que se trabaja con agentes viables que no están asociados con enfermedades en adultos sanos.

2. El laboratorio de contención: este laboratorio tiene características de ingeniería especiales que hacen posible que los trabajadores del laboratorio manipulen materiales peligrosos sin poner en peligro a ellos mismos, a la comunidad o al medio ambiente.

3. El laboratorio de máxima contención: este laboratorio tiene características especiales de ingeniería y contención que permiten realizar actividades que involucran agentes infecciosos que son extremadamente peligrosos para el trabajador del laboratorio o que pueden causar que una enfermedad epidémica grave se realice de manera segura.

Niveles

  • Nivel aplicable a las instalaciones clínicas, de diagnóstico, de enseñanza y otras en las que se trabaja con el amplio espectro de agentes indígenas de riesgo moderado presentes en la comunidad y asociados con enfermedades humanas de severidad variable Con buenas técnicas microbiológicas, estos agentes pueden usarse de manera segura en actividades realizadas en el banco abierto, siempre que el potencial para producir aerosoles sea bajo.
  • Nivel aplicable a las instalaciones clínicas, de diagnóstico, de enseñanza, de investigación o de producción en las que se trabaja con agentes exóticos o indígenas donde el potencial de infección por aerosoles es real y la enfermedad Puede tener consecuencias graves o letales.

🍀 Prácticas de un laboratorio de microbiología

  Para que la microbiología pueda ayudar a diagnosticar la enfermedad infecciosa correcta, se producen varios pasos. El primer paso es la recolección de las muestras apropiadas para diagnosticar la enfermedad del paciente. Por ejemplo, si existe la posibilidad de una infección de la vejiga, el médico puede ordenar un análisis de orina que analice los tipos de células presentes en la orina, como los glóbulos rojos y blancos, así como una muestra de orina para un cultivo que crezca. Organismo que está causando la infección.

  Las muestras se pueden recolectar de varias fuentes diferentes, incluidas muestras de sangre, orina y frotis de la garganta. A veces se requiere una técnica más invasiva que use una aguja u otro instrumento especial para recolectar la muestra. ¡Este primer paso en el diagnóstico microbiológico de enfermedades infecciosas es muy importante! Un espécimen de buena calidad significa la mejor oportunidad de diagnosticar la enfermedad infecciosa.

⭐ Importancia de los laboratorios de microbiología

  La vacunación y la terapia con antibióticos han beneficiado a millones de personas. Sin embargo, los recursos limitados ahora amenazan nuestra capacidad para manejar adecuadamente las amenazas de enfermedades infecciosas al ubicar los servicios de microbiología clínica y la experiencia alejados del paciente y su médico de enfermedades infecciosas. Seguir en esa dirección amenaza la calidad de los resultados de laboratorio, la puntualidad del diagnóstico, la idoneidad del tratamiento, la comunicación efectiva, la reducción de las infecciones asociadas a la atención de salud, los avances en la práctica de las enfermedades infecciosas y la capacitación de futuros profesionales.

  Los laboratorios de microbiología son las primeras líneas de defensa para la detección de nuevas resistencias a los antibióticos, los brotes de infecciones transmitidas por los alimentos y un posible evento de bioterrorismo.

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📌 Equipos usados en un laboratorio de microbiología

  El equipo de microbiología es una categoría grande que abarca todo tipo de artículos utilizados en los laboratorios de microbiología. La microbiología es el estudio de formas de vida microscópicas y es utilizada por científicos que estudian virus, plantas, hongos, protozoos, células y parásitos. Muchas industrias utilizan la microbiología para fines de control de calidad, para demostrar que no hay contaminantes vivos o para determinar qué tipo de contaminantes hay para que sepan cómo solucionar el problema.

  Los equipos de microbiología incluyen microscopios; diapositivas Tubos de ensayo; platos de Petri; medios de crecimiento, tanto sólidos como líquidos; bucles de inoculación; pipetas y puntas; incubadoras Autoclaves, y campanas de flujo laminar. Algunos equipos, como los microscopios y las cubiertas, son elementos permanentes, mientras que otros, como las puntas de las pipetas, son desechables. Tener una autoclave es una forma de poder reutilizar equipos, como diapositivas y placas de Petri, que de lo contrario se podrían haber tirado.

🌡 Estructura de un laboratorio de microbiología

El microbiólogo médico es responsable de la política general del laboratorio y responde al jefe del departamento de medicina de laboratorio. En laboratorios sin microbiólogos médicos, un patólogo general o un doctorado. El microbiólogo (con suerte con capacitación especial en microbiología clínica) puede supervisar el laboratorio.

  Los tecnólogos, estratificados según la experiencia y la capacitación, realizan el procesamiento diario de los especímenes y un gerente de laboratorio los supervisa. Los tecnólogos en microbiología, en general, son un excelente recurso para los médicos y manejan muchas consultas de rutina. Cualquier problema que sientan que no pueden manejar se refiere al microbiólogo médico.

Etiquetado de especímenes

  ¡Un espécimen que llega al laboratorio sin etiquetar no se procesa! Es imperativo que se preste atención a esta parte crucial de la adquisición de la muestra. Las muestras deben ser etiquetadas una vez obtenidas. El etiquetado previo de los recipientes de muestras puede tener consecuencias desastrosas. La persona que obtiene el espécimen debe etiquetar el espécimen o al menos asegurarse de que se haya realizado correctamente. El procedimiento no está completo hasta que la muestra se encuentre en un recipiente debidamente etiquetado. La etiqueta debe incluir:

  1. Nombre completo
  2. Número de cuidado de salud
  3. Fecha de nacimiento
  4. Se tomó la muestra de fecha y hora. (Muy a menudo el tiempo no está indicado)

🔬 Esterilización en los laboratorios de microbiología

  Las técnicas de esterilización efectivas son esenciales para trabajar con líneas celulares aisladas por razones obvias por las que no desea que crezcan los insectos del medio ambiente en su medio de cultivo, e igualmente, los cultivos deben esterilizarse antes de desecharlos.

Calor húmedo (Autoclave)

  El método de elección para la esterilización en la mayoría de los laboratorios, es la autoclave. Utilizando vapor a presión para calentar el material a esterilizar. Este es un método muy efectivo que mata todos los microbios, esporas y virus, aunque para algunos errores específicos, se requieren especialmente altas temperaturas o tiempos de incubación.

  La autoclave mata a los microbios por hidrólisis y coagulación de proteínas celulares, lo que se logra de manera eficiente mediante el calor intenso en presencia de agua.

  El calor intenso proviene del vapor. El vapor a presión tiene un alto calor latente; a 100degC retiene 7 veces más calor que el agua a la misma temperatura. Este calor se libera al entrar en contacto con la superficie más fría del material a esterilizar, lo que permite un suministro rápido de calor y una buena penetración de los materiales densos.

esterilización

Calor seco (flameado, horneando)

  El calentamiento en seco tiene una diferencia crucial con la autoclave. Lo has adivinado: no hay agua, por lo que la hidrólisis de proteínas no puede realizarse.

  En cambio, el calor seco tiende a matar los microbios por oxidación de los componentes celulares. Esto requiere más energía que la hidrólisis de proteínas, por lo que se requieren temperaturas más altas para una esterilización eficiente con calor seco.

  Por ejemplo, la esterilización se puede lograr normalmente en 15 minutos en autoclave a 121 ° C, mientras que el calentamiento en seco generalmente necesita una temperatura de 160 ° C para esterilizarse en un período de tiempo similar.

Filtración

  La filtración es una excelente manera de esterilizar rápidamente las soluciones sin calentamiento. Los filtros, por supuesto, funcionan al pasar la solución a través de un filtro con un diámetro de poro que es demasiado pequeño para que los microbios lo atraviesen.

  Los filtros pueden ser embudos de vidrio desmenuzado hechos de partículas de vidrio fundidas por calor o, más comúnmente en la actualidad, filtros de membrana hechos de ésteres de celulosa. Para la eliminación de bacterias, normalmente se utilizan filtros con un diámetro de poro promedio de 0.2um.

  Pero recuerde, los virus y los fagos pueden pasar a través de estos filtros, por lo que la filtración no es una buena opción si estos son un problema.

Disolventes

  El etanol se usa comúnmente como desinfectante, aunque como el isopropanol es un mejor disolvente para la grasa, probablemente sea una mejor opción.

  Ambos trabajan desnaturalizando proteínas a través de un proceso que requiere agua, por lo que deben diluirse al 60-90% en agua para que sean eficaces.

  Una vez más, es importante recordar que aunque el etanol y la API son buenos para matar las células microbianas, no tienen efecto sobre las esporas.

Radiación

  Los rayos UV, rayos X y rayos gamma son todos los tipos de radiación electromagnética que tienen efectos muy dañinos sobre el ADN, por lo que son excelentes herramientas para la esterilización.

  La principal diferencia entre ellos, en términos de su efectividad, es su penetración.

  Los rayos UV tienen una penetración limitada en el aire, por lo que la esterilización solo ocurre en un área bastante pequeña alrededor de la lámpara. Sin embargo, es relativamente seguro y es bastante útil para esterilizar áreas pequeñas, como las campanas de flujo laminar.

  Los rayos X y los rayos gamma son mucho más penetrantes, lo que los hace más peligrosos pero muy efectivos para la esterilización en frío a gran escala de artículos de plástico (por ejemplo, jeringas) durante la fabricación.

  Estos son algunos de los principales métodos de esterilización que se me ocurren. Si me he perdido alguno, no dude en hacérmelo saber en la sección de comentarios.

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